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袁招冀
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1 中华人民共和国国家标准 GB 食品安全国家标准贝类中麻痹性贝类毒素的测定发布实施中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会国家食品药品监督管理总局发布

2 前言本标准代替 GB/T 贝类中麻痹性贝类毒素的测定 GB/T 贝类中多种麻痹性贝类毒素含量的测定液相色谱 - 荧光检测法 SC/T 麻痹性贝类毒素的测定生物法 SN 出口贝类麻痹性贝类毒素检验方法 SN/T 进出口贝类产品中麻痹性贝类毒素检验方法高效液相色谱法和 SN/T 进出口贝类中麻痹性贝类毒素检验方法酶联免疫吸附试验法本标准与 GB/T 相比, 主要变化如下 : 标准名称修改为食品安全国家标准贝类中麻痹性贝类毒素的测定 ; 增加了酶联免疫吸附法 ; 增加了液相色谱 - 串联质谱法 Ⅰ

3 食品安全国家标准贝类中麻痹性贝类毒素的测定 1 范围本标准规定了贝类中麻痹性贝类毒素测定的小鼠生物法, 酶联免疫吸附方法, 液相色谱法和液相色谱 - 串联质谱法本标准适用于牡蛎扇贝等贝类及其制品中麻痹性贝类毒素的检测小鼠生物法 2 原理用盐酸提取贝类中麻痹性贝类毒素 (PSP) 记录小鼠腹腔注射提取液后的死亡时间, 根据麻痹性贝类毒素致小鼠死亡时间与鼠单位关系的对照表查出鼠单位 (MU), 并按小鼠体重对鼠单位进行校正得到校正鼠单位 (CMU), 计算得到每 100g 样品中 PSP 的鼠单位以石房蛤毒素作为标准, 将鼠单位换算成毒素的微克数, 计算每 100g 贝肉中的 PSP 微克数测定结果代表存在于贝肉内各种化学结构的 PSP 毒素总量 3 试剂和材料除非另有说明, 本方法所用试剂均为分析纯, 水为 GB/T6682 规定的一级水 3.1 试剂氢氧化钠 (NaOH) 盐酸 (HCl) 无水乙醇 (CH3CH2OH) 3.2 试剂配制氢氧化钠溶液 (0.1mol/L): 将 4.0g 氢氧化钠溶于 1L 水中盐酸溶液 (0.18mol/L): 将 15.5mL 盐酸用蒸馏水稀释至 1L 盐酸溶液 (5mol/L): 将 45mL 盐酸用水稀释至 100mL 酸性乙醇溶液 : 量取无水乙醇 200mL, 用水稀释至 1000 ml, 混匀, 用盐酸溶液 (5 mol/l) 调节 ph 至 2.0~ 标准品石房蛤毒素标准品 (STX,C10H17N7O4 2HCl,CAS 号 ): 纯度 98.0% 3.4 标准溶液的配制石房蛤毒素标准储备液 (100μg/mL): 准确称取适量 STX 标准品, 用酸性乙醇溶液溶解并定容, 1

4 配制成 STX 的质量浓度为 100μg/mL 的标准储备液石房蛤毒素标准工作液 (1μg/mL): 准确吸取 1mL 石房蛤毒素标准储备液 (100μg/mL), 用水稀释, 用盐酸溶液 (5mol/L) 调节 ph 至 2.0~4.0, 用水定容至 100mL 该标准工作液于 0 ~4 下可保存 30d 3.5 材料小鼠 : 体重为 19g~21g 的健康 ICR 系雄性小鼠 ph 计或 ph 试纸 4 仪器和设备 4.1 均质器 4.2 分析天平 : 感量为 0.1g 和 g 4.3 离心机 : 转速 2000r/min 5 分析步骤注 : 为避免毒素的危害, 应戴手套进行操作移液管及移液器吸头等用过的器材废弃的提取液等应在次氯酸钠溶液 (5%) 中浸泡 1h 以上以使毒素分解对于动物实验过程中产生的污水废弃物及动物尸体处理, 应参照 GB14925 执行 5.1 样品采集从 2kg 以上样品中采取足够贝类个数, 去壳使贝肉达 200g 以上不能及时送检的新鲜贝类, 开壳将贝肉分离, 将沥水后的 200g 贝肉放入 200mL 盐酸溶液 (0.18mol/L) 中, 置 4 保存, 备检 5.2 试样制备牡蛎蛤及贻贝用清水将贝类样品外表彻底洗净, 切断闭壳肌, 开壳, 用蒸馏水淋洗内部去除泥沙及其他异物将闭壳肌和连接在胶合部的组织分开, 仔细取出贝肉, 切勿割破贝体严禁加热或用麻醉剂开壳收集约 200g 贝肉分散置于筛子中沥水 5min( 不要使肉堆积 ), 捡出碎壳等杂物, 将贝肉均质备用扇贝取可食部分用作检测, 按均质后备用冷冻贝类在室温下, 使冷冻的样品 ( 带壳或脱壳的 ) 自然融化, 按开壳淋洗取肉均质备用贝类罐头将罐内所有内容物 ( 肉及液体 ) 充分均质如果是大罐, 将贝肉沥水并收集沥下的液体分别称重并存放固形物和汤汁, 将固形物和汤汁按原罐装比例混合, 均质后备用用酸保存的贝肉沥去酸液, 分别存放贝肉及酸液, 备用 2

5 5.2.6 贝肉干制品干制品可于等体积盐酸溶液 (0.18mol/L) 中浸泡 24h~48h(4 冷藏 ), 沥去酸液, 分别存放贝肉及酸液备用 5.3 PSP 标准品对照试验 PSP 标准工作液的配制用 10mL 15mL 20mL 25mL 和 30mL 水分别稀释 10mL 石房蛤毒素标准工作液, 配制成系列浓度的标准稀释液中位数死亡时间的 PSP 标准工作液选择取按配制的系列浓度的标准稀释液各 1 ml, 腹腔注射小鼠数只, 选择中位数死亡时间为 5min~7min 的浓度剂量如某浓度稀释液已达到要求, 还需以 1mL 水的增减量进行补充稀释试验每只小鼠试验前称重, 以 10 只小鼠为一组, 用中位数死亡时间在 5min~7min 范围内的两个浓度的标准稀释液注射小鼠, 测定并记录每只小鼠腹腔注射完毕至停止呼吸的所需死亡时间毒素转换系数 (CF) 的计算小鼠中位数死亡时间的选择计算中所选择浓度的标准稀释液受试组的中位数死亡时间弃去中位数死亡时间小于 5min 或大于 7min 的受试组 ; 选择中位数死亡时间在 5min~7min 的受试组, 该受试组中可允许有个别小鼠的死亡时间可小于 5min 或大于 7min 校正鼠单位 (CMU) 的计算对于所选定的中位数死亡时间为 5min~7min 的受试组, 根据附录 A 查得该组中每只小鼠死亡时间所对应的鼠单位 (MU), 再根据附录 B 查得组中每只小鼠体重所对应的体重校正系数, 同一只小鼠的体重校正系数与鼠单位相乘得到该只受试小鼠的校正鼠单位 (CMU) 毒素转换系数 (CF) 的计算单只小鼠的毒素转换系数 (CF) 按式 (1) 计算 : CF= c (1 ) CMU 式中 : CF 毒素转换系数, 单位为微克每毫升 ( μ g/ml); c 每毫升 STX 标准稀释液中的毒素含量, 单位为微克每毫升 ( μ g/ml); CMU 校正鼠单位得到单只小鼠的毒素转换系数 (CF) 后, 再计算每组 10 只小鼠的平均 CF 值, 即为组内毒素转换系数 (CF1) 组间毒素转换系数 (CF2) 的计算取不同受试组的组内毒素转换系数的平均值, 即为组间毒素转换系数 (CF2) 以组间毒素转换系数进行试样毒力的计算 3

6 CF 值定期检查如 PSP 检测间隔时间较长, 每次测定时要用适当的标准稀释液注射 5 只小鼠, 重新测定 CF 值如果一周有几次检测, 则用中位数死亡时间 5min~7min 的标准稀释液每周检查一次, 测得的 CF 值应在原测定 CF 值的 ±20% 范围内若结果不符, 则用同样的标准稀释液另外注射 5 只小鼠, 综合之前注射的 5 只小鼠的结果, 计算出 CF 值并用同样的标准稀释液注射第二组 10 只小鼠, 将第二组求出的 CF 值和第一组的 CF 值进行平均, 即为一个新的 CF 值重复检查的 CF 值通常在原结果的 ±20% 之内, 若经常发现有较大偏差, 在进行常规检测前应调查该方法中是否存在可变影响因素 5.4 试样提取取 100g 试样于烧杯中, 加盐酸溶液 (0.18mol/L)100mL 充分搅拌, 均质, 调节 ph 至 2.0~4.0, 必要时, 可逐滴加入盐酸溶液 (5mol/L) 或氢氧化钠溶液 (0.1mol/L) 调节 ph, 加碱时速度要慢, 同时需不断搅拌, 防止局部碱化破坏毒素将混合物加热煮沸 5min, 冷却至室温, 移至量筒中并稀释至 200mL, 调节 ph 至 2.0~4.0 将混合物倒回烧杯, 搅拌均匀, 自然沉降至上清液呈半透明状, 不堵塞注射针头即可, 必要时将混合物或上清液以 3000r/min 离心 5min, 或用滤纸过滤收集上清液备用 5.5 小鼠试验取 19.0g~21.0g 健康 ICR 雄性小鼠 6 只, 称重并记录重量随机分为实验组和空白对照组两组, 每组 3 只对每只实验组小鼠腹腔注射 1 ml 试样提取液, 对每只空白对照组腹腔注射 1 ml 盐酸溶液 (0.18mol/L) 注射过程中若有一滴以上提取液溢出, 须将该只小鼠丢弃, 并重新注射一只小鼠记录注射完毕时间, 仔细观察并记录小鼠停止呼吸时的死亡时间 ( 到小鼠呼出最后一口气止 ) 若注射试样提取液后,1 只或 2 只小鼠的死亡时间大于 7min, 需再注射至少三只小鼠若小鼠的死亡时间小于 5min, 稀释试样提取液后, 再注射 3 只小鼠, 直至小鼠在 5 min~7 min 内死亡 ; 稀释试样提取液时, 需逐滴加入盐酸溶液 (0.18mol/L) 调节 ph 至 2.0~4.0 6 分析结果的表述 6.1 以质量分数计的 PSP 毒力的计算与结果表述以质量分数计的 PSP 毒力的计算每 100g 试样中 PSP 的含量按式 (2) 计算 : X =CMU1 CF2 DF 200 (2 ) 式中 : X 每 100g 样品中 PSP 的含量, 单位为微克每百克 ( μ g/100g); CMU1 试样受试组小鼠的中位数校正鼠单位 ; CF2 组间毒素转换系数, 单位为微克每毫升 ( μ g/ml); DF 稀释倍数 ; 200 试样提取液的体积, 单位为毫升 (ml) 注 : 根据检测样品受试组的小鼠死亡时间, 查出附录 A 对应的鼠单位 ; 根据附录 B 查出小鼠体重所对应的体重校正系数, 两者相乘得到该只小鼠的 CMU 选取受试组中 3 只小鼠 CMU 的中位数, 即为 CMU1 4

7 6.1.2 以质量分数计的 PSP 毒力的结果表述若空白对照组小鼠正常, 则报告待测样品中 PSP 毒素含量为 : μg/100g 6.2 以 MU 计的 PSP 毒力的计算与结果表述以 MU 计的 PSP 毒力的计算每 100g 试样中以 MU 计的 PSP 毒力按式 (3) 计算 : Y =CMU1 DF 200 (3 ) 式中 : Y 每 100g 样品的 MU 值, 单位为鼠单位每百克 (MU/100g); CMU1 实验组小鼠的中位数校正鼠毒力单位 ; DF 稀释倍数 ; 200 试样提取液的体积, 单位为毫升 (ml) 注 : 对于取得 PSP 标准品有困难的实验室, 可按式 (3) 计算以 MU 计的 PSP 毒力以 MU 计的 PSP 毒力的判断与结果表述在空白对照组小鼠正常的情况下进行如下判断和表述 : 若实验组中位数死亡时间小于 5 min, 则应对样品提取液进行稀释, 再选取 3 只小鼠进行试验, 直至得到中位数死亡时间为 5min~7min 为止, 根据最后的稀释液实验结果计算样品的鼠单位毒力, 报告该样品的鼠单位毒力为 : MU/100g 若实验组中位数死亡时间大于 7min, 则直接计算确定样品鼠单位毒力, 报告该样品的鼠单位毒力为 : MU/100g 若实验组中所有小鼠在观察 15min 内均不死亡, 可报告该样品的鼠单位毒力小于 400MU/100g 酶联免疫吸附法 7 原理游离麻痹性贝类毒素与其酶标记物竞争麻痹性贝类毒素抗体, 同时麻痹性贝类毒素抗体与捕捉抗体连接没有被结合的酶标记物在洗涤步骤中被除去结合的酶标记物将无色的发色剂转化为蓝色的产物加入反应停止液后使颜色由蓝转变为黄色用酶标仪在 450nm 波长下测量微孔溶液的吸光度值, 试样中麻痹性贝类毒素含量与吸光度值成反比, 按绘制的标准曲线定量计算 8 试剂和材料 8.1 试剂除非另有说明, 本方法所用试剂均为分析纯, 水为 GB/T6682 规定的一级水盐酸 (HCl) 十二水合磷酸氢二钠 (Na2HPO4 12H2O) 氯化钠 (NaCl) 氯化钾 (KCl) 5

8 8.1.5 磷酸二氢钾 (KH2PO4) 吐温 -20(C58H114O26) 牛血清白蛋白 (BSA) 酶标记物麻痹性贝类毒素抗体过氧化氢 (H2O2) ,3,5,5- 四甲基联苯胺 (TMB,C16H20N2) 硫酸 (H2SO4) 8.2 试剂配制盐酸溶液 (0.1mol/L): 量取 9mL 盐酸, 用水稀释至 1000mL 盐酸溶液 (5mol/L): 量取 450mL 盐酸, 用水稀释至 1000mL 磷酸盐缓冲液 (PBS 溶液,pH7.4): 分别称取磷酸二氢钾 0.20g 十二水合磷酸氢二钠 2.90g 氯化钠 8.00g 氯化钾 0.20g, 加水溶解并定容至 1000mL 抗体稀释液 : 称取 1.0gBSA, 加 PBS 溶液溶解并定容至 1000mL 酶标记物工作液 : 用抗体稀释液将酶标记物稀释至工作浓度麻痹性贝类毒素抗体工作液 : 麻痹性贝类毒素抗体用抗体稀释液稀释至工作浓度洗脱液 : 吸取 0.5mL 吐温 -20, 用 PBS 溶液稀释至 1000mL 硫酸溶液 (1 mol/l): 吸取 53.2 ml 硫酸, 缓缓加至盛有 500 ml 水的烧杯中, 并用水定容至 1000mL, 混匀 8.3 标准品石房蛤毒素 (STX,C10H17N7O4 2HCl,CAS 号 ) 标准溶液 8.4 标准溶液配制标准系列工作液配制 : 准确吸取适量体积的石房蛤毒素标准溶液用 PBS 溶液 (ph7.4) 稀释, 配制成质量浓度分别为 0μg/L,2.5μg/L,5μg/L,10μg/L,20μg/L,40μg/L 的标准系列工作液现用现配 8.5 材料包被有麻痹性贝类毒素捕捉抗体的微孔板注 : 商业化试剂盒若评价技术参数达到本标准的要求则也适合于本标准, 参见附录 C 9 仪器和设备 9.1 酶标仪 9.2 均质器 9.3 离心机 : 转速 6000r/min 10 分析步骤 10.1 样品采集同 5.1 6

9 10.2 试样制备同试样提取称取 10g( 精确至 0.1g) 试样, 加入 70mL 盐酸溶液 (0.1mol/L)[ 如为较干燥的贝肉, 加入 140mL 盐酸溶液 (0.1 mol/l)], 煮沸并搅拌 5 min,4 条件下 6000r/min 离心 10 min, 上清液用盐酸溶液 (5mol/L) 调节 ph 至 4.0 以下取 100μL 提取液, 加入 900μLPBS 溶液 (ph7.4), 混匀, 取 50μL 进行测定 10.4 测定将包被有麻痹性贝类毒素捕捉抗体的微孔条插入微孔架并做好标记, 其中包括空白对照孔标准液孔和样液孔, 分别做平行孔向空白对照孔加入 50μL 磷酸盐缓冲液, 标准液孔加入 50μL 麻痹性贝类毒素标准系列工作液, 样液孔加入 50μL 样液加入 50μL 麻痹性贝类毒素酶标记物至每个微孔, 轻轻混合 ; 再加入 50μL 麻痹性贝类毒素抗体至每个微孔, 彻底混合, 用黏胶纸封住微孔以防溶液挥发, 20 ~25 黑暗避光处孵育 15min 孵育结束后, 倒去孔中液体, 每个微孔注入 250μL 洗脱液冲洗, 翻转微孔板, 倾去孔内液体, 再重复以上洗板操作 5 次, 在吸水纸上拍干每孔加 100μL 过氧化氢和 TMB, 充分混合,20 ~25 黑暗避光处孵育 15 min 每孔加入 100μL 硫酸溶液 (1 mol/l) 迅速混匀, 终止反应, 在 10min 内测量并记录 450nm 波长下的吸光度值若测定的样液的质量浓度超出标准曲线的线性范围, 可扩大稀释倍数后重新进行测定 10.5 标准曲线的制作以麻痹性贝类毒素标准系列工作液质量浓度以 10 为底的对数值为横坐标, 以式 (4) 计算的百分比吸光度值为纵坐标, 绘制标准曲线麻痹性贝类毒素标准液和样液的百分比吸光度值按式 (4) 计算 : 式中 : A 百分比吸光度值 ; S 麻痹性贝类毒素标准液或样液的平均吸光度值 ; S0 0μg/kg 的麻痹性贝类毒素标准液的平均吸光度值 A = S S0 100% (4 ) 11 分析结果的表述试样中麻痹性贝类毒素的含量按式 (5) 计算 : 式中 : X = ρ V f m X 试样中麻痹性贝类毒素的含量, 单位为微克每克 ( μ g/g); (5 ) ρ 由标准曲线得到的试样待测液中麻痹性贝类毒素的质量浓度, 单位为微克每毫升 ( μ g/ml); V 试样提取液的体积, 单位为毫升 (ml); f 稀释倍数 ; m 试样的质量, 单位为克 (g) 注 : 任何麻痹性贝类毒素含量值大于 800μg/kg 的样品即被认为是有害的, 对人类食用不安全 7

10 12 其他本方法的定量限为 50μg/kg 液相色谱法 13 原理试样中的麻痹性贝类毒素经盐酸溶液 (0.1mol/L) 提取,C18 固相萃取柱和超滤离心净化, 液相色谱分离, 在线柱后衍生荧光检测, 外标法定量 14 试剂和材料除非另有说明, 本方法所用试剂均为分析纯, 水为 GB/T6682 规定的一级水 14.1 试剂乙腈 (CH3CN): 色谱纯无水乙酸 (CH3COOH) 盐酸 (HCl) 庚烷磺酸钠 (C7H15NaO3S) 磷酸 (H3PO4) 二水合高碘酸 (HIO4 2H2O) 磷酸氢二钾 (K2HPO4) 氢氧化钾 (KOH) 氨水 (NH3 H2O) 14.2 试剂配制庚烷磺酸钠溶液 (0.1mol/L): 称取 20.2g 庚烷磺酸钠, 用水溶解并稀释至 1000mL 磷酸溶液 (0.5mol/L): 称取 49.0g 磷酸, 用水溶解并稀释至 1000mL 磷酸氢二钾溶液 (0.25mol/L): 称取 43.5g 磷酸氢二钾, 用水溶解并稀释至 1000mL 氢氧化钾溶液 (1mol/L): 称取 56.1g 氢氧化钾, 用水溶解并稀释至 1000mL 高碘酸溶液 (0.5mol/L): 称取 114.0g 二水合高碘酸, 用水溶解并稀释至 1000mL 乙酸溶液 (1mol/L): 称取 60.0g 无水乙酸, 用水溶解并稀释至 1000mL 乙酸溶液 (0.01mol/L): 量取 10.0mL 乙酸溶液 (1mol/L), 用水稀释至 1000mL 盐酸溶液 (0.1mol/L): 量取 9.0mL 盐酸, 用水稀释至 1000mL 流动相 A: 量取 15.0 ml 庚烷磺酸钠溶液 (0.1 mol/l) 8.5 ml 磷酸溶液 (0.5 mol/l), 用约 450mL 水稀释, 用氨水调 ph 至 7.2, 用水定容至 500mL, 过 0.45μm 水相微孔滤膜流动相 B: 量取 20.0mL 庚烷磺酸钠溶液 (0.1 mol/l) 45.0 ml 磷酸溶液 (0.5 mol/l), 用约 450mL 水稀释, 用氨水调节 ph 至 7.2, 用水定容到 500mL, 过 0.45μm 水相微孔滤膜氧化液 : 量取 10.0 ml 高碘酸 (0.5 mol/l) 100 ml 磷酸氢二钾溶液 (0.25 mol/l), 用约 450mL 水溶解, 用氢氧化钾溶液 (1mol/L) 调节 ph 至 9.0, 用水稀释至 500mL 8

11 14.3 标准品麻痹性贝类毒素 GTX1,4 GTX2,3 dcgtx2,3 GTX5 neostx STX dcstx 标准溶液, 避光保存于 -20 以下标准品相关信息参见附录 D 14.4 标准溶液配制麻痹性贝类毒素标准储备液 : 准确吸取适量麻痹性贝类毒素标准溶液, 用乙酸溶液 (0.01 mol/l) 稀释并定容, 配制成一定浓度的标准储备液, 避光保存于 -20 以下麻痹性贝类毒素混合标准溶液 : 分别准确吸取适量各麻痹性贝类毒素标准储备液, 用乙酸溶液 (0.01mol/L) 稀释并定容, 配制成所需质量浓度的混合标准溶液, 现用现配麻痹性贝类毒素混合标准工作液 : 准确吸取适量麻痹性贝类毒素混合标准溶液, 用乙酸溶液 (0.01mol/L) 稀释并定容, 配制成混合标准工作液, 相关信息见附录 D 14.5 材料 C18 固相萃取柱 :500mg/3mL, 或性能相当者使用前依次用 6mL 甲醇和 6mL 水活化超滤离心管 :4mL,10KD 微孔滤膜 :0.45μm, 水相 15 仪器和设备 15.1 液相色谱仪 : 配有荧光检测器, 柱后衍生反应装置 15.2 离心机 : 转速 2000r/min 15.3 固相萃取装置 15.4 涡旋振荡器 15.5 恒温水浴锅 15.6 ph 计 16 分析步骤 16.1 样品采集同试样制备同试样提取称取 5g( 精确至 0.01g) 试样于 15mL 具塞离心管中, 加入 10 ml 盐酸溶液 (0.1 mol/l), 振荡均匀将离心管置于 100 的沸水浴中, 加热 5min, 冷却后, 以 5000r/min 离心 10min, 上清液待净化 16.4 试样净化将上清液过已活化好的 C18 固相萃取柱, 收集流出液, 用水定容至 10 ml 准确吸取 1 ml( 相当于 0.5g 试样 ) 于超滤离心管中离心, 滤液供液相色谱测定 9

12 16.5 空白试验除不加试样外, 采用与试样相同的操作步骤, 得到空白溶液 16.6 仪器参考条件液相色谱参考条件 a) 色谱柱 :C8 柱, 柱长 250mm, 内径 4.6mm, 粒径 5μm, 或性能相当者 ; b) 温度 :30 ; c) 流动相 : 流动相 A 流动相 B 和流动相 C( 乙腈 ); d) 流动相梯度洗脱, 详见表 1; 表 1 流动相梯度洗脱时间 /min 流动相 A/% 流动相 B/% 流动相 C/% 流速 /(ml/min) e) 柱后衍生 : 反应温度为 50, 反应液流速 ( 单位为 ml/min), 梯度见表 2; 表 2 柱后衍生反应液流速梯度单位为毫升每分钟反应液时间 0min 25min 25.5min 45min 45.5min 60min 氧化液乙酸溶液 (1mol/L) f) 荧光检测 : 激发波长 330nm, 发射波长 390nm; g) 进样量 :100μL 16.7 标准曲线的制作将不同浓度混合标准溶液分别注入液相色谱仪中, 测定相应的峰面积, 以标准溶液的质量浓度为横坐标, 以峰面积为纵坐标, 绘制标准曲线麻痹性贝类毒素标准溶液的液相色谱图见图 E 试样溶液的测定将试样溶液注入液相色谱仪中, 得到相应的峰面积, 根据标准曲线得到待测液中麻痹性贝类毒素的质量浓度 10

13 17 分析结果的表述 17.1 试样中各种麻痹性贝类毒素含量的计算试样中各种麻痹性贝类毒素的含量按式 (6) 计算 : 式中 : Xi ρi V Xi = ρ i V 1000 m 1000 试样中各种麻痹性贝类毒素的含量, 单位为微克每千克 ( μ g/kg); (6 ) 从标准工作曲线得到的试样溶液中麻痹性贝类毒素的质量浓度, 单位为纳克每毫升 (ng/ml); 用于超滤的试样溶液体积, 单位为毫升 (ml); 1000 换算因子 ; m 与超滤试样溶液相当的试样质量, 单位为克 (g) 计算结果应扣除空白值计算结果保留三位有效数字 17.2 总毒力计算试样中麻痹性贝类毒素总毒力 (STXeq ) 按式 (7) 计算 : 式中 : n STXeq Xi ri = (7 ) i=1 STXeq 试样中麻痹性贝类毒素总毒力, 单位为微克每千克 ( μ g/kg); Xi ri 各种麻痹性贝类毒素的含量, 单位为微克每千克 ( μ g/kg); 麻痹性贝类毒素的毒性因子注 : 试样中各种麻痹性贝类毒素的含量需按照附录 F 中的毒性因子 (TEFs), 统一转换为总毒力 (STXeq ) 18 精密度在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的 15% 19 其他本方法的定量限 :GTX4 为 16.7μg/kg;GTX1 为 50.7μg/kg;dcGTX3 为 4.8μg/kg;GTX5 为 31.9μg/kg;dcGTX2 为 17.3μg/kg;GTX3 为 6.5μg/kg;GTX2 为 19.6μg/kg;neoSTX 为 15.7μg/kg; dcstx 为 12.5μg/kg;STX 为 14.5μg/kg 液相色谱 - 串联质谱法 20 原理试样经甲酸溶液 (0.5%) 提取, 分别经乙酸乙酯和三氯甲烷液 - 液分配去脂, 固相萃取柱净化后, 再经乙腈除蛋白, 超滤离心, 液相色谱 - 串联质谱检测, 外标法定量 11

14 21 试剂和材料除非另有说明, 本方法所用试剂均为色谱纯, 水为 GB/T6682 规定的一级水 21.1 试剂乙酸乙酯 (CH3COOCH2CH3) 三氯甲烷 (CHCl3) 甲酸 (HCOOH): 分析纯甲酸铵 (HCOONH4): 分析纯乙腈 (CH3CN) 甲醇 (CH3OH) 21.2 试剂配制甲酸铵缓冲溶液 (5 mmol/l): 称取 0.315g 甲酸铵, 加入 5 ml 甲酸, 用水溶解并稀释至 1000 ml 甲酸溶液 (0.5%): 吸取 500μL 甲酸, 用水稀释至 100mL 酸化乙腈 (0.5%): 量取 5mL 甲酸, 用乙腈稀释至 1000mL 21.3 标准品 10 种麻痹性贝类毒素标准溶液 :GTX1&4 GTX2&3 dcgtx2&3 neostx STX dcstx GTX5, 相关分子式 CAS 号参见附录 D 21.4 标准溶液配制麻痹性贝类毒素混合标准中间液 : 准确移取适量各组分标准溶液, 用水稀释定容, 配制成 GTX4 GTX3 dcgtx3 质量浓度为 500ng/mL,STX dcstx neostx GTX5 质量浓度为 1.0μg/mL, GTX1 质量浓度为 1.5μg/mL GTX2 质量浓度为 1.3μg/mL dcgtx2 质量浓度为 2.2μg/mL 的混合标准中间液,4 避光保存, 有效期 3 个月麻痹性贝类毒素混合标准工作液 : 准确移取适量麻痹性贝类毒素混合标准中间液, 于 45 氮气吹干后, 用空白试样基质液稀释并定容, 配制成混合标准工作液参见附录 D 21.5 材料 HLB 固相萃取柱 :150mg/6mL, 或性能相当者使用前依次用 6 ml 甲醇 6 ml 水和 6 ml 甲酸溶液 (0.5%) 活化超滤离心管 :4mL,10KD 22 仪器和设备 22.1 液相色谱 - 串联质谱仪 : 配电喷雾离子源 (ESI) 22.2 分析天平 : 感量为 0.1mg 和 0.01g 22.3 高速冷冻离心机 :10000r/min 22.4 超声波清洗器 22.5 涡旋振荡器 12

15 22.6 均质器 22.7 氮吹仪 22.8 固相萃取装置 23 分析步骤 23.1 样品采集从 2kg 以上样品中采取足够贝类个数, 去壳使贝肉达 200g 以上不能及时送检的新鲜贝类, 冷冻保存 23.2 试样制备同 5.2.1~ 试样提取称取 5g( 精确至 0.01g) 试样于 50 ml 塑料离心管中, 加入 5 ml 甲酸溶液 (0.5%), 涡旋混匀 1min, 超声提取 5min,10000r/min 离心 10min, 移出上清液至另一 50mL 塑料离心管中, 残渣中再加入 4.5mL 甲酸溶液 (0.5%) 重复提取两次, 合并上清液, 用甲酸溶液 (0.5%) 定容至 15mL 23.4 试样净化提取液中加入 20mL 乙酸乙酯, 涡旋混合 30s,10000r/min 离心 10min, 弃去上层溶液再向提取液中加入 20mL 三氯甲烷, 涡旋混合 30s,10000r/min 离心 10min; 取 3 ml 上层溶液加入已活化的固相萃取柱中, 过柱速度控制在 1 滴 /s, 收集流出液至 10 ml 刻度离心管中, 再加 1 ml 甲酸溶液 (0.5%) 至固相萃取柱中, 收集流出液至 3.5mL 向流出液中再加入 4.5mL 乙腈, 混匀后放置 5 min, 10000r/min 离心 10min, 取 1mL 上清液 ( 相当于 0.125g 试样 ) 至超滤离心管中,10000r/min 离心 20min, 所得滤液供液相色谱 - 串联质谱测定 23.5 空白试验试剂空白试验除不加试样外, 采用与试样相同的操作步骤, 得到空白溶液空白试样基质液制备称取空白试样, 采用与试样相同的操作步骤, 得到空白试样基质液 23.6 仪器参考条件液相色谱参考条件 a) 色谱柱 : 亲水性氨基甲酰键合凝胶柱, 柱长 250mm, 内径 2.0mm, 粒径 5μm, 或性能相当者 ; b) 流动相 : 流动相 A 为甲酸铵缓冲溶液 (5 mmol/l), 流动相 B 为酸化乙腈 (0.5%), 梯度洗脱条件见表 3; c) 流速 :0.25mL/min; d) 柱温 :30 ; e) 进样量 :20μL; f) 样品盘温度 :5 13

16 表 3 流动相梯度洗脱条件时间 /min A/% B/% 质谱参考条件 a) 离子源 : 电喷雾离子源 ; b) 扫描方式 : 正离子扫描 ; c) 监测方式 : 多反应监测模式, 麻痹性贝类毒素的母离子子离子和碰撞能量见表 4; d) 喷雾电压 :4500V; e) 离子传输毛细管温度 :300 ; f) 锥孔电压 :-10V; g) 雾化气流速 :11.7L/min; h) 辅助气流速 :1.7L/min; i) 碰撞气压力 :1.5mTorr 表 4 10 种麻痹性贝类毒素母离子子离子和碰撞能量目标化合物母离子 /(m/z) 子离子 /(m/z) 碰撞能量 /ev GTX GTX GTX GTX GTX neostx * * * * * *

17 表 4 ( 续 ) 目标化合物母离子 /(m/z) 子离子 /(m/z) 碰撞能量 /ev STX dcstx dcgtx dcgtx * * * * * 定量离子 23.7 基质标准曲线的制作将基质匹配的不同浓度混合标准工作液分别注入液相色谱 - 串联质谱仪中, 测定相应的峰面积, 以混合标准工作液中各麻痹性贝类毒素的质量浓度为横坐标, 以相应的峰面积为纵坐标, 绘制标准曲线麻痹性贝类毒素标准溶液的多反应监测色谱图参见图 G 试样溶液的测定将试样溶液注入液相色谱 - 串联质谱仪测定, 得到试样溶液中各麻痹性贝类毒素的峰面积, 由基质标准曲线得到试样溶液中各麻痹性贝类毒素的质量浓度试样溶液中麻痹性贝类毒素的保留时间与基质标准工作液中麻痹性贝类毒素的保留时间之间的偏差应在 ±2.5% 以内且检测到的麻痹性贝类毒素的定性离子的相对丰度应当与质量浓度接近的基质标准溶液中麻痹性贝类毒素的定性离子的相对丰度一致, 其偏差应符合表 5 规定的范围, 则可判定试样中存在被测化合物表 5 定性离子相对丰度的最大允许偏差定性离子相对丰度 >50% >20%~50% >10%~20% 10% 允许的相对偏差 ±20% ±25% ±30% ±50% 24 分析结果的表述 24.1 试样中各麻痹性贝类毒素含量的计算试样中各麻痹性贝类毒素的含量按式 (8) 计算 : 式中 : Xi Xi = ρ i V 1000 m 1000 试样中各麻痹性贝类毒素的含量, 单位为微克每千克 ( μ g/kg); (8 ) 15

18 ρi V 由基质标准工作曲线得到的试样溶液中各麻痹性贝类毒素的质量浓度, 单位为纳克每毫升 (ng/ml); 用于超滤的试样溶液体积, 单位为毫升 (ml); 1000 换算因子 ; m 与超滤试样溶液相当的试样质量, 单位为克 (g) 计算结果应扣除空白值计算结果保留三位有效数字 24.2 总毒力计算同精密度在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的 15% 26 其他本方法 GTX1 GTX4 GTX2 GTX3 dcgtx2 和 dcgtx3 的检出限为 25.0μg/kg, 定量限为 50.0μg/kg;GTX5 STX dcstx 和 neostx 的检出限为 50.0μg/kg, 定量限为 100.0μg/kg 16

19 附录 A 麻痹性贝类毒素致小鼠死亡时间与鼠单位的关系麻痹性贝类毒素致小鼠死亡时间与鼠单位的关系见表 A.1 表 A.1 麻痹性贝类毒素致小鼠死亡时间与鼠单位的关系时间鼠单位时间鼠单位分秒 MU 分秒 MU 1: : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : : :

20 表 A.1 ( 续 ) 时间分秒鼠单位 MU 16: : : : : : : 时间分秒鼠单位 MU 23: : : : : :

21 19 附录 B 小鼠体重校正系数表小鼠体重校正系数见表 B.1 表 B.1 小鼠体重校正系数表小鼠体重 /g 校正系数

22 附录 C 商业化试剂盒评价技术参数 C.1 定量限定量限为 50μg/kg C.2 回收率回收率为 85%~90% C.3 重现性标准品变异系数 10%, 样品变异系数 15% C.4 交叉反应率检测 STX 特异性达到 100%; 检测 dcstx 特异性达到 29%; 检测 GTX2/3 特异性达到 23%; 检测 GTX5B 特异性达到 23%; 与其他海藻毒素没有交叉反应 20

23 附录 D 10 种麻痹性贝类毒素标准品的相关信息分子式 CAS 号及标准工作液质量浓度信息 10 种麻痹性贝类毒素标准品的分子式 CAS 号及标准工作液质量浓度信息见表 D.1 表 D.1 10 种麻痹性贝类毒素标准品的分子式 CAS 号及标准工作液质量浓度信息液相色谱法液相色谱 - 串联质谱法毒素分子式 CAS 号质量浓度 μg/ml 标准工作液 /(ng/ml) 质量浓度 μg/ml 标准工作液 /(ng/ml) GTX1 C10H17N7O9S GTX4 C10H17N7O9S GTX2 C10H17N7O8S GTX3 C10H17N7O8S dcgtx2 C9H17N6O7S , dcgtx3 C9H17N6O7S GTX5 C10H17N7O7S neostx C10H17N7O STX C10H19N7O4Cl dcstx C9H18N6O3Cl

24 附录 E 10 种麻痹性贝类毒素标准溶液的液相色谱图 10 种麻痹性贝类毒素标准溶液的液相色谱图见 E.1 说明 : 1 麻痹性贝类毒素 GTX4,16.7μg/L; 2 麻痹性贝类毒素 GTX1,50.7μg/L; 3 麻痹性贝类毒素 dcgtx3,4.8μg/l; 4 麻痹性贝类毒素 GTX5,31.9μg/L; 5 麻痹性贝类毒素 dcgtx2,17.3μg/l; 6 麻痹性贝类毒素 GTX3,6.5μg/L; 7 麻痹性贝类毒素 GTX2,19.6μg/L; 8 麻痹性贝类毒素 neostx,15.7μg/l; 9 麻痹性贝类毒素 dcstx,12.5μg/l; 10 麻痹性贝类毒素 STX,14.5μg/L 图 E.1 10 种麻痹性贝类毒素标准溶液的液相色谱图 22

25 附录 F 麻痹性贝类毒素毒性因子麻痹性贝类毒素毒性因子见表 F.1 表 F.1 麻痹性贝类毒素毒性因子毒素 GTX1 GTX4 GTX2 GTX3 dcgtx2 dcgtx3 GTX5 neostx STX dcstx 毒性因子

26 附录 G 10 种麻痹性贝类毒素标准溶液的多反应监测色谱图 10 种麻痹性贝类毒素标准溶液的多反应监测色谱图见图 G.1 RT: SM:9G 说明 : 1 麻痹性贝类毒素 GTX1,61.2ng/mL; 2 麻痹性贝类毒素 GTX4,20.0ng/mL; 3 麻痹性贝类毒素 GTX2,52.6ng/mL; 4 麻痹性贝类毒素 GTX3,20.0ng/mL; 5 麻痹性贝类毒素 GTX5,50.0ng/mL; 6 麻痹性贝类毒素 dcgtx2,89.0ng/ml; 7 麻痹性贝类毒素 dcgtx3,20.0ng/ml; 8 麻痹性贝类毒素 neostx,50.0ng/ml; 9 麻痹性贝类毒素 dcstx,50.0ng/ml; 10 麻痹性贝类毒素 STX,50.0ng/mL 图 G.1 10 种麻痹性贝类毒素标准溶液的多反应监测色谱图 24

标题

中华人民共和国国家标准 GB 5009.222 2016 食品安全国家标准食品中桔青霉素的测定 2016-12-23 发布 2017-06-23 实施中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会国家食品药品监督管理总局发布前言本标准代替 GB/T5009.222 2008 红曲类产品中桔青霉素的测定 SN/T2426 2010 进出口粮谷中桔霉素含量检测方法液相色谱法和 SN/T2916 2011