仅供研究使用, 不可用于临床诊断适用于 Illumina 和 MGI 测序平台兼容全基因组甲基化文库和杂交捕获甲基化文库构建如有问题, 请联系 : IGT Methyl F

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延殿陶
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1 仅供研究使用, 不可用于临床诊断适用于 Illumina 和 MI 测序平台兼容全基因组甲基化文库和杂交捕获甲基化文库构建如有问题, 请联系 : support@igenetech.com I Methyl Fast Library rep Kit v2.0 使用说明书适用于 2022 年新产品体系通用型文库构建试剂盒, 兼容多种样本类型版本号 :B.2,2022 年 8 月文档号 :RO 样本提取文库制备靶向捕获上机测序数据分析

2 版本说明生产公司 : 艾吉泰康 ( 嘉兴 ) 生物科技有限公司使用说明本说明书适用于 I Methyl Fast Library rep Kit v2.0, 使用前请仔细阅读本说明书, 并且严格按照说明书内容进行实验操作试剂盒概述 I Methyl Fast Library rep Kit v2.0 是一款通用型甲基化文库构建试剂盒本试剂盒基于 - 连接原理, 通过连接相应的甲基化接头, 重亚硫酸盐处理后并扩增可构建 Illumina 或 MI 测序平台的甲基化文库, 适用于 20 ng~1 μg DN 起始的全基因组甲基化测序和甲基化杂交捕获测序更新信息使用说明书名称修订日期修订内容摘要 B 年 8 月内容修订 B 年 7 月内容修订 B 年 6 月修改格式年 5 月首次发布 01 /15

3 试剂盒组成完整的文库构建实验流程需要建库模块接头模块和重亚硫酸盐处理模块, 可根据需求配套艾吉泰康的接头模块, 重亚硫酸盐处理模块请自行订购 I Methyl Fast Library rep Kit v2.0 总量管盖颜色组分 16 rxn 96 rxn 黄色 End Repair & -ailing Buffer 124 μl 744 μl 黄色 End Repair & -ailing Enzyme Mix 54 μl 320 μl 蓝色 Ligation Buffer 540 μl 2*1584 μl 蓝色 DN Ligase 88 μl 540 μl 白色 U+ R Master Mix 450 μl 2*1350 μl 保存温度 -20 ± 5 I Methyl dapter & UDI rimer (for Illumina/MI) 总量管盖颜色组分 96*1 rxn 96*10 rxn 蓝色 Methyl dapter (10 μm) 540 μl 4*1350 μl 板装或白色 UDI rimer N (10 μm each)* 8 μl each 96*75 μl 保存温度 -20 ± 5 *N 为 index 编号 02 /15

4 自备的试剂仪器和耗材以下为艾吉泰康推荐品牌, 也可以使用已有满足实验要求的替代试剂和耗材自备试剂序号试剂名称推荐试剂推荐品牌和货号 1 无水乙醇无水乙醇北京化工分析纯 2 Nuclease-Free Water Nuclease-Free Water mbion (at # M9930) 3 纯化磁珠 ( 任选一种使用 ) 4 文库片段质检试剂 ( 请根据仪器选择对应的试剂盒使用 ) gencourt Mure X Kit Beckman oulter (at # 63880) I ure Beads 艾吉泰康 (at # 80661) gilent DN 1000 Kit gilent (at # ) S2 artridge (Standard artridge) BiOptic (at # ) 5 Qubit 定量试剂 Qubit dsdn HS ssay Kit hermo Fisher (at # 47257) 6 重亚硫酸盐处理试剂盒 Epiect Fast DN Bisulfite Kit(50) QIEN (at # 59824) 自备仪器序号仪器名称推荐仪器推荐品牌和货号 1 96 孔 R 管磁力架 DynaMag -96 Side hermo Fisher (at # 12331D) 2 涡旋振荡器市面主流品牌市面主流品牌 3 Qubit 荧光计 Qubit 4.0 Fluorometer hermo Fisher (at # Q33226) 4 片段分析仪 ( 任选一种使用 ) gilent 2100 Bioanalyzer system Qsep 100 gilent (at # 2939) BiOptic (at # Qsep100) 5 微型离心机市面主流品牌市面主流品牌 6 冰盒市面主流品牌市面主流品牌 7 R 仪市面主流品牌市面主流品牌 8 离心机市面主流品牌市面主流品牌自备耗材序号耗材名称推荐耗材推荐品牌和货号 ml 离心管 0.6 ml Maxylear Snaplock Microcentrifuge ube xygen (at # M-060-) 2 Qubit 定量管 (0.5 ml) 市面主流品牌市面主流品牌 ml R 管市面主流品牌市面主流品牌 ml 八连管市面主流品牌市面主流品牌 5 10 μl 移液器枪头市面主流品牌市面主流品牌 μl 移液器枪头市面主流品牌市面主流品牌 03 /15

5 工作原理及流程图 1 dsdn 片段化 30 min 2 末端修复,3 端加 70 min Illumina MI 3 甲基化接头连接 20 min Ligase Ligase 4 连接后纯化 30 min H3 H3 H3 H3 5 重亚硫酸盐处理 90 min U U 6 R 扩增 30 min i5 i7 i7 i5 i5 i7 i7 i5 7 扩增后纯化 30 min i5 i7 Index 1 Index 2 04 /15

6 使用前注意事项欢迎选购艾吉泰康 I Methyl Fast Library rep Kit v2.0, 在使用前请仔细阅读以下注意事项 : 应尽可能使用 260/280 在 1.8~2.0 范围的高质量基因组 DN 如果 DN 260/280 远小于 1.8, 可能存在较多的蛋白质污染 ; 如果 260/230 远小于 2.0, 可能存在较多的胍盐等物质残留如果存在污染, 建议先对 DN 样本进行一轮磁珠纯化, 再进行后续的建库实验为了保证 cfdn 提取质量, 推荐使用 QIamp irculating Nucleic cid Kit, 也可使用其他 cfdn 提取方案, 推荐使用片段分析仪和 Qubit 4.0 进行 cfdn 质检建议投入 20 ng 以上 cfdn 进行建库, 尽可能保证检测突变的灵敏性 cfdn 投入量和测序数据量将直接影响突变的检测灵敏性建议使用 Qubit dsdn HS ssay Kit 进行浓度定量建议在冰盒上配制反应体系需要用到适配 0.2 ml R 管的磁力架建库过程中需要用到片段分析仪, 文库片段分析是文库构建过程中重要的质控步骤建议纯化磁珠为 I ure Beads 或 gencourt Mure X 磁珠, 如用其他品牌磁珠, 请提前摸索磁珠用量重亚硫酸盐处理推荐使用 Epiect Fast DN Bisulfite Kit 试剂盒如果以上均满足, 即可以开始实验 05 /15

7 SE 1 末端修复,3 端加实验备注区需要使用到的试剂 : Fragment End Repair & -ailing ER Buffer Fragment End Repair & -ailing ER Enzyme Mix Nuclease-Free Water Water 需要使用到的仪器 : R 仪 1.1 在进行本步骤的实验之前, 需要将基因组 DN 或 FFE DN 进行片段化处理, 片段大小为 150~200 bp,dn 片段化方法请参考附录一如果投入的 DN 是 cfdn 或严重降解到很小片段的 FFE DN, 则不需要进行片段化处理 1.2 提前将试剂盒中的 End Repair & -ailing Buffer 从 -20 冰箱中取出, 置于冰盒上融化, 融化后短暂涡旋混匀并瞬时离心, 置于冰盒上备用 1.3 将 End Repair & -ailing Enzyme Mix 从 -20 冰箱中取出, 颠倒混匀并瞬时离心, 置于冰盒上备用在冰盒上按下表配制反应体系 : 1.4 在冰盒上按下表配制反应体系 : 试剂 Fragmented DN Nuclease-Free Water End Repair & -ailing Enzyme Mix End Repair & -ailing Buffer 总体积体积 X μl (50-X) μl 3 μl 7 μl 60 μl 1.5 使用移液器吸打混匀 ( 避免剧烈振荡混匀 ), 瞬时离心 1.6 设置 R 仪参数如下, 将反应体系置于 R 仪上, 运行程序 : 温度时间热盖温度 min min 4 Hold 1.7 程序结束后, 立即进行 SE 2 的接头连接反应! 此步骤为不可暂停步骤, 完成后请立即进行下一步 06 /15

SE 2 甲基化接头连接实验备注区需要使用到的试剂 : Fragment Ligation Buffer & ER Buffer Fragment DN Ligase & ER Enzyme Mix Nuclease-Free Water Water Methyl dapter (10 μm) 需要使用到的仪器 : 需要使用到的仪器 R 仪 R 2.

8 SE 2 甲基化接头连接实验备注区需要使用到的试剂 : Fragment Ligation Buffer & ER Buffer Fragment DN Ligase & ER Enzyme Mix Nuclease-Free Water Water Methyl dapter (10 μm) 需要使用到的仪器 : 需要使用到的仪器 R 仪 R 2.1 提前将 Methyl dapter 从 -20 冰箱中取出, 置于冰盒上融化, 融化后短暂涡旋混匀并瞬时离心, 置于冰盒上备用 2.2 根据建库投入的 DN 量, 将 Methyl dapter (10 μm) 提前稀释到合适的浓度 : DN 投入量 Methyl dapter 浓度稀释倍数 50 ng ~1 μg 10 μm 不稀释 25 ng 10 μm 不稀释 10 ng 5 μm 稀释 2 倍 5 ng 2.5 μm 稀释 4 倍 2.5 ng 1.25 μm 稀释 8 倍 1 ng 625 nm 稀释 16 倍 Methyl daper 投入量过高可能会导致 Methyl dapter 自连 ; 投入量不足时会影响连接效率, 导致文库产出降低 2.3 提前将试剂盒中的 Ligation Buffer 从 -20 冰箱中取出, 置于冰盒上融化, 融化后暂涡旋混匀并瞬时离心, 置于冰盒上备用 2.4 将 DN Ligase 从 -20 冰箱中取出, 颠倒混匀并瞬时离心, 置于冰盒上备用 2.5 在冰盒上按下表配制反应体系 : 试剂来自 SE 1 反应结束的样品 Methyl dapter ( 稀释后 ) Ligation Buffer DN Ligase Nuclease-Free Water 总体积体积 60 μl 5 μl 30 μl 5 μl 10 μl 110 μl 如果一次操作样本量比较多, 需要对反应试剂进行预混合, 请不要将 Methyl dapter 进行预混合最佳操作方式是先将 Methyl dapter ( 稀释后 ) 和 SE 1 反应结束的样品进行混合后, 再将预混合反应试剂加入, 这样可以有效降低接头自连 2.6 使用移液器吸打混匀 ( 避免剧烈振荡混匀 ), 瞬时离心 2.7 设置 R 仪参数如下 ( 关闭热盖或不加盖热盖 ), 将 R 管置于 R 仪上, 运行程序 : 07 /15

9 温度时间关闭热盖或不加盖热盖 ( 开盖 ) min 4 Hold 实验备注区为了提高连接反应效率, 尤其是低投入量的样本, 可以考虑增加连接反应时间, 最高可以增加为 4 h, 或者 4 过夜连接 ; 但是连接时间过长也会增加 Methyl dapter 自连 2.8 程序结束后, 立即进行 SE 3 的磁珠纯化! 此步骤为不可暂停步骤, 完成后立即进行下一步 08 /15

10 SE 3 连接后纯化实验备注区需要使用到的试剂 : 纯化磁珠 (I ure Beads) 80% 乙醇 ( 新配制 ) Nuclease-Free Water 需要使用到的仪器 : 磁力架! 纯化使用磁珠为 I ure Beads 或 gencourt Mure X, 若选用其它品牌纯化磁珠, 需咨询对应供应商, 并通过预实验摸索合适的磁珠比例, 避免纯化失败 3.1 提前用无水乙醇和 Nuclease-Free Water 配制 80% 乙醇, 并置于室温备用, 请尽量使用新鲜配制的 80% 乙醇用于磁珠纯化 3.2 提前从 4 冰箱中取出纯化磁珠, 混匀并置于室温平衡 30 min; 将已经平衡至室温的纯化磁珠, 涡旋混匀后备用 3.3 在 SE 2 完成后的 110 μl 反应体系中加入 0.8 倍体积的磁珠 (88 μl), 吸打或涡旋混匀, 室温静置 5 min 3.4 瞬时离心, 将 R 管置于磁力架上 3 min, 待溶液澄清 3.5 保持 R 管在磁力架上, 小心移弃上清, 向 R 管内加入 200 μl 80% 乙醇溶液, 静置 30 s 3.6 保持 R 管在磁力架上, 移弃上清, 再次向 R 管内加入 200 μl 80% 乙醇溶液, 静置 30 s, 移弃上清 3.7 盖上管盖, 瞬时离心, 将残留乙醇离心至管底, 将 R 管置于磁力架上, 小心使用 10 μl 移液器移弃底部残留的乙醇, 注意不要吸到磁珠 3.8 保持 R 管在磁力架上, 室温静置 3~5 min, 晾干磁珠, 使残留的乙醇彻底挥发 3.9 加入 22 μl Nuclease-Free Water, 将 R 管从磁力架上取下, 吸打或涡旋混匀, 室温静置 2 min 3.10 瞬时离心, 将 R 管置于磁力架上 2 min, 待溶液澄清 3.11 用移液器吸取 20 μl 上清液, 转移到新的 R 管中, 做好标记, 准备 SE 4 反应此步骤为可暂停步骤, 可于 -20 冰箱中保存 1 个月 09 /15

11 SE 4 重亚硫酸盐处理实验备注区需要使用到的试剂 : Epiect Fast DN Bisulfite Kit 无水乙醇需要使用到的仪器 : 离心机 R 仪 a. DN rotect Buffer Buffer BD Spin olumns 保存于 4, 其余 Buffer 保存于室温 b. Buffer BD Buffer BW 使用前根据要求加入无水乙醇 c. arrier RN 使用 Nuclease-Free Water 根据要求进行溶解, 溶解后的 arrier RN 放置在 -20 保存 d. 使用前应检查试剂是否有结晶, 如有结晶可 37 预热溶解 e. 实验过程中, 环境温度应在 20 以上, 温度过低易导致实验失败 4.1 根据下表配置重亚硫酸盐转化反应体系 : 试剂来自 SE 3 结束的样品 Bisulfite Solution DN rotect Buffer 总体积体积 20 μl 85 μl 35 μl 140 μl 4.2 R 管内液体加入 DN rotect Buffer 后变为蓝色, 移液器吹打混匀 6 次, 然后分成两管置于 R 仪上 ( 注意 : 做好标记 )! 由于反应液体积比较大, 需要分装成 2 个 R 管, 置于 R 仪上进行反应 4.3 设置 R 仪程序如下, 将反应体系置于 R 仪上, 运行程序 : 温度时间热盖温度 min min 95 5 min min 20 Hold 4.4 纯化 : 将上步反应结束后的两管样品混合, 向 E 管内加入 310 μl Buffer BL 和 1μL arrier RN (1 μg/μl)( 注 :DN 投入大于 200 ng 则可以不加 arrier RN), 加入 250 µl 无水乙醇及全部样品, 震荡混匀, 瞬时离心后加入离心柱对于少量 DN 的纯化, 加入 arrier RN 可提高 DN 回收效率 10 /15

12 4.4.2 室温静置 1 min 后 12,000 r/min 离心 1 min, 将收集管中的液体重新转移至离心柱中, 室温静置 1 min, 相同转速再离心 1 min, 将离心柱从离心管内取出, 弃去管内废液后将离心柱放回离心管内实验备注区向离心柱内加入 500 μl Buffer BW( 注意是否已加乙醇 ),12,000 r/min 离心 1 min, 将离心柱从离心管内取出, 弃去管内废液后将离心柱放回离心管内向离心柱内加入 500 μl Buffer BD( 注意是否已加乙醇 ), 室温静置孵育 15 min,12,000 r/min 离心 1 min, 将离心柱从离心管内取出, 弃去管内废液后将离心柱放回离心管内向离心柱内加入 500 μl Buffer BW( 注意是否已加乙醇 ),12,000 r/min 离心 1 min, 将离心柱从离心管内取出, 弃去管内废液后将离心柱放回离心管内重复步骤一次向离心柱内加入 250 µl 无水乙醇,12,000 r/min 或离心机最大转速离心 1 min, 将离心柱从离心管内取出, 弃去离心管内废液 ; 将离心柱放回离心管中, 再次 12,000 r/min, 离心 1 min, 用 10 μl 移液器将离心柱中圆圈上的残留液体吸出 ( 离心柱应严格避免乙醇残留 ) 将离心柱转移至新的 1.5 ml 离心管内, 加入 22 µl Nuclease-Free Water, 静置 2 min 后 12,000 r/min 离心 1 min; 将离心管中的液体重新转移至离心柱中, 室温放置 1 min, 相同转速再离心 1 min, 用 10 μl 移液器将离心柱中圆圈上的残留液体吸出转入 1.5 ml 离心管内弃去离心柱, 保留离心管内纯化产物, 做好标记, 准备 SE 5 反应 11 /15

13 SE 5 R 扩增实验备注区需要使用到的试剂 : U+ R Master Mix UDI rimer 需要使用到的仪器 : R 仪 5.1 提前将试剂盒中的 U+ R Master Mix 从 -20 冰箱中取出, 置于冰盒上融化, 融化后颠倒混匀并瞬时离心, 置于冰盒上备用 5.2 提前将试剂盒中 UDI rimer (Index primer) 从 -20 冰箱中取出, 置于冰盒上融化, 融化后短暂涡旋混匀并瞬时离心, 置于冰盒上备用 5.3 在冰盒上配制 R 反应体系, 请记录好所使用的 Index 号 : 试剂体积来自 SE 4 反应结束的样品 20 μl U+ R Master Mix 25 μl UDI rimer 5 μl 总体积 50 μl 5.4 使用移液器吸打混匀 ( 避免剧烈振荡混匀 ), 瞬时离心 5.5 设置 R 仪程序如下, 将反应体系置于 R 仪上, 运行程序 : 温度时间 R 循环数热盖温度 min s s s N cycles 72 1 min 1 4 Hold 1 样本投入量 R 循环数 N ( 文库产出 1 μg) 1 μg 7~8 500 ng 8~9 250 ng 10~ ng 11~12 50 ng 12~13 10 ng 16~17 5 ng 18~ ng 19~ 程序结束后进行 SE 6 的磁珠纯化 R 反应产物可以短暂保存于 -20 冰箱中, 请尽量立刻进行产物纯化, 以保证文库质量 12 /15

14 SE 6 扩增后纯化实验备注区需要使用到的试剂 : 纯化磁珠 (I ure Beads) 80% 乙醇 ( 新配制 ) Nuclease-Free Water 需要使用到的仪器 : 磁力架 6.1 将已经平衡至室温的纯化磁珠, 涡旋混匀后备用 6.2 在 SE 5 的 R 产物中, 加入 1 倍体积的磁珠 (50 μl), 吸打或涡旋混匀, 室温静置 5 min 6.3 瞬时离心, 将 R 管置于磁力架上 3 min, 待溶液澄清 6.4 保持 R 管在磁力架上, 小心移弃上清, 向 R 管内加入 200 μl 80% 乙醇溶液, 静置 30 s 6.5 保持 R 管在磁力架上, 移弃上清, 再次向 R 管内加入 200 μl 80% 乙醇溶液, 静置 30 s, 移弃上清 ; 6.6 盖上管盖, 瞬时离心, 将残留的乙醇离心至管底, 将 R 管置于磁力架上, 小心使用 10 μl 移液器移弃底部残留的乙醇, 注意不要吸到磁珠 6.7 保持 R 管在磁力架上, 室温静置 3~5 min, 晾干磁珠, 使残留的乙醇彻底挥发 6.8 加入 30 μl 的 Nuclease-Free Water, 将 R 管从磁力架上取下, 吸打或涡旋混匀, 室温静置 2 min 6.9 瞬时离心, 将 R 管置于磁力架上 2 min, 待溶液澄清 6.10 用移液器吸取 28 μl 上清液, 转移到新的 R 管中, 做好标记 6.11 取 1 μl 文库使用 Qubit dsdn HS ssay Kit 进行文库浓度检测, 记录文库浓度 6.12 取 1μL 文库使用片段分析仪进行片段文库长度检测实验结束! 13 /15

15 附录一基因组 DN 片段化运用以下三种方案得到的片段化 DN, 均可使用本试剂盒进行基因组 DN 文库构建 cfdn 和严重降解成小片段的 FFE DN 无需进行基因组 DN 片段化操作本试剂盒不包含打断所需试剂和耗材, 打断试剂和耗材具体使用方法, 请参照试剂和耗材生产商的使用说明本说明书提供的 DN 片段化参数和条件, 仅针对完整的基因组 DN 对于 FFE DN 和其他因素降解的 DN, 可根据 DN 降解程度, 对 DN 片段化条件进行调整对于 FFE DN, 为提高文库质量和产出, 可以考虑先对 FFE DN 进行修复, 再做 DN 片段化处理和文库构建, 值得注意的是,FFE DN 的修复会导致突变检测假阳性率升高方案一采用 Bioruptor ico 超声仪进行 DN 片段化 1. 将 1 ng~1 μg 基因组 DN 加入到 0.6 ml 离心管中, 加入 Nuclease-Free Water 补齐至总体积为 35 μl, 充分混匀, 瞬时离心后置于冰上待用 2. 提前打开 Bioruptor ico 超声仪, 开启冷循环待循环水温降至 4 Bioruptor ico 超声仪工作前, 请务必确认循环水温在 4 左右, 防止温度过高 3. 设置参数 ON 30 s,off 30 s 为 1 个循环, 每 10 cycles 为一轮, 共进行 3 轮超声循环, 每轮结束后将样本置于涡旋振荡器上充分混匀, 瞬时离心后进行下一轮超声循环 ( 混匀越充分,DN 片段分布越集中 ) 每一轮超声循环结束后, 如果循环水温过高, 请等待水温降至 4 后再使用 4. 取 1 μl 样品使用片段分析仪进行片段检测, 片段化后 DN 主峰约在 150 bp~200 bp DN 片段化结束后, 如不能立刻进行下一步实验, 可将片段化的 DN 在 -20 条件短暂存储方案二采用 ovaris 超声仪进行 DN 片段化 1. 往水槽中加入新的去离子水至 FILL 10~15 刻度, 确保液面没过 ovaris 打断管玻璃部分, 设置冷却装置温度为 4 2. 打开 SonoLab 软件, 打开软件界面上的排气按钮进行排气, 待软件界面显示水槽内水温降至 5 3. 在离心管中将基因组 DN 用 1 Low E Buffer 稀释到 35 μl, 将 35 μl DN 加入 ovaris 打断管中, 避免产生气泡 4. 将 ovaris 打断管固定在样本支架上, 放入水槽中, 设置如下参数, 进行 DN 超声片段化处理设置参数 Duty Factor 10% eak Incident ower 175 ycles per Burst 200 reatment ime 360 s Bath emperature 4 ~8 5. 取 1 μl 样品使用片段分析仪进行片段检测, 片段化后 DN 主峰约在 150 bp~200 bp DN 片段化结束后, 如不能立刻进行下一步实验, 可将片段化的 DN 在 -20 条件短暂存储 14 /15

方案三采用片段化酶进行 DN 片段化 1. 若使用酶切试剂盒进行基因组 DN 片段化处理, 请选用合适的酶切试剂盒, 例如 :K Frag Kit for Enzyme Fragmentation; 根据需要条带大小按照说明书中的建议设置酶切反应参数, 实验流程请按照酶切法建库试剂盒说明书操作 2.

16 方案三采用片段化酶进行 DN 片段化 1. 若使用酶切试剂盒进行基因组 DN 片段化处理, 请选用合适的酶切试剂盒, 例如 :K Frag Kit for Enzyme Fragmentation; 根据需要条带大小按照说明书中的建议设置酶切反应参数, 实验流程请按照酶切法建库试剂盒说明书操作 2. 使用酶切试剂盒时需注意 DN 样品中是否含有 ED, 如果有 ED, 建议建库前对样本进行纯化, 溶于 DN 中含有 ED 时需要使用 K Frag onditioning Solution, 具体参照 K Frag onditioning Solution 说明书 3. 酶切片段化反应完成后需要对 DN 片段进行纯化, 去除反应体系中的酶和 Buffer, 避免影响下一步反应 DN 片段化结束后, 如不能立刻进行下一步实验, 可将片段化的 DN 在 -20 条件短暂存储网址 : 邮箱 :support@igenetech.com 电话 : 总部地址 : 北京市昌平区中关村生命科学园生命园路 8 号院一区 9 号楼座 3 层嘉兴子公司地址 : 浙江省嘉兴市嘉善县大云镇宏业路 371 号 2 号楼官方微信仅供研究使用, 不可用于临床诊断版权声明 : 本手册版权属于艾吉泰康生物科技 ( 北京 ) 有限公司及其子公司所有, 未经本公司书面许可, 任何其他个人或组织不得以任何形式将本手册中的各项内容进行复制拷贝编辑或翻译成其他语言本手册中所有商标或标识均属于艾吉泰康生物科技 ( 北京 ) 有限公司其子公司及其所有者所有版本号 :B.2,2022 年 8 月文档号 :RO /15

产品简介康为二代测序快速 DNA 建库试剂盒 (Ion torrent) 提供了构建 DNA 文库需要的酶预混体系及反应缓冲液, 包含除接头以外的所有成分, 制备的文库可用于 Ion torrent PGM Ion Proton 二代测序平台的测序和常规建库方法相比, 该试剂盒将多个步骤进行了合并

产品简介康为二代测序快速 DNA 建库试剂盒 (Ion torrent) 提供了构建 DNA 文库需要的酶预混体系及反应缓冲液, 包含除接头以外的所有成分, 制备的文库可用于 Ion torrent PGM Ion Proton 二代测序平台的测序和常规建库方法相比, 该试剂盒将多个步骤进行了合并微信订购 : 扫一扫右侧二维码网站订购 :www.cwbiotech.com 服务热线 :4006-222-360 版本号 :10/2016 NGS Fast DNA Library Prep Set for Ion Torrent 目录号 :CW2639S (24 rxns) CW2639M (96 rxns) 保存条件 :-20 保存, 干冰运输产品内容 Component CW2639S

仅供研究使用, 不可用于临床诊断 适用于 Illumina 和 MGI 测序平台 兼容全基因组甲基化文库和杂交捕获甲基化文库构建 如有问题, 请联系 : IGT Methyl F

仅供研究使用, 不可用于临床诊断适用于 Illumina 和 MGI 测序平台兼容全基因组甲基化文库和杂交捕获甲基化文库构建如有问题, 请联系 : IGT Methyl F