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洞司空
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1 第 35 卷第 5 期 2016 年 9 月华中农业大学学报 JournalofHuazhongAgriculturalUniversity Vol.35 No.5 Sep.2016,90~96 金鼓鱼幼鱼对脂肪的适宜需要量游翠红林思源王树启李远友汕头大学海洋生物研究所 / 广东省海洋生物技术重点实验室, 汕头摘要为确定金鼓鱼 (Scatophagusargus) 日粮中脂肪的适宜添加量, 以鱼油为脂肪源, 配制脂肪水平分别为 3% 6% 9% 12% 15% 的 5 种等氮的配合饲料 (F1~F5), 在海上网箱中对初始体质量为 4.3g 左右的幼鱼进行为期 8 周的养殖试验, 测定其生长免疫与抗氧化指标内源性消化酶活性等. 结果显示, 增重率特定生长率以饲料脂肪水平为 9% 的 F3 组最大, 与饲料脂肪水平为 12% 和 15% 的两试验组间没有显著差异 ; 蛋白质效率以饲料脂肪水平为 12% 的 F4 组最大, 在 F2~F5 组间没有显著差异 ; 饵料系数以饲料脂肪水平为 9% 的 F3 组最低, 在 F2~F5 组间没有显著差异, 其变化趋势与上述 3 个指标相反 ; 肝体比随饲料脂肪水平的升高而不断上升, 饲料脂肪水平为 15% 的 F5 组鱼的肝体比显著大于 F1 和 F2 组. 饲料脂肪水平也显著影响金鼓鱼的粗脂肪粗蛋白灰分及水分含量. 当饲料脂肪水平为 9% 时, 金鼓鱼胃和肠道的脂肪酶活性较高, 且肠道和肝脏的免疫与抗氧化指标较好. 根据饲料脂肪含量与金鼓鱼的增重率饵料系数分别作曲线回归分析, 确定金鼓鱼饲料脂肪的适宜添加量为 8.6%~11.0%. 关键词金鼓鱼 ; 脂肪需求 ; 生长性能 ; 消化酶 ; 免疫与抗氧化指标中图分类号 S 文献标识码 A 文章编号 1000G2421(2016)05G0090G07 金鼓鱼 (Scatophagusargus) 又名金钱鱼, 栖息于海滨滩涂红树林沼泽入海口海港等处, 是一种广盐性的海水植食性鱼类, 主要分布在印度 - 太平能消化酶活性免疫与抗氧化指标等, 确定金鼓鱼幼鱼饲料中脂肪的适宜添加量, 为后期研发科学合理的金鼓鱼配合饲料提供理论基础. 洋马来群岛菲律宾澳大利亚及东南亚地区, 在我国主要分布在广东福建沿海海域. 金鼓鱼体色会 1 材料与方法随着环境而改变, 具有很高的观赏价值, 是一种重要的海水经济鱼类和观赏鱼类, 已经成为中国南方沿 1.1 试验饲料参考相关研究资料, 本研究以鱼油为脂肪源, 配 [1] 海地区较受欢迎的水产养殖品种之一. 目前, 有关海水植食性鱼类营养需求的研究资料较少. 有研究表明, 点蓝子鱼 (Siganusgutatus) 幼鱼饲料中最适脂肪水平为 13% [2], 黄斑蓝子鱼 (Siganuscanaliculatus) 幼鱼饲料中脂肪适宜添加量为 6% ~9%, 蛋白适宜添加量为 29.01% ~ 制了饲料脂肪水平分别为 3% 6% 9% 12% 15% 的 5 组等氮 (32% 蛋白 ) 的配合饲料 (F1~F5). 所用的饲料原料的营养成分如下 : 酪蛋白的蛋白含量为 80%; 多维含量为 : 每千克中含有 VA IU VB17.5g VB2 16g VB612g VB mg VD IU VE60g VK36g 生物素 100mg 叶酸 34.37% [3], 不同鱼类对脂肪的适宜需要量不一样. 2g 泛酸 36g 烟酸 88g 肌醇 100g 单磷脂 200g; 金鼓鱼作为中国南方一种很有养殖前景的海水鱼类, 有必要研究其对脂肪蛋白等基础营养元素的需求量. 脂肪可为鱼类生长提供能量必需脂肪酸和 [4] 膜脂成分等. 本试验采用 5 组不同脂肪水平的配合饲料投喂金鼓鱼幼鱼 8 周, 通过测定鱼体生长性多矿含量为 : 每千克中含有铁 10g 锌 3.2g 镁 3g 钴 52mg 碘 65 mg 硒 5 mg. 各饲料原料粉碎过 0.25mm 筛, 按配比称量混匀, 加入适量的蒸馏水后, 用饲料膨化机 (SLPG45, 上海渔机所 ) 制成浮性颗粒饲料 ( 粒径约 1mm), 自然风干后, 置于 -20 收稿日期 :2015G12G20 基金项目 : 国家自然科学基金项目 ( ; ; ); 广东省自然科学基金项目 (S ) 游翠红, 博士, 讲师. 研究方向 : 鱼类分子营养.EGmail:chyou@stu.edu.cn 通信作者 : 李远友, 博士, 教授. 研究方向 : 鱼类生理及营养与饲料.EGmail:yyli@stu.edu.cn

2 第 5 期游翠红等 : 金鼓鱼幼鱼对脂肪的适宜需要量 91 冰柜中冷藏保存. 试验饲料的配方与营养成分与抗氧化指标, 胃组织样本用于测定消化酶活性, 肠见表 1. 组织样本用于测定消化酶酸性磷酸酶和碱性磷酸表 1 5 组试验饲料的组成与生化成分 ( 风干物质 ) 酶的活性等. Table1 Ingredientsandcompositionoffive formulatedfeeds(airgdrymater) % 项目 Item 组别 Group F1 F2 F3 F4 F5 饲料原料 Ingredients 酪蛋白 Casein 小麦淀粉 Wheatstarch 鱼油 Fishoil αg 淀粉 αgstarch 纤维素 Celulose 多维 Vitaminpremix 多矿 Mineralpremix Ca(H2PO4) 生化组成 Proximatecomposition 灰分 Ash 粗蛋白 Crudeprotein 粗脂肪 Crudelipid 水分 Moisture 指标测定 1) 生长性能测定. 金鼓鱼的增重率 (weight gainrate,wgr) 特定生长率 (specific growth rate,sgr) 饵料系数 (feedconversionratio,fcr) 蛋白质效率 (proteineficiencyrate,per) 肝体比 (hepatosomaticindex,hsi) 成活率 (survivalrate, SR) 等生长指标的计算公式参照文献 [5]. 日摄食量 (dailyfeedintake,dfi) 计算公式如下 : 日摄食量 (DFI,%/d)=100 (W f -Wr)/ [t ( Wt + W0 )/2] 公式中,W f 为投喂饵料总质量,g;Wr 为收集残饵总质量,g;ΣWt 为终末鱼体总质量,g;ΣW0 为初始鱼体总质量,g;t 为试验天数,d. 2) 生化成分测定. 试验饲料和金鼓鱼全鱼样品的生化成分如水分灰分粗蛋白粗脂肪的测定按照 1.2 试验动物相应的国家标准进行, 见 GB/T GB/T 金鼓鱼幼鱼 ( 平均体质量约 3g) 购自福建诏安, GB/T GB/T 用水车运至汕头大学南澳临海实验站. 养殖试验开始前, 在海上网箱上驯养 4 周. 在驯养期间, 先用冰鲜杂鱼和商业配合饲料 ( 广东海大公司生产的金鲳鱼饲料 ) 混合投喂 2 周, 再用 5 组试验饲料等量混合后投喂. 3) 消化酶活性与免疫抗氧化指标的测定. 采用相关试剂盒 ( 购自中国南京建成生物工程研究所 ) 进行测定, 具体方法详见说明书. 其中, 消化酶包括胃蛋白酶 ( 胃 ) 胰蛋白酶 ( 肠肝脏 ) 脂肪酶 ( 胃肠肝脏 ) 淀粉酶 ( 肠肝脏 ) 等 ; 免疫与抗氧化指标包括 1.3 养殖管理养殖试验在汕头大学南澳临海实验站海上网箱肝脏肠组织的酸性磷酸酶 (acid phosphatase, ACP) 碱性磷酸酶 (alkalinephosphatase,alp) 溶中进行. 试验鱼的初始体质量为 (4.28±0.02)g( 表 2), 分为 5 组, 每组 3 个网箱, 每个网箱放鱼 20 尾. 网箱尺寸为 60cm 60cm 150cm. 试验期间, 每天投喂 2 次 (08:30,16:30), 每次每个网箱轮流投喂 3 遍以半小时内吃完为准 ( 有少量残饵 ). 每天记菌酶 (lysozyme) 超氧化物歧化酶 (superoxidedisg mutase,sod) 谷胱甘肽过氧化物酶 (glutathione peroxidase,gshgpx) 总抗氧化力 (activityinthe anteriorintestine,tgaoc) 过氧化氢酶 (catalase, CAT) 丙二醛 (malonaldehyde,mda) 等. 录鱼死亡情况和投饵量, 养殖时间为 8 周. 养殖期间, 水温 (24±2), 溶氧在 5mg/L 之上. 1.6 统计分析采用 SPSS16.0 软件对试验数据进行 ANOVA 1.4 样本采集养殖试验前后, 用麻醉剂 (0.01% 苯氧基乙醇 ) 分析和 Duncan s 多重比较,P <0.05 表示差异显著. 以饲料脂肪水平与 WGR FCR 作曲线回归分将停食 24h 的金鼓鱼麻醉后逐条称体质量, 测量生析, 确定金鼓鱼饲料中最适的脂肪添加量. 长指标. 另外, 试验结束后, 从每个网箱中随机抽取 3 尾鱼, 保存在 -20 冰箱中用于测定全鱼的生化成分 ; 每个网箱另取 3 尾鱼, 解剖, 取肝脏称质量, 用于测量肝体比指标, 并取胃肠组织. 各组织样本取出后迅速置于液氮中速冻, 之后保存在 -80 冰箱用率结果与分析不同饲料投喂组金鼓鱼的生长性能和饲料利金鼓鱼用不同脂肪水平的饲料饲养 8 周后, 其中备用. 其中, 肝脏样本用于测定消化酶活性免疫生长性能和成活率等见表 2. 不同饲料投喂组的成

3 92 华中农业大学学报第 35 卷活率没有显著差异, 为 84%~87%. 当饲料脂肪水平为 3%~6% 时, 金鼓鱼的日摄食量显著下降. 当饲料脂肪水平为 3%~15% 时,WGR SGR 和 PER 等先上升后下降.WGR 和 SGR 在 9% 脂肪水平时达到最大值, 显著高于饲料脂肪水平为 3% 和 6% 的 2 组鱼 ; 当饲料脂肪水平为 12% 时, 金鼓鱼的 PER 达到最大值, 显著高于饲料脂肪水平为 3% 的试验鱼 ;FCR 则呈现相反趋势, 先下降后上升, 以饲料中含有 9% 脂肪水平的 F3 组最小, 显著低于含有 3% 脂肪水平的 F1 组. 此外,HSI 在不断上升, 饲料脂肪水平为 15% 的 F5 组鱼的 HSI 显著大于 F1 和 F2 组. 上述结果显示, 当饲料脂肪水平在 9% 左右时, 金鼓鱼幼鱼的生长效果最好. 分别以金鼓鱼幼鱼增重率和饵料系数为因变量 (y), 以饲料脂肪水平为自变量 (x), 构建曲线回归方程 :y = x x 2 + 表 x 3 (R 2 =0.972) 和 y= x x e-4x 3 (R 2 =0.999). 当饲料脂肪水平为 11.0% 时, 金鼓鱼的增重率最大 ; 当饲料脂肪水平为 8.6% 时, 金鼓鱼的饵料系数最小. 综上, 金鼓鱼幼鱼饲料适宜的脂肪添加量在 8.6% ~ 11.0% 左右. 2.2 不同饲料投喂组金鼓鱼的生化成分金鼓鱼全鱼的生化成分见表 3. 当饲料中脂肪的添加水平为 3% ~15% 时, 金鼓鱼的水分粗蛋白灰分含量的变化趋势与粗脂肪相反. 当饲料中添加 3% 脂肪时,F1 组鱼的灰分含量显著高于饲料脂肪水平为 12% 和 15% 的 F4 和 F5 组, 其粗蛋白含量显著高于其他 4 组. 饲料脂肪水平为 9% ~ 15% 的 F3~F5 组鱼的粗脂肪含量则显著高于投喂低脂肪水平饲料的 2 个试验组 (F1 和 F2 组 ), 并且, F5 组鱼 ( 饲料脂肪水平为 15%) 的粗脂肪含量显著金鼓鱼的生长性能和饲料利用率 Table2 Growthperformanceandfeedutilizationofjuvenilebuterfishfeddietswithdiferentlevelsoflipid 生长指标 Growthindexes 组别 Group F1 F2 F3 F4 F5 初体质量 /gibw 4.29± ± ± ± ±0.01 末体质量 /gfbw 8.08±0.10c 9.77±0.22b 12.34±0.29a 11.63±0.26a 11.71±0.18a 增重率 /% WGR 88.40±2.36c ±5.44b ±1.25a ±2.55a ±3.56a 蛋白质效率 /% PER 2.11±0.17b 2.64±0.16a 2.70±0.04a 2.79±0.09a 2.62±0.06a 特定生长率 /% SGR 1.13±0.02c 1.47±0.04b 1.86±0.01a 1.82±0.02a 1.80±0.02a 日摄食量 /% DFI 1.77±0.00b 1.75±0.00b 1.98±0.00a 2.08±0.00a 1.93±0.00a 饵料系数 FCR 1.60±0.06a 1.25±0.07b 1.18±0.02b 1.22±0.02b 1.23±0.02b 成活率 /% SR 85.33± ± ± ± ±5.81 肝体比 /% HSI 1.60±0.09b 1.83±0.05b 1.98±0.12ab 2.36±0.07ab 2.47±0.09a 注 : 同行中标注不同字母者表示相互间有显著性差异 (P<0.05). 下表同.Note:Valueswithdiferentletersaresignificantlydiferent inthesamerow (P<0.05).Thenotesofthefolowingtablesaresamewiththistable. 表 3 摄食不同脂肪水平饲料的金鼓鱼幼鱼的生化成分 ( 风干基础 ) Table3 Bodybiochemicalcompositionofbuterfishjuvenilesfeddietswithdiferentlevelsoflipid(drymater) % 组别 Group 灰分 Ash 粗脂肪 Crudelipid 粗蛋白 Crudeprotein 水分 Moisture F1 3.07±0.05a 4.58±0.32d 18.33±1.11a 74.69±0.13a F2 2.96±0.03ab 5.75±0.28c 16.79±0.26b 72.96±0.49ab F3 2.95±0.12ab 7.49±0.11b 17.14±0.77b 70.49±1.15b F4 2.70±0.05b 7.85±0.18ab 15.76±0.15b 70.39±0.27b F5 2.53±0.01c 8.64±0.20a 14.82±0.42b 69.33±0.48b 高于饲料脂肪水平为 9% 的 F3 组. 2.3 不同饲料投喂组金鼓鱼的消化酶活性金鼓鱼消化系统中消化酶活性见图 1~ 图 3. 胃肠道脂肪酶活性随饲料脂肪水平的升高而先上升后下降, 在胃中, 以饲料脂肪水平为 9% 的 F3 组鱼的脂肪酶活性最高, 显著高于饲料脂肪水平为 3% 6% 15% 的其他 3 组 ( 图 1); 在肠道中, 以饲料脂肪水平为 6% 的 F2 组鱼的脂肪酶活性最高, 显著高于饲料脂肪水平为 3% 的 F1 组, 而 F2~F5 组间无显著差异 ( 图 1). 肝脏脂肪酶活性在各组间无显著差异 ( 图 1). 此外, 不同饲料组鱼胃肠道和肝脏中的蛋白酶活性 ( 图 2) 以及肠道肝脏中的淀粉酶活性 ( 图 3) 相互间无显著差异. 2.4 不同饲料投喂组鱼的免疫和抗氧化能力金鼓鱼幼鱼肝脏和肠道的免疫与抗氧化指标见表 4. 在肝脏中,ALP 和 ACP 活性在各组之间无显

4 第 5 期游翠红等 : 金鼓鱼幼鱼对脂肪的适宜需要量 93 相同组织中, 各饲料组间无显著性差异 (P >0.05). 图 3 同. 相同组织中, 柱上标注不同字母者表示相互间差异显著 (P<0.05), 无字母标注表示相互间无显著差异 (P>0.05).ValG uesaremean±se (n=3).inthesametissue,barswithdiferent letersaresignificantlydiferentamonggroups (P<0.05),and barswithoutaleterarenotsignificantlydiferent(p >0.05). 图 1 摄食不同脂肪水平饲料的金鼓鱼幼鱼胃肠道和肝脏脂肪酶活性 Fig.1 Activitiesoflipaseinstomach,intestineandliver ofjuvenilebuterfishfeddietswithdiferentlipidlevels 胃测定胃蛋白酶活性, 肝脏和肠道测定胰蛋白酶活性.Inthe sametissue,there werenosignificantdiferencesamonggroups (P >0.05).ThesameasFig.3.Instomachthepepsinactivitywas determined,andinliverandintestinethetrypsinactivitywasdeg termined. 图 2 摄食不同脂肪水平饲料的金鼓鱼幼鱼胃肠道和肝脏蛋白酶活性 Fig.2 Activitiesofproteaseinstomach,intestineandliver ofjuvenilebuterfishfeddietswithdiferentlipidlevels 图 3 摄食不同脂肪水平饲料的金鼓鱼幼鱼肠道和肝脏淀粉酶活性 Fig.3 Activitiesofamylaseinintestineandliverof juvenilebuterfishfeddietswithdiferentlipidlevels 著性差异 ; 在肠道中, 各组鱼的 ALP 活性亦无显著性差异. 但是, 当饲料脂肪水平在 9% 时, 肠道中 ACP 活性和肝脏中溶菌酶活性最高, 显著高于除 F4 组之外的其他 3 组 (P<0.05). 饲料脂肪水平的上升对肝脏 SOD CAT GSHG Px 等抗氧化指标产生显著影响. 饲料脂肪水平为 12% 的金鼓鱼肝脏 SOD 活性显著高于其他 4 组 (P<0.05), 而饲料脂肪水平为 9% 的金鼓鱼肝脏 CAT 和 GSHGPx 活性最高, 均显著高于饲料脂肪水平为 3%~6% 的试验鱼.TGAOC 活性在各组间无显著差异. 随着饲料脂肪水平的升高, 金鼓鱼肝脏丙二醛含量在不断上升, 其中, 以饲料脂肪水平为表 4 饲料脂肪水平对金鼓鱼幼鱼肠道肝脏免疫与抗氧化指标的影响 Table4 Efectsonimmuneandantioxidantindexesinintestineandliverofbuterfishjuvenilesfeddietswithdiferentlipidlevels 免疫及抗氧化指标组别 Group Immuneandantioxidantindexes F1 F2 F3 F4 F5 肠道 Intestine 酸性磷酸酶活性 /(U/g)ACP 16.62±0.46b 18.69±0.65b 21.37±0.80a 20.84±0.42ab 16.87±0.17b 碱性磷酸酶活性 /(U/g)ALP 13.18± ± ± ± ±0.64 肝脏 Liver 酸性磷酸酶活性 /(U/g)ACP 25.30± ± ± ± ±1.47 碱性磷酸酶活性 /(U/g)ALP 24.16± ± ± ± ±1.17 溶菌酶 /(U/g)Lysozyme 12.17±1.11b 17.53±1.45b 20.13±1.30a 19.78±2.14ab 14.23±0.92b 超氧化物歧化酶 /(U/g)SOD ±21.01c ±13.96c ±28.78b ±4.59a ±13.96b 过氧化氢酶 /(U/mg)CAT 52.74±2.57b 69.29±5.50b 84.12±2.41a 77.86±5.66ab 68.43±9.64b 谷胱甘肽过氧化物酶 /(U/mg)GSHGPx 10.30±2.00b 10.98±2.34b 17.25±1.65a 11.48±1.89b 14.12±1.42ab 总抗氧化力 /(U/mg)TGAOC 2.20± ± ± ± ±0.06 丙二醛 /(nmol/mg)mda 4.48±0.20b 5.19±0.43a 6.02±0.52a 6.67±0.03a 6.88±0.53a

5 94 华中农业大学学报第 35 卷 3% 的 F1 组鱼最低, 显著低于其他 4 组. 3 讨论 3.1 金鼓鱼对饲料脂肪的适宜需求量研究表明, 海水鱼的脂肪需求量高于淡水鱼, 肉食性鱼类要高于杂食性和草食性鱼类. 如石斑鱼 (Epinepheluscoioides) [6] 军曹鱼 (Rachycentron canadum) [7] 等肉食性海水鱼类的脂肪需求量分别为 15.2%~15.4% 和 15%, 而杂食性海水鱼类眼斑拟石首鱼 (Sciaenopsocelatus) 为 7% ~11% [8], 植食性海水鱼黄斑蓝子鱼 (Siganuscanaliculatus) 为 6%~9% [3]. 但是, 同为植食性海水鱼类的点蓝子鱼对脂肪的适宜需求量为 13.94% [2], 与黄斑蓝子鱼差异较大. 本研究发现, 金鼓鱼幼鱼的增重率和特定生长率同在饲料脂肪水平为 9% 时达到最大值, 而此时饵料系数最低, 表明大于 9% 的饲料脂肪水平已超出金鼓鱼生长所需, 过多的饲料脂肪为鱼体提供了过剩能量, 从而降低了鱼的摄食量, 导致其他必要营养成分摄入不足, 影响鱼体生长 [9]. 此外, 饲料脂肪水平为 3% 和 6% 的试验鱼的日摄食量要显著低于其他 3 组, 可能是由于这 2 组饲料中脂肪含量过低, 影响了饲料适口性, 从而影响了金鼓鱼幼鱼的生长, 提示在配制饲料时, 其适口性也是必须考虑到的一个因素 [10]. 当饲料脂肪水平高于 3% 时, 各组间饵料系数无显著性差异, 表明高于 3% 的饲料脂肪水平对金鼓鱼幼鱼的饲料利用率影响不大. 曲线回归分析的结果揭示, 当饲料中添加 8.6%~11.0% 脂肪时, 金鼓鱼幼鱼可以获得最佳的生长性能和饲料利用率. 金鼓鱼饲料脂肪的适宜添加量处于黄斑蓝子鱼与点蓝子鱼这 2 种植食性海水鱼类之间, 但都小于石斑鱼军曹鱼等肉食性海水鱼类, 表明鱼类对脂肪的适宜需求量与其食性密切相关 [11]. 3.2 饲料脂肪水平影响金鼓鱼幼鱼体成分在本研究中, 在 3%~15% 饲料脂肪水平下, 提高脂肪的添加量, 金鼓鱼幼鱼的粗脂肪含量和肝体比指标也随之升高, 暗示多余的日粮脂肪被机体沉积, 鱼肝脏分解脂肪的负担不断加重 [12]. 对奥尼罗非鱼 (Oreochromisniloticus O.laureus) [11] 虹鳟 (Salmogairdneri R.) [13] [3] 黄斑蓝子鱼等鱼类开展相关研究, 结果显示, 饲料脂肪水平的高低直接影 [14] 响鱼类体脂沉积. 然而,Peres 等的研究发现, 当饲料脂肪水平上升到一定程度后欧洲鲈 (DicenG trarchuslabrax) 的体脂水平不再升高. 不同鱼类的研究结果存在差异, 可能是因为不同种鱼类在能量需求利用及脂代谢方面存在差异 [14]. 另外, 饲料中脂肪添加量的上升也导致金鼓鱼幼鱼水分粗蛋白和灰分含量的下降. 对梭鱼 (Chelonhaematocheilus) [15] 真鲷 (Pagrusmajor) [16] [17] 幼鱼和奥尼罗非鱼仔稚鱼的相关研究结果也表明, 饲料脂肪水平提高会导致鱼体粗蛋白等常规营养成分下降, 降低鱼的肌肉品质, 主要是由于过高的脂肪摄入导致粗蛋白质和消化能之间的比例失衡, 进而引起组织肝脏中脂肪堆积, 肌肉渗出性损失增加 [18G19]. 上述研究结果表明, 过高的饲料脂肪水平会引发金鼓鱼粗蛋白等常规营养成分含量下降, 进而降低金鼓鱼的肌肉品质. 3.3 饲料脂肪水平对金鼓鱼脂肪酶活性的影响鱼类机械消化能力较低, 其消化机制主要依赖内源性消化酶, 鱼类对营养成分的吸收能力与消化酶活性密切相关, 消化酶活性的高低影响鱼类生长性能 [20]. 研究显示, 鱼体脂肪酶活性与其饲料中脂肪含量呈正相关关系, 且饲料性质成分等均可对脂肪酶活性产生影响 [21]. [7] [22] 汤宝贵等对军曹鱼涂玮等对尼罗罗非鱼 (O.niloticus) 幼鱼的研究结果揭示, 消化道脂肪酶活性随饲料脂肪水平的升高先上升而后降低. 在本研究中, 金鼓鱼的胃肠道的脂肪酶活性也显现出这 [23] 一现象. 然而, 王重刚等对真鲷稚鱼的研究发现, 其脂肪酶活性与饲料中脂肪水平呈负相关. 上述研究表明, 鱼种类和生长阶段的不同可能导致鱼体对饲料脂肪水平变化的响应有所差异. 金鼓鱼消化道中脂肪酶活性由高到低依次是肠道肝脏和胃, 在卵形鲳鲹 (Trachinotusovatus) 中也有类似的研究报道 [24], 表明肠道是脂肪消化吸收的主要场所, 胃次之 [22]. 肝脏脂肪酶活性在各组间并无显著差异, 可能与肝脏的主要功能是酶原分泌有关, 其并不直接参与脂肪的消化吸收 ; 酶原在消化道中受到底物刺激等被进一步活化, 参与脂肪吸收 [24]. 所以, 适当提高饲料脂肪水平有利于促进金鼓鱼幼鱼消化道的脂肪酶活性, 为促进脂肪的消化吸收提供条件. 3.4 饲料脂肪水平影响金鼓鱼的免疫及抗氧化能力饲料脂肪水平会影响鱼类非特异性免疫系统. 一方面, 饲料脂肪为鱼类提供能量与必需脂肪酸, 当饲料中脂肪含量较低时, 往往必需脂肪酸 (EFAs) 含量也下降, 无法满足鱼体对 EFAs 的需求, 从而导致鱼体免疫和抗氧化能力下降 [25]. 另一方面, 脂肪酸尤其是多不饱和脂肪酸 (PUFA) 的代谢过程中会产生超氧化物自由基丙二醛 (MDA) 等, 这些物质会

6 第 5 期游翠红等 : 金鼓鱼幼鱼对脂肪的适宜需要量 95 对鱼体造成氧化损伤. 所以, 饲料中脂肪含量过高反而会对鱼体免疫与抗氧化能力造成负面影响. 鱼体抗氧化能力的评估指标包括 SOD CAT GSHG [26] Px 等酶活指标, 它们的基本功能是清除超氧阴离子 (O 2- ) 过氧化氢 (H2O2) 等超氧化物自由基. 此外, 总抗氧化力可以反映酶系统和非酶系统抗氧 [27] 化能力的总和, 而 MDA 是脂质过氧化反应的主要代谢产物, 其含量升高表明脂质过氧化反应增强 [28] 氧化应激增强. 在本研究中, 金鼓鱼幼鱼的肝脏 SOD CAT 和 GSHGPx 活性在饲料脂肪水平为 9%~12% 时达到较高水平, 而丙二醛含量随着饲料脂肪水平的增加而不断上升, 表明饲料中添加 9%~ 12% 脂肪有助于增强金鼓鱼幼鱼的抗氧化能力, 而 [29G30] 过高的脂肪添加量又会对这种能力造成损伤, 主要是由于脂类本身是过氧化反应的底物, 外源脂 [29] 肪的添加量与脂类过氧化反应呈正相关关系, 饲料脂肪水平的增加会使得过氧化产物增加, 进而造 [31] 成氧化损伤. ACP 与 ALP 广泛存在于动物的各组织中, 是机体维持内环境稳定保持健康和生长代谢所必需 [32] 的酶, 其受到营养状况等多种因素影响. 溶菌酶广泛存在于各种鱼类的不同组织中, 具有破坏和消除侵入机体内的异物进而发挥防御机能, 与鱼类的 [33] 抗病能力有关. 随着饲料脂肪水平的上升, 金鼓鱼肝脏和肠道 ACP 活性以及肝脏溶菌酶活性均在饲料脂肪水平为 9% 时达到最大值, 说明适宜的饲料脂肪水平对平衡金鼓鱼幼鱼体内物质能量代谢有促进作用, 同时有利于提高金鼓鱼的免疫能力. 但是, 金鼓鱼肝脏溶菌酶活性在饲料脂肪水平为 15% 时显著 [29] 下降, 可能是过多的脂肪堆积导致了肝组织损伤. 参考文献 [1] 兰国宝, 闫冰, 廖思明, 等. 金钱鱼生物学研究及回顾 [J]. 水产科学,2005,24(7):39G40. [2] 朱卫, 刘鉴毅, 庄平, 等. 饲料脂肪水平对点蓝子鱼生长和体成分的影响 [J]. 海洋渔业,2013,35(1):65G71. [3] 王树启, 徐树德, 吴清洋, 等. 黄斑蓝子鱼幼鱼对蛋白质和脂肪适宜需要量的研究 [J]. 海洋科学,2010,34(11):18G22. [4] 陈佳毅, 叶元土, 张伟涛, 等. 不同脂肪 ( 能量 ) 蛋白比饲料对梭鲈幼鱼生长的影响 [J]. 水产学报,2010,34(3):474G480. [5] 赵巧娥, 朱邦科, 沈凡, 等. 饲料脂肪水平对鳡幼鱼生长体成分及血清生化指标的影响 [J]. 华中农业大学学报,2012,31(3): 357G363. [6] TUAN L A,KEVINCC,WILLIAMS K C.Optimum dietary proteinandlipidspecificationsforjuvenile Malabargrouper (Epinephelusmalabaricus)[J].Aquaculture,2007,267(4): 129G138. [7] 汤保贵, 陈刚, 张健东, 等. 饵料系列对军曹鱼仔鱼生长消化酶活力和体成分的影响 [J]. 水生生物学报,2007,31(4):479G484. [8] SIMONCE,ROBERTCR.EfectsofdietarylipidandcarboG hydratelevelongrowthandbodycompositionofjuvenilered drum (Scienopsocelatus)[J].Aquaculture,1991,97(4):383G 394. [9] LUPATSCHI,KISSIL G W,SKLAN D,etal.EfectsofvarG yingdietaryproteinandenergysupplyongrowth,bodycompog sitionandproteinutilizationingiltheadseabream (SparusauG rata L.)[J].AquacultNutr,2001,7(2):71G80. [10] 董书阁, 郭连鹏, 张奎旋, 等. 诱食剂影响乌鳢膨化饲料适口性的研究 [J]. 饲料工业,2010,31(6):26G28. [11] 李坚明, 甘晖, 冯广鹏, 等. 饲料脂肪含量与奥尼罗非鱼幼鱼肝脏形态结构特征的相关性 [J]. 南方水产,2008,4(5):37G43. [12]SANTINHAPJM,MEDALEF,CORRAZEG,etal.Efectsof thedietaryprotein:lipidratioongrowthandnutrientutilizag tioningiltheadseabream(sparusauratal.)[j].aquacultnug tr,1999,5(3):147g156. [13]KAUSHIKSJ,MEDALE F,FAUCONNEAU B,etal.Efect ofdigestiblecarbohydratesonprotein/energyutilizationandon glucosemetabolisminrainbowtrout(salmogairdnerir.)[j]. Aquaculture,1989,79:63G70. [14]PERES H,OLIVAGTELES A.Efectofdietarylipidlevelon growthperformanceandfeedutilizationbyeuropeanseabass juveniles(dicentrarchuslabrax)[j].aquaculture,1999,179: 325G334. [15] 张春暖, 王爱民, 刘文斌, 等. 饲料脂肪水平对梭鱼生长营养物质消化及体组成的影响 [J]. 江苏农业学报,2012(28):1088G [16]OGATA H Y,SHEARERKD.InfluenceofdietaryfatandadiG posityonfeedintakeofjuvenileredseabream Pagrusmajor [J].Aquaculture,2000,189(3/4):237G249. [17] 池作授, 耿旭, 郭云学, 等. 奥尼罗非鱼仔稚鱼饲料中适宜脂肪水平的研究 [J]. 中国饲料,2010(20):32G36. [18] 段彪, 向枭, 周兴华, 等. 齐口裂腹鱼饲料中适宜脂肪需求量的研究 [J]. 动物营养学报,2007,19(3):232G236. [19] 向枭, 周兴华, 陈建, 等. 日粮脂肪水平对翘嘴红鲌幼鱼生长性能和体组成的影响 [J]. 动物营养学报,2009,21(3):411G416. [20] 向枭, 周兴华, 陈建, 等. 饲料蛋白水平及鱼粉含量对齐口裂腹鱼生长体组成及消化酶活性的影响 [J]. 中国粮油学报,2012, 27(5):74G80. [21] 李芹, 刁晓明. 不同饲料对瓦氏黄颡鱼稚鱼生长和消化酶活性的影响 [J]. 水生态学杂志,2009,2(1):98G102. [22] 涂玮, 田娟, 文华, 等. 尼罗罗非鱼幼鱼饲料的适宜脂肪需要量 [J]. 中国水产科学,2012,19(3):436G444. [23] 王重刚, 陈品健, 顾勇, 等. 不同饵料对真鲷稚鱼消化酶活性的影响 [J]. 海洋学报,1998,20(4):103G106. [24] 区又君, 罗奇, 李加儿, 等. 卵形鲳鲹消化酶活性的研究 Ⅰ: 成鱼和幼鱼消化酶活性在不同消化器官中的分布及比较 [J]. 南方水产科学,2011,7(1):50G55. [25]WUFC,TINGYY,CHEN H Y,etal.Docosahexaenoicacidis

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