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1 尼克酸 ( 维生素 PP, 又称烟酸 ) 的测定方法 此处介绍微生物法 比色法以及复合维生素制剂中的烟酰胺测定方法 ( 分光光度法 ) 一 微生物法 1. 原理一种微生物生长必需某一些维生素,Lactobacillus arabinosus 的生长需要尼克酸 尼克酸是指具有尼克酸生物学活性的吡啶 3- 羧酸及其衍生物的总称 它是白色晶体, 是维生素中最稳定的一种, 对酸 碱 热 光及弱氧化剂都很稳定, 微溶于冷水, 易溶于热水及乙醇 其检出限为 10ng 2. 适用范围本方法来源自 AOAC 和国标 GB 适用于食物及饲料中的尼克酸的检测 3. 仪器 (1) 电热恒温培养箱 (37±0.5 ) (2) 无菌室 ( 紫外灯消毒 ) (3) 电热手提式压力蒸汽消毒器 (121, 高压 30min) (4) 液体快速混合器 (5) 离心机 (3000 转,10min) (6) 碱式滴定管 (7) 硬质玻璃试管 4. 试剂所用试剂皆为分析纯 ; 所用水皆为蒸馏水 4.1 标准溶液的配制 (1) 尼克酸标准储备液 (0.1mg/ml): 准确称取 50.0mg 已干燥恒重并储于五氧化二磷干燥器中的尼克酸标准, 以 25% 乙醇溶液溶解并定容至 500ml, 于冰箱中保存 (2) 尼克酸标准中间液 (1ug/m): 吸取 1.00ml 尼克酸标准储备液, 置于 100ml 容量瓶中, 用 25% 乙醇溶液定容, 混匀, 于冰箱中保存 (3) 尼克酸标准工作液 (0.1ug/m): 临用时吸取 5.00ml 尼克酸标准中间液, 置于 50ml 容量瓶中, 用水定容, 混匀 4.2 其它试剂的配制 (1) 0.5mol/L 硫酸 : 于 2000ml 烧杯中加入 700ml 水, 加入 28ml H2SO4, 用水稀释至 1000ml (2) 10mol/L 氢氧化钠 : 溶 200g NaOH 于水中, 稀释至 500ml (3) 0.1mol/L 氢氧化钠 :, 取 10ml 10mol/L NaOH, 用水稀释至 1000ml (4) 0.04% 溴甲酚绿溶液, 称取 0.1g 溴甲酚绿于研钵中, 加 1.4ml 0.1mol/L NaOH 研磨, 加少许水继续研磨, 直至完全溶解, 用水稀释到 250ml (5) 酪蛋白 (sigma 公司 ): 称取 50g 不含维生素的酪蛋白, 加 200ml (3mol/L) 盐酸,121 磅压力下水解 6 小时, 将水解物转移至蒸发皿内, 在水浴上蒸发至膏状 加 200ml 水使之溶解后再蒸发至膏状, 反复 3 次, 以除去盐酸 注意 :* 酸解酪蛋白是为了去除酪蛋白中的维生素, 确保培养基中不含代测的尼克酸, 但酸解并不一定彻底, 因此选用不含维生素的酪蛋白 * 水浴蒸发时不可蒸干或使之焦糊, 若溶液被蒸干, 水解液所含营养物已被破坏用 10mol/L 氢氧化钠调节 PH 值至 3.5, 以溴酚蓝作外指示剂 加 20g 活性炭, 振摇, 过滤, 反复操作至滤液无色 滤液加水稀释至 500ml, 加少许甲苯置冰箱中保存 * 注意 : 活性炭不能在溶液中太久, 否则容易破坏酪蛋白的营养成分

2 (6) 溴酚蓝 : 称取 0.1g 溴酚蓝, 用 1+4 乙醇溶解后, 再加乙醇稀释至 100ml (7) 甲苯 (8) 4mol/L 盐酸溶液,V+V=1+4 (9) 5mol/L 生理盐水 : 取 9gNaCl 溶于 1000ml 水中 (10) 胱氨酸 色氨酸溶液 : 称取 4gL- 胱氨酸和 1gL- 色氨酸溶于 800ml 水中, 加热至 70~80, 逐滴加入 20% 盐酸, 不断搅拌, 直至完全溶解为止 冷至室温, 加水稀释至 1000ml 加少许甲苯于冰箱中保存 (11) 腺嘌呤 鸟嘌呤 尿嘧啶溶液 : 称取硫酸腺嘌呤, 盐酸鸟嘌呤及尿嘧啶各 0.1g, 加 75ml 水和 2ml 浓盐酸, 然后加热使其完全溶解, 冷却, 若有沉淀产生, 加浓盐酸数滴, 再加热 如此反复, 直至冷却后无沉淀产生为止 用水稀释至 100ml 加少许甲苯于冰箱中保存 (12) D- 泛酸钙 对氨基苯甲酸 盐酸吡哆醇溶液 : 称取 D- 泛酸钙 对氨基苯甲酸 盐酸吡哆醇各 10mg 于烧杯中, 以水溶解并稀释至 1000ml, 将此液置于棕色瓶中, 加少许甲苯于冰箱中保存 * 注意 : 此溶液见光分解, 因此储存于棕色瓶中 (13) 0.02mol/L 醋酸溶液 : 取 1.18ml 纯的冰醋酸, 稀释至 1000ml (14) 核黄素 盐酸硫胺素 生物素溶液 : 溶解 1mg 生物素结晶于 100ml mol/L 的醋酸中, 取此液 4ml( 相当于 40ug 生物素 ), 加入 20mg 核黄素和 10mg 盐酸硫胺素, 以 mol/L 醋酸溶解并稀释至 1000ml, 将此液置于棕色瓶中, 加少许甲苯于冰箱中保存 * 注意 : 此溶液见光分解, 因此储存于棕色瓶中 (15) 甲盐溶液 : 取 25g 磷酸氢二钾和 25g 磷酸二氢钾, 加水溶解后稀释至 500ml, 加少许甲苯于冰箱中保存 (16) 乙盐溶液 : 取 10g 硫酸镁 0.5g 氯化钠 0.5g 硫酸亚铁和 0.5g 硫酸锰, 加水溶解后稀释至 500ml, 加 5 滴浓盐酸, 加少许甲苯于冰箱中保存 (17) 乙醇溶液 V/V=1/3 (18) 溴酚蓝 : 称取 0.1g 溴酚蓝, 用 1+3 乙醇溶液溶解后, 再稀释至 100ml (19) 0.04% 溴麝香草酚蓝溶液 : 称取 0.1g 溴麝香草酚蓝于研钵中, 加 1.6ml,0.1mol/L NaOH, 研磨, 加少许水继续研磨, 直至完全溶解, 用水稀释至 250ml (20) 0.004% 溴麝香草酚蓝溶液 : 量取 100ml0.04% 溴麝香草酚蓝溶液, 加水稀释至 1000ml, 供滴定用 (21) 基本培养基储备液 : 酸解酪蛋白 50ml 胱氨酸 色氨酸溶液 50ml 腺嘌呤 鸟嘌呤 尿嘧啶溶液 10ml D- 泛酸钙 对氨基苯甲酸 吡哆醇溶液 10ml 核黄素 盐酸硫胺素 生物素溶液 10ml 甲盐溶液 10ml 乙盐溶液 10ml 无水葡萄糖 10g 无水醋酸钠 10g ( 或结晶醋酸钠 NaAC.3H2O 16.6g) 将上列试剂混合, 用水稀释至 500ml 用氢氧化钠调 PH 至 6.8, 以溴麝香草酚蓝作外指示剂 (22) 琼脂培养基 : 无水葡萄糖 1g 醋酸钠 1g

3 蛋白胨 0.8g 酵母提取物干粉 0.2g 甲盐溶液 0.2ml 乙盐溶液 0.2ml 琼脂 1.2g 混合, 加水至 100ml, 加热至琼脂完全溶化, 以溴麝香草酚蓝为外指示剂, 用盐酸趁热调 PH 至 6.8, 尽快倒入试管中, 每管 3~5ml, 加塞棉塞, 于压力蒸汽消毒器中 121 灭菌 10min, 取出后竖直试管, 冷至室温后保存于冰箱中 4.3 菌种的制备与保存 (1) 菌种的制备与保存 : 以阿拉伯乳酸杆菌 Lactobacillus arabinosus 17-5 ATCC No.8014 简称 Lact.A? 纯菌种接入 2 个或多个琼脂培养基管中, 在 37±0.5 恒温箱中保温 小时, 取出于冰箱中保存, 至多不超过两周 保存数周以上的菌种, 不能立即用作制备接种液之用, 一定要在使用前每天转种一次, 连续 2-3 天, 方可使用, 否则生长不好 (2) 种子培养液的制备 : 加 5ml 0.1ug/ml 的尼克酸标准应用液于尖头试管中, 加入 5ml 基本培养基, 塞好棉塞, 于压力蒸汽消毒器内 ( 高压锅 )121 下消毒 10min, 取出, 置于冰箱中, 此管可保存数周之久 5. 操作步骤 5.1 样品制备 : 取含尼克酸约 5-50ug 的均匀样品于 100ml 三角瓶中, 加 0.5mol/LH2SO450ml 放入高压蒸汽锅 121 下水解 30min, 取出, 于水中冷却, 用 10mol/LNaOH 和 0.5mol/LH2SO4 调 PH 值至 4.5, 用溴甲酚绿做指示剂 将三角瓶内的溶液转移到 100ml 容量瓶中, 用蒸馏水定容至 100ml, 滤纸过滤, 保存滤液于冰箱内备测 ( 保存期不超过 36 小时 ) * 用 0.5mol/L 硫酸水解, 可以断开尼克酸和其它物质结合的键, 使尼克酸游离出来 * 观察溴甲酚绿至草绿色为终点, 说明溶液 PH 值到了 4.5. 调 PH 值至 4.5 可以除去样品中刺激和抑制细菌生长的物质, 如 : 淀粉 脂肪酸及磷脂 许多蛋白质的等电点也在 PH4.5, 所以此 PH 值也可用来沉淀蛋白质 5.2 接种液的制备 : 使用前一天, 将阿拉伯乳酸杆菌菌种由储备菌种管移种于已消毒的种子培养液中, 可同时制备两管, 在 37±0.5 的恒温箱中培养 小时 取出离心 10 分钟 (3000rpm) 倾去上部液体, 用已消毒的生理盐水淋洗 2 次, 再加 10ml 消毒过的生理盐水, 将离心管置于液体快速混合器上混合, 使菌种成为混悬体, 将此液倒入已消毒的注射器内, 立即使用 5.3 样品标准曲线的测定 :3 组试管各加 0,0.5,1.0,1.5,2.0,2.5 和 3.0ml 工作液, 每管加水稀释至 5ml, 再加 5ml 基本培养基, 混匀, 加棉塞 5.4 试样的测定 : 在试管中分别加入 1,2,3,4ml 样液, 加水稀释至 5ml, 再加入 5ml 基本培养基, 用棉塞塞住试管, 将制备好的标准曲线和试样测定管放入高压锅 (121 ) 高压 10min, 冷至室温备用 5.5 接种和培养 : 每管种一滴接种液, 于 37±0.5 恒温箱中培养 72 小时 * 注意 : 接种后用振荡器振荡混匀试管中的液体 5.6 滴定 : 从恒温箱中取出后, 将试管中培养液倒入 50ml 三角瓶中, 用 5ml0.004% 溴麝香草酚蓝分二次淋洗试管, 洗液倒入该三角瓶中, 以 0.1mol/L 氢氧化钠溶液滴定, 呈绿色即为终点, 此时 PH 约 6.8, 绘制尼克酸标准工作曲线, 用测定管得到的值, 在标准曲线上查到测定管内所含尼克酸的量 * 水解液的 PH 值调至 6.8 是为了不同的试剂加入基本培养基时, 不致改变基本培养基的 PH 值 ( 此乳酸菌生长的适宜 PH 值为 6.8) 6. 计算以尼克酸标准系列的不同微克数为横坐标, 滴定所需 0.1mol/L 氢氧化钠毫升数为纵坐标, 作

4 为标准曲线 X=(C V/m) F (100/1000) X-- 样品中尼克酸的含量,mg/100g; C-- 每毫升样品中尼克酸含量的平均值,ug/ml; V-- 样品水解液定容总体积,ml; F-- 样品试液的稀释倍数 ; m-- 试样质量,g; 100/ 折算成每 100g 样品中尼克酸含量,mg 7. 举例取一螺旋藻样品 1.004g(m), 处理后定容为 100ml(V), 从中取 1ml 稀释至 25ml(F), 取 1, 2,3,4ml 入试管中, 加入水和培养基, 高压消毒, 培养, 滴定, 测量根据曲线分别得出四管 C 值为 0.037,0.073,0.110,0.136, 所以四管平均值为 C=( / / /4) /4=0.036 代入方程式为: X=(C V/m) F (100/1000)=( /1.004) 25 (100/1000)=8.96(mg/100g) 因此得出每 100 克螺旋藻中含 8.96 毫克尼克酸 8. 注意事项 (1) 当管中尼克酸的量少于 0.05 或多于 0.3ug, 即超过标准曲线范围时所得到的数值不能用于计算 (2) 3mol/L 盐酸的配制方法 : 取 250ml 浓盐酸, 加入 750ml 蒸馏水, 共配成 1L 3mol/L 的盐酸 (3) 试管应先用洗衣粉清洗后, 用水冲净, 再放入酸缸中浸泡 1 天左右, 捞出后再用自来水和蒸馏水清洗干净, 凉干, 方可再用 二 比色法 1. 原理烟酸和烟酰胺于 Ph=4.5 下用稀 NH4OH 提取, 再与 CNBr 溶液与 10% 对氨基苯磺酸反应, 测其比色值 2. 适用范围选自 AOAC; 适用范围 : 适用于药物 食物和饲料 3. 仪器设备 (1) 容量瓶,100ml (2) 锥形瓶,250ml (3) 电热板 (4) 高压釜 (121,30min) (5) 离心管,5ml (6) 漏斗 (7) 通风橱 (8) 酸式滴定管比色计 ( 药物 nm, 谷物 470nm) 4. 试剂所用试剂皆为分析纯 ; 所用水皆为蒸馏水 4.1 尼克酸标准溶液 (1) 尼克酸标准储备液 (100μg/ml): 将 50mgUSP 烟道参比标准 ( 贮于 P2O5 干燥器中, 放于暗处保存 )

5 (2) 标准中间液 Ι(10μg/ml): 取少量贮备液放置至室温 用蒸馏水将 10.0ml 贮备液稀释至 100ml (3) 标准工作液 Π(4μg/ml): 将恢复至室温的贮备液 2.0ml 用蒸馏水稀释至 50ml 4.2 其它试剂 (1) 稀氢氧化铵溶液 :5mlNH4OH 用 H2O 稀释至 250ml (2) 稀盐酸 :V+V=1+5 (3) 磷酸缓冲液 (ph=8): 将 60gNa2HPO4 7H2O 和 10gKH2PO4 溶于蒸馏水中并稀释至 200ml (4) 溴化氢溶液 (10%, 通风橱中制备 ): 将 370ml H2O 温热至 40, 并加入 40gCNBr 振荡至溶解冷却并稀释至 400ml 溶液在冰箱保存 *CNBr 剧毒, 切勿与皮肤接触, 必须在通风橱中操作 (5) 10% 对氨基苯磺酸溶液 : 按每次 1ml 将 NH4OH 加到 20g 对氨基苯磺酸和 170ml 蒸馏水的混合液中, 直至酸溶解为止 用盐酸与蒸馏水溶液 (1:1) 调节 ph 至 4.5, 采用溴甲酚绿指示剂指示 稀释至 200ml * 注 : 因为溶液有颜色会影响最后结果, 所以稀释结束后溶液应几乎无色 (6) 55% 对氯基苯磺酸溶液 : 在 55g 对氨基苯磺酸中加入 27ml 蒸馏水和 27mlNH4OH, 振摇至溶解 ( 必要时加温 ) 用 NH4OH 或 5NHCl 调 ph 为 7, 再用蒸馏水稀释至 100ml ( 保存在暗处 ) 5. 操作步骤 5.1 样品制备 (1) 药物 : 将药品研碎, 溶于蒸馏水中, 稀释定容 取 10mL 样品于锥形瓶中, 加入 10mLHCl, 在电热板上加热蒸发至约 2mL, 冷却, 加入 25-50mL 蒸馏水, 用 40%NaOH 或 KOH 溶液调节 ph 值至 过滤, 弃去 10mL 处液, 转移至容量瓶中定容, 使溶液含尼克酸约 4μg/mL * 注 : 溶液的尼克酸含量应在 μg/mL (2) 非谷类食品及饲料 : 称取约 28g 样品, 加入 0.5mol/L H2SO4200mL, 混匀, 在高压釜中 121 加热半个小时 冷却, 用 10mol/LNaOH 调节 ph 值至 4.5, 以溴甲酚绿作外指示剂, 用蒸馏水稀释至 250mL, 过滤 取 17g(NH4)2SO4 于 50mL 容量瓶中, 吸取 40mL 样品液, 用 H2O 稀释定容, 强力振摇 过滤, 混匀, 取 1mL 作比色测定用 如果样品中尼克酸含量为 16mg/1b 最终液浓度 3.2μg/mL 移取 40mL 标准工作液 Π 至盛有 17g (NH4)2SO4 的 50mL 容量瓶中, 用蒸馏水稀释定容, 此液含尼克酸 3.2μg/mL * 注 : 加入 H2SO4 主要是为了去除样品中的蛋白及其它杂质, 以防其对测量结果造成影响 (3) 谷类产品 : 随同样品做 1 试剂空白和 5 个浓度的工作标准液 分别将 1.5gCa(OH)2 放入 7 个锥形瓶中, 移入 mL 标准中间液 Ι 和 2.5g 样品 ( 含 100μg 烟酸 ), 加入蒸馏水至 90mL, 振摇混匀 高压 121 下 2 小时 趁热混匀, 冷却至 40, 转移至 100mL 容量瓶中, 稀释定容 从容量瓶移 50mL 上清液至离心管中, 冰浴 15min 或置于冰箱中 2 小时 离心 15min, 吸取 20mL 上清液至盛有 8g(NH4)2SO4 和 2mL 磷酸盐缓冲液的离心管中 振荡溶解并温热至 离心 5min, 过滤 5.2 操作程序 (1) 药物制剂和非谷类食物和饲料 : 假如 10% 的对氨基苯磺酸溶液,CNBr 溶液, 在通风橱中用酸式滴定管滴入, 用标准工作液 Π, 如下表制备各管 : 试剂标准空白样品空白标准溶液 (ml) H2O(mL)

6 稀 NH4OH(mL) % 对氨基苯磺酸 稀 HCl(mL) 样品溶液标准溶液 (ml) 稀 NH4OH(mL) CNBr(mL) % 对氨基苯磺酸 (ml) H2O(mL) 上海洪纪仪器设备有限公司 * 注 :CNBr 有毒, 注意通风每只样品都要分别制备样品空白 将标准和样品移入试管中, 分别加入 5mL 蒸馏水作为标准空白和样品空白 转动试管内的液体, 立即加入稀 NH4OH, 转动, 加对氨基苯磺酸, 再次旋转混合 立即加入 0.5mL 稀 HCl, 混匀, 置于光电比色计上, 加入对氨基苯磺酸后约 30s 内在 430 和 450nm 波长之间任意波长调节仪器至 0 的 A 值 从加入稀 NH4OH 开始按标准空白同样的方法处理标准溶液 立即转动管子, 加 CNBr 溶液并再次转动混匀, 在加入 CNBr 溶液后 30s 后转动管子, 加入对氨基苯磺酸溶液, 再转动 立即加入 0.5mL 蒸馏水, 混匀, 加塞, 测量 ( 加入对氨基苯磺酸溶液后 1.5min 时颜色最深, 保留 2min, 然后慢慢褪色 ) 将样品空白设在 0A, 测样品溶液的 A 值 若标准和样品液含量大致相等, 则尼克酸含量与 A 值成正比 (2) 谷类制品 : 取 5 只试管, 其中两只加入 5mL 标准液, 两只加入 5mL 样品液, 另一只加入 5mL 蒸馏水做试剂空白 于一只空白管, 一只标准管和一只样品管各加 10mL 蒸馏水, 将所有管置于冰中冰浴 30min 对剩下的管按顺序加入 10mL 冷的 CNBr,30s 后加入 1.0mL55% 对氨基苯磺酸溶液 用标准空白在 470nm 处, 调比色计为 0A, 加入对氨基苯磺酸后 12-15min 读出其它各管的 A 值 * 放入比色计前, 试管必需冷却一致, 每管必需拭干 如管呈雾状, 浸于热水中片刻, 测定前拭干 6. 计算将扣除试剂空白的标准 A 对尼克酸含量 μg/ml 作图, 画出适宜的直线, 从此图上求出已扣除样品空白和试剂空白后样品校正的 A 所对应的浓度 C Mg 尼克酸 /g 样品 =C/10ng 样品 7. 注意事项 (1) CNBr 溶液有毒, 要注意安全 (2) 样品不同, 处理方法不同, 不要混淆 (3) 注意通风橱的通风 (4) 因为采用比色法测量, 因此样品含有色素易干扰测定, 影响测定结果的正确性 (5) 试管应先用洗衣粉清洗后, 用水冲净, 再放入酸缸中浸泡 1 天左右, 捞出后再用自来水和蒸馏水清洗干净, 凉干, 方可再用 三 复合维生素制剂中的烟酰胺测定 ---- 分光光度法 1. 原理在 PH 约 4.5 处将烟酰胺抽提到 KH2PO4 溶液中, 再与 CNBr 和巴比士酸反应 用分光光度法测定

7 反应产物 烟酸含量超过烟酰胺三倍量时干扰烟酰胺测定 2. 适用范围选自 AOAC; 适用于复合维生素制剂检测 3. 仪器 (1) 搅拌器 (2) 量筒 (3) 锥形瓶 (4) 高压釜 (121,15min) 分光光度计 (550nm) 4. 试剂所用试剂皆为分析纯 ; 所用水皆为蒸馏水 4.1. 烟酰胺标准溶液 : (1) 标准储备液 (250μg/mL):50mgUSP 烟酰胺标准加 60% 乙醇溶解并稀释到 200mL 在 10 贮存 (2) 标准工作液 (5μg/mL): 将少量贮备液温热至室温 取出 2mL 用 0.3%KH2PO4 溶液稀释至 100mL 4.2 其它试剂 (1) 溴化氰溶液 :10%, 将 370ml H2O 温热至 40, 并加入 40gCNBr 振荡至溶解冷却并稀释至 400ml 溶液在冰箱保存 使用前需恢复到室温 * 注 :CNBr 剧毒, 切勿与皮肤接触, 注意在通风橱中操作 (2) 磷酸二氢钾溶液 : A. 13% 的磷酸二氢钾溶液 : 将 30gKH2PO4 用蒸馏水溶解并稀释到 1L B. 3% 的磷酸二氢钾溶液 : 将 3% 的磷酸二氢钾溶液用蒸馏水稀释 (1+9) (3) 巴比土酸缓冲液 : 按每批测定需用量计算, 按每 100mL3%KH2PO4 溶液加 2g 试剂级巴比土酸制备 搅拌 1 小时, 用前过滤 5. 操作步骤 5.1 样品制备 : 取适量样品于锥形瓶中, 加入 0.3% 的 KH2PO4(KH2PO4 的量至少是估计的烟酰胺量的两倍 ) 若样品不易溶解, 则振摇使其分散并用高压釜在 121 下加热 15min 用 0.3% KH2PO4 溶液稀释至 5μg/mL 过滤 用蒸馏水代替 CNBr 分别制备各样品的空白 将 1mL 工作标准液或测定液置于分光光度计比色管中 加 0.5mL CNBr 溶液, 混匀, 塞住, 放置 25-30min, 加 10mL 巴比土酸溶液并旋摇 * 注 : 若 30min 后不能加巴比土酸溶液 将管置于碎冰浴中稳定 CNBr 反应 5.2 用蒸馏水代替 CNBr 做为适当的空白,(550nm, 分光光度计设定在 0A) 颜色最深时测定反应产物的吸光度 * 注 : 加入巴比土酸后 2-4min 时颜色最深, 稳定约 1min, 慢慢褪去 * 注 : 测定样品时, 其放置时间不应超过 30min 加入 CNBr 时应有规律的间隔 1-2min 6. 计算样品中烟酰胺含量 (mg)=(a 5 稀释倍数 )/(A' 1000) 式中 A- 样品吸光度 A'-- 标准吸光度 5-μg 烟酰胺 /ml 标准工作液

8 ( 结果用烟酰胺 mg/ 片报告 ) 7. 注意事项 (1) CNBr 有毒, 应在通风橱中操作 (2) 样品中烟酸含量超过烟酰胺含量的三倍量时会干扰烟酰胺的测定, 因此样品应有明确的烟酸和烟酰胺的含量 (3) 试管应先用洗衣粉清洗后, 用水冲净, 再放入酸缸中浸泡 1 天左右, 捞出后再用自来水和蒸馏水清洗干净, 凉干, 方可再用

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