NRM605

VAHTS Universal V8 RNA-seq Library Prep Kit for MGI NRM605 Vazyme Biotech Co., Ltd. Web: Tel: 400-600-9335 Sales: sales@vazyme.com Support: support@vazyme.com Service: service@vazyme.com 使用说明书 Version 21.1

目 录 Contents 01/产品概述 VAHTS Universal V8 RNA-seq Library Prep Kit for MGI是针对MGI高通量测序平台定向开发的转 录组文库构建专用试剂盒 试剂盒包含两种类型的cDNA二链合成Buffer 可根据需要选择普通 转录组或链特异转录组建库 试剂盒将二链合成 末端修复和dA-Tailing合并为一步 中间不需要纯化步骤 极大的简化了操 作流程 缩短了建库 优化的反应体系 提高了文库转化效率 能兼容更低起始投入量 对 不同起始量的RNA都有均一的覆盖度 本试剂盒利用磁珠分选的方式 可以快速获得特定长度的文库 能够满足不同实验的个性化需 求 试剂盒包含的所有酶和缓冲液都经过了严格的质量控制和功能验证 最大程度上保证了文库 构建的稳定性和重复性 02/产品 2 Frag/Prime Buffer 1st Strand Buffer 3 1st Strand Enzyme Mix 3 2nd Strand Buffer 2 (with dntp) 2nd Strand Buffer 2 (with dutp) 2nd Strand Enzyme Super Mix 2 Rapid Ligation Buffer 4 Rapid DNA Ligase 4 PCR Primer Mix 5 for MGI 2 HF Amplification Mix NRM605-01 (24 rxns) 240 168 48 600 600 360 600 120 120 600 NRM605-02 (96 rxns) 960 672 192 4 600 4 600 2 720 4 600 480 480 4 600 产品表中标注的颜色代表各管盖颜色 03/保存条件 -30 ~ -15 保存 0 运输 01/产品概述... 02 02/产品... 02 03/保存条件... 02 04/适用范围... 02 05/自备材料... 03 06/注意事项... 04 07/实验原理与流程概要... 05 08/实验流程... 07 09/常见问题与解决方案... 17 附录 纯化分选方案... 19 *所有商标均属于各自商标所有者的财产 某些商标并未在全部行政区注册 04/适用范围 VAHTS Universal V8 RNA-seq Library Prep Kit for MGI适用于完整度良好的动植物及真菌等真核 生物总RNA 经Poly(A)法富集的mRNA 经rRNA去除后的RNA文库构建 不同样品的总RNA 中mRNA的含量差异较大 若总RNA起始投入量过低 则不能确保得到足够的mRNA用于后续文 库构建实验 起始量与前端模块有关 VAHTS mrna Capture Beads (Vazyme #N401) 0.01-4 μg Ribo-off rrna Depletion Kit (Human/Mouse/Rat) (Vazyme #N406) 0.01-1 μg Ribo-off rrna Depletion Kit (Bacteria) (Vazyme #N407) 0.01-5 μg Ribo-off Globin & rrna Depletion Kit (Human/Mouse/Rat) (Vazyme #N408) 0.01-1 μg 01/ 02

Ribo-off rrna Depletion Kit (Plant) (Vazyme #N409) 1-5 μg Agilent DNA 00 Kit (Agilent #5067-1504) 纯化的mRNA或Ribosomal-depleted RNA直接建库 0.5-0 ng 或Agilent High Sensitivity DNA Kit (Agilent #5067-4626) 总RNA样本可用Agilent 20 Bioanalyzer进行质控 检测其完整度 使用VAHTS mrna Capture Beads(Vazyme #N401)进行mRNA富集必须为高质量的RNA样本(RIN 7) 降解 的样本会发生RNA断裂 建库会引入3'偏好 针对RIN<7的RNA样本可使用Ribo-off的方法 其他材料 80%乙醇(现配) Nuclease-free ddh2o 低吸附Nuclease-free PCR管及吸头 离心管 PCR仪 磁力架 Qubit Agilent 20 Bioanalyzer或其他等效产品 (Vazyme #N406/407/408/409) 针对RNA的分析主要包括以下几个方面 基因表达(gene expression analysis) 单核苷酸变异(single nucleotide variation calling) 可变剪切(alternative splicing detection) 融合基因(gene fusion detection) 目标转录析(target transcriptome analysis) 05/自备材料 RNA评价 Equalbit RNA HS Assay Kit (Vazyme #EQ211) Equalbit RNA BR Assay Kit (Vazyme #EQ212) Agilent RNA 6000 Pico Kit (Agilent #5067-1513) RNA前处理 VAHTS mrna Capture Beads (Vazyme #N401) Ribo-off rrna Depletion Kit (Human/Mouse/Rat) (Vazyme #N406) Ribo-off rrna Depletion Kit (Bacteria) (Vazyme #N407) Ribo-off Globin & rrna Depletion Kit (Human/Mouse/Rat) (Vazyme #N408) Ribo-off rrna Depletion Kit (Plant) (Vazyme #N409) 纯化磁珠 VAHTS DNA Clean Beads (Vazyme #N411) 06/注意事项 06-1/RNA样品质控 为保证建库质量 在实验开始前必须对RNA样品进行质控 RNA样品总量 纯度须满足以下条件 总RNA模板的起始投入量应 ng 若起始投入量过低 不能确保得到足够的mRNA用于后 续文库构建 OD260/OD280比值应介于1.8-2.1之间 若比值>2.1则RNA样品中可能有基因组污染 若比值 <1.8则可能有蛋白质污染 OD230/OD260比值应介于0.4-0.5之间 若比值>0.5则可能RNA 样品中有盐或小分子杂质污染 比值<0.4可能有基因组污染 06-2/RNA样品准备 混匀含RNA样品的溶液时应小心操作 轻柔吹打 切勿涡旋振荡 否则会使RNA断裂 影响 文库片段大小 经Poly(A)法富集的mRNA或去除rRNA后的RNA应尽快进行后续操作 避免RNA降解 如果RNA的初始浓度较低时 可使用冻干 乙醇沉淀 过柱回收或VAHTS RNA Clean Beads (Vazyme #N412)磁珠纯化等方法浓缩RNA 06-3/DNA纯化磁珠的注意事项 磁珠从2 ~ 8 取出后应平衡至室温 否则影响磁珠的抓取效率 每次吸取磁珠前都应将其涡旋振荡充分混匀 样品与磁珠充分混匀后置于磁力架上 待溶液彻底澄清后再吸取上清 吸取上清时应余留2 - 或Agencourt AMPure XP Reagent (Beckman #A63880/A63881/A63882) 3 若不慎吸到磁珠 会造成得率下降 分选效果不佳甚至影响后续反应 此时可将磁珠 VAHTS RNA Clean Beads (Vazyme #N412) 混匀重新置于磁力架上再次分离 由于磁力架吸力不同等原因 默认分离有时可能需要 或Agencourt RNA Clean XP Beads (Beckman #A63987) 延长 以彻底分离磁珠和液体 连接接头 VAHTS RNA Adapters Set 8 for MGI (Vazyme #NM208) 文库质控 Equalbit 1 dsdna HS Assay Kit (Vazyme #EQ121) 使用新鲜配制的80%乙醇漂洗磁珠 久置的80%乙醇会导致杂质残留以及文库产出降低 漂 洗过程中EP管应始终置于磁力架中 请勿扰动磁珠 第二遍80%乙醇漂洗磁珠操作 应尽量吸干上清 减少杂质残留 产物洗脱前应将磁珠置于室温干燥 干燥不充分容易造成无水乙醇残留影响后续反应 干燥 过度又会导致磁珠开裂进而降低纯化得率 通常情况下 室温5 - min足以让磁珠充分干燥 请勿加热处理(如置于37 烘箱) 03/ 04

06-4/操作过程注意事项 RNA片段化及随机引物结合 使用前请将试剂盒各置于冰上解冻 解冻后上下颠倒数次充分混匀 短暂离心后 置于冰上待用 cdna Library Preparation 建议使用带滤芯的吸头 在吸取不同样品时更换吸头 cdna一链合成 在二链合成前使用的耗材必须为RNase-free 二链合成及之后为DNase-free 实验过程中务必使用新鲜的Nuclease-free ddh2o 建议分装至小管中逐个取用 用后弃去 务必佩戴手套操作 接触RNase-free空间外设备或其他工作区间后 请更换手套 所有的试剂使用后务必立即盖上盖子 避免污染 推荐在带热盖的PCR仪中进行各反应步骤 使用前应预热PCR仪至反应附近 cdna二链合成 ds cdna末端修复以及 da-tailing整合为一步 大大缩短建库时 长 同时提供链特异性和非链特异性文 库构建方案 cdna二链合成 ds cdna末端修复及da-tailing 链特异性文库 非链特异性文库 PCR产物因操作不当极容易产生气溶胶污染 进而影响实验结果准确性 因此 我们 推荐将PCR反应体系配制区和PCR产物纯化检测区进行强制性的物理隔离 使用专用 的移液器等设备 并定时对各实验区域进行清洁 以保证实验环境的洁净度 接头连接 实验过程中如需暂停 请严格按照使用方法中注明的可停放点将样品放置于合适的温 度下保存 不正确存放可能会降低建库成功率 07/实验原理与流程概要 Starting Material RNA Enrichment 片段分选 纯化方案 分选方案 磁珠纯化 两轮分选 纯化方案 获得150-200 bp插入片段 分选方案 进行两轮分选 插入片段长 度可以个性化选择 Input RNA 总RNA (RIN 7) 总RNA mrna 抓取 rrna 去除 VAHTS mrna Capture Beads (Vazyme #N401) Ribo-off rrna Depletion Kit (Human/ Mouse/Rat) (Vazyme #N406) Ribo-off rrna Depletion Kit (Bacteria) (Vazyme #N407) Ribo-off Globin & rrna Depletion Kit (Human/Mouse/Rat) (Vazyme #N408) Ribo-off rrna Depletion Kit (Plant) (Vazyme #N409) FFPE RNA PCR富集 rrna 去除 0.9 磁珠纯化 Ribo-off rrna Depletion Kit (Human/Mouse/Rat) (Vazyme #N406) 文库质控 05/ 06

08/实验流程 13. 准备Frag/Prime Buffer(1 ) 在一个Nuclease-free离心管中配制如下反应液 /目标RNA分离与片段化 方案A mrna富集法 以使用VAHTS mrna Capture Beads(Vazyme #N401)进行mRNA富集为例 本方案适用 于起始模板量为0.01-4 μg完整度良好的动植物及真菌等真核生物的总rna的转录组文库 构建 Nuclease-free ddh2o 2 Frag/Prime Buffer 20 14. 将样品从磁力架上取出 加入18.5 Frag/Prime Buffer(1 )重悬磁珠 使用移液器轻轻吸打 次充分混匀 将样品置于PCR仪中 根据插入片段大小的需要 选择片段化条件 1. 提前将mRNA Capture Beads Beads Wash Buffer Tris Buffer Beads Binding Buffer 从2 ~ 8 取出 静置使其平衡至室温 2. 准备RNA样品 将0.01-4 μg总rna溶解于nuclease-free ddh2o至总50 冰上 放置备用 3. 缓慢颠倒使mRNA Capture Beads充分混匀 吸取50 加入到准备好的RNA样品中 使 插入片段大小(bp) 150-200 200-300 250-450 450-550 打断条件 94 94 85 85 8 min,4 5 min,4 6 min,4 5 min,4 从片段化到第一链cDNA合成过程中不可停留 mrna在该体系下容易降解 可提前将08-2(步骤1)需要的从-30 ~ -15 取出 冰上放置备用 用移液器轻轻吸打次充分混匀 mrna Capture Beads Beads Wash Buffer和Beads Binding Buffer含去污剂 混匀时请勿高速 涡旋或剧烈振荡 使用移液器吸打时避免起泡 15. 将样品置于磁力架上 待溶液变澄清后(约5 min) 小心吸取16 上清至一个新的Nuclease-free PCR管中 立刻进行第一链cDNA合成反应 4. 在PCR仪中运行如下程序 使mRNA与磁珠进行第一次结合 65 25 5 min 5 min 5. 将样品置于磁力架上 待溶液澄清后(约5 min) 小心移除上清 6. 将样品从磁力架上取出 加入200 Beads Wash Buffer重悬磁珠 使用移液器轻轻吸 打次充分混匀并置于磁力架上 待溶液澄清后(约5 min) 小心移除上清 步骤4-6为第一轮mRNA分离纯化 步骤7-12为第二轮mRNA分离纯化 以保证rRNA的去除效率 对于某些特殊样本 为保证rRNA的去除效率 可重复步骤6再清洗一次 7. 将样品从磁力架上取下 加入50 Tris Buffer用移液器轻轻吸打次将磁珠充分混匀 8. 在PCR仪中运行如下程序 洗脱mRNA 80 25 2 min 9. 加入50 Beads Binding Buffer 使用移液器轻轻吸打次充分混匀 方案B rrna去除法 以使用Ribo-off rrna Depletion Kit(Human/Mouse/Rat)(Vazyme #N406)为例 本方案适用于 起始模板量为0.01-1 μg Human Mouse Rat等物种总RNA全转录组文库构建 1. 准备总RNA样品 在一个Nuclease-free离心管中 用Nuclease-free ddh2o将0.01-1 μg总rna 稀释至11 冰上放置备用 2. RNA样品与探针杂交 a.在一个nuclease-free离心管中配制如下反应液 rrna Probe (H/M/R) Probe Buffer 总RNA 1 3 11 15 使用移液器轻轻吸打次充分混匀 如同时进行多个样品 可先在大小合适的离心管中预配制rRNA Probe(H/M/R)和Probe Buffer的混合液 再 分装到各Nuclease-free PCR管中 建议按照实际反应数1.1倍配制混合液以弥补损耗. 室温放置5 min 使mRNA结合到磁珠上 11. 将样品置于磁力架上 使mRNA与总RNA分离 待溶液变澄清后(约5 min) 小心移除上 清 12. 将样品从磁力架上取出 加入200 Beads Wash Buffer重悬磁珠 使用移液器轻轻吸 打次充分混匀并置于磁力架上 待溶液澄清后(约5 min) 小心移除上清 务必保证将残留液体吸干净 Beads Wash Buffer移除不彻底将影响mRNA片段化效果 07/ 08

5. 使用VAHTS RNA Clean Beads纯化Ribosomal-depleted RNA b.瞬时离心将样品收集至管底 将样品置于PCR仪中 进行探针杂交反应 5 95 95 ~ 22 22 On 2 min 0.1 /sec 5 min 此步骤耗时约15-20 min 不同型号的PCR仪可能会有偏差 a.涡旋振荡混匀vahts RNA Clean Beads 吸取1 (2.2 )至上一步RNA样品中 使用移 液器轻轻吸打次充分混匀 b.冰上静置15 min 使RNA结合到磁珠上 c.将样品置于磁力架5 min 待溶液澄清后 小心移除上清 d.保持样品始终处于磁力架中 加入200 80%乙醇(Nuclease-free ddh2o新鲜配制)漂洗磁珠 e.重复步骤d一次 可提前将步骤3需要的从-30 ~ -15 取出 冰上放置备用 f.保持样品始终处于磁力架中 在室温下开盖干燥磁珠5 - min 3. RNase H消化 加入80%乙醇时不要吹散磁珠 a.在冰上制备如下反应液 最后移除上清时需要使用 移液器将残留液体吸干净 RNase H Buffer RNase H 上一步产物 4 1 15 20 应避免磁珠过分干燥(龟裂)而降低回收效率 6. 准备Frag/Prime Buffer(1 ) 在一个Nuclease-free微量离心管中配制如下反应液 使用移液器轻轻吸打次充分混匀 如同时进行多个样品 可先在大小合适的离心管中预配制RNase H Buffer和RNase H的混合液 再分装到各PCR管中 建议按照实际反应数1.1倍配制混合液以弥补损耗 Nuclease-free ddh2o 2 Frag/Prime Buffer 20 7. 将样品从磁力架上取出 加入18.5 Frag/Prime Buffer(1 ) 用移液器吹打次以充分混匀 室温静置2 min 在磁力架上静置5 min 待溶液澄清后 小心吸取16 上清至一个新的Nuclease- b.将样品置于pcr仪中 进行RNase H消化反应 37 4 30 min free离心管中 8. 将样品置于PCR仪中 根据插入片段大小的需要 选择片段化条件 插入片段大小(bp) 150-200 200-300 250-450 450-550 可提前将步骤4需要的从-30 ~ -15 取出 冰上放置备用 4. DNase I消化 a.在冰上制备如下反应液 DNaseⅠBuffer DNaseⅠ RNase H消化产物 29 1 20 50 打断条件 94 94 85 85 8 min, 4 5 min, 4 6 min, 4 5 min, 4 对于RIN<3的样本 建议不打断 从片段化到第一链cDNA合成过程中不可停留 mrna在该体系下容易降解 可提前将08-2(步骤1)需要的从-30 ~ -15 取出 冰上放置备用 方案C 以纯化的mRNA或Ribosomal-depleted RNA为起始模板的文库构建 本方案适用于模板量为0.5-0 ng的纯化mrna Ribosomal-depleted RNA起始的转录组文库 使用移液器轻轻吸打次充分混匀 如同时进行多个样品 可先在大小合适的离心管中预配制DNase I Buffer和DNase I的混合液 构建 1. 配制反应体系 再分装到各PCR管中 建议按照实际反应数1.1倍配制混合液以弥补损耗 b. 将样品置于PCR仪中 进行DNase I消化反应 37 4 30 min 2 Frag/Prime Buffer RNA 8 8 16 瞬时离心将样品收集至管底 并置于冰上 立即进入下步操作 09/

2. 使用移液器轻轻吸打次充分混匀 将样品置于PCR仪中 根据插入片段大小的需 插入片段大小(bp) 150-200 200-300 250-450 450-550 *做普通转录组建库时 所使用的为2nd Strand Buffer 2(with dntp) 做链特异转录组建库时 所使用的为2nd Strand Buffer 2(with dutp) 要 选择片段化条件 如同时进行多个样品的操作 可选择先在大小合适的离心管中预配制2nd Strand Buffer 2(with dntp or 打断条件 94 94 85 85 8 min, 4 5 min, 4 6 min, 4 5 min, 4 对于已片段化或片段较短的RNA 建议不打断 dutp)和2nd Strand Enzyme Super Mix 2的混合液再分装到各PCR管中 建议按照实际反应数1.1倍 配制混合液以弥补损耗 5. 将移液器调至50 量程 并轻轻吸打次充分混匀 6. 在PCR仪中进行第二链cDNA合成反应 从片段化到第一链cDNA合成过程中不可停留 mrna在该体系下容易降解 可提前将08-2(步骤1)需要的从-30 ~ -15 取出 冰上放置备用 08-2/双链cDNA合成 1. 将双链cDNA合成所需从-30 ~ -15 取出 冰上解冻 上下颠倒混匀 短暂离心收集 热盖5 16 65 4 On 30 min 15 min 可提前将08-3(步骤1)需要的从-30 ~ -15 取出 冰上放置备用 至管底 按下表配制第一链cDNA合成反应体系 上一步Fragmented mrna 1st Strand Buffer 3 1st Strand Enzyme Mix 3 16 7 2 25 08-3/接头连接 1. 按下表配制如下连接体系 2. 将移液器调至20 量程 并轻轻吸打次充分混匀 如同时进行多个样品的操作 可选择先在大小合适的离心管中预配制1st Strand Buffer 3和1st Strand Enzyme Mix 3的混合液再分装到各PCR管中 建议按照实际反应数1.1倍配制混合液以 弥补损耗 上一步ds cdna Rapid Ligation Buffer 4 Rapid DNA Ligase 4 RNA Adapter* Nuclease-free ddh2o 65 25 5 X To 0 Rapid Ligation Buffer 4与Rapid DNA Ligase 4预混后 可于2 ~ 8 存放不超过24 h 混合液在未加入体系前 请避光放置 建议先将RNA Adapter加入到ds cdna中 充分混匀 再加入Rapid Ligation Buffer 4与Rapid DNA 3. 在PCR仪中进行第一链cDNA合成反应 Ligase 4的混合液 热盖5 25 42 70 4 On min 15 min 15 min *接头使用量如下表所示 起始量 总RNA 1-4 μg 0-999 ng - 99 ng 纯化的mRNA 0 ng - 99 ng 0.5-9.9 ng 5 3 1 结束后立刻进行第二链cDNA合成反应 2. 将移液器调至80 量程 并轻轻吸打次充分混匀 可提前将步骤4需要的从-30 ~ -15 取出 冰上放置备用 3. 在PCR仪中进行连接反应 4. 按下表配制第二链cDNA合成反应体系 上一步1st Strand cdna 2nd Strand Buffer 2 (with dntp or dutp)* 2nd Strand Enzyme Super Mix 2 25 25 15 65 热盖5 20 4 On 15 min / 可提前将08-4需要的VAHTS DNA Clean Beads从2 ~ 8 取出 室温放置备用 连接产物可在2 ~ 8 暂存1 h 或-85 ~ -65 暂存12 h 11/ 12

08-4/纯化/分选方案 该步骤提供两种方案 请根据需要慎重选择 纯化方案 由于94 8 min打断条件得到的插入片段集中在150-200 bp 该方案可有效得 到150-200 bp插入片段并去除接头残留 当input RNA<0 ng 且经mRNA抓取或rRNA 去除后的文库构建 建议采用直接纯化方案 分选方案 当input RNA 0 ng 且经mRNA抓取或rRNA去除后的文库构建 可选择不同分 选条件得到200 bp以上的不同插入片段并去除接头残留 插入片段长度(bp) 文库长度(bp) 打断条件 第一轮磁珠() 第二轮磁珠() 200-300 280-380 94 5 min 14 250-350 330-430 85 6 min 11 350-450 430-530 85 6 min 8 450-550 530-630 85 5 min 6 此处的文库长度是插入片段长度+接头长度 分选中磁珠加样偏差将影响最终文库大小 以85 6 min打断 插入片段约350-450 bp为例 其他长度文库请根据上表推荐选择相应的磁珠 使用量 纯化方案 获得插入片段长度约150-200 bp的文库 (适用于mRNA片段化条件为94 8 min 1. 颠倒或涡旋振荡使VAHTS DNA Clean Beads充分混匀 吸取8 磁珠加入到连接产物中 使 1. 将VAHTS DNA Clean Beads提前30 min从2 ~ 8 取出 静置使其平衡至室温 2. 室温孵育 min 使DNA结合到磁珠上 2. 颠倒或涡旋振荡使VAHTS DNA Clean Beads充分混匀 吸取45 (0.45 )加入到连接产 3. 将样品置于磁力架上 待溶液澄清后(约5 min) 保持样品始终处于磁力架上 吸取90 上清 或input RNA<0 ng) 物中 使用移液器轻轻吸打次充分混匀 3. 室温孵育 min 使DNA结合到磁珠上 4. 将样品置于磁力架上 待溶液澄清后(约5 min) 小心移除上清 5. 保持样品处于磁力架上 加入200 80%乙醇(新鲜配制)漂洗磁珠(注意不要吹散磁珠) 室温孵育30 sec 小心移除上清 用移液器轻轻吸打次充分混匀 (此步骤保留上清 切勿丢弃!)至一个新的Nuclease-free PCR管中 转移上清时切勿吸取到磁珠 如果吸取到磁珠 磁珠上结合的大片段DNA会进入下一步骤 导致最终文 库有大片段残留 4. 加入 VAHTS DNA Clean Beads 使用移液器轻轻吸打次充分混匀 5. 室温孵育 min 使DNA结合到磁珠上 6. 重复步骤5一次 6. 将样品置于磁力架上 待溶液澄清后(约5 min) 小心移除上清 7. 保持样品处于磁力架上 在室温下开盖干燥磁珠约5 - min 7. 保持样品处于磁力架上 加入200 80%乙醇(新鲜配制)漂洗磁珠 室温孵育30 sec 小心移 加入80%乙醇时不要吹散磁珠 除上清 最后移除上清时需要使用 移液器将残留液体吸干净 8. 重复步骤7一次 磁珠干燥时避免因过分干燥(龟裂)降低回收效率 9. 保持样品始终处于磁力架上 在室温下干燥磁珠约5 - min 8. 将样品从磁力架上取出 加入22.5 Nuclease-free ddh2o 使用移液器轻轻吸打充分 加入80%乙醇时不要吹散磁珠 混匀 室温静置2 min后置于磁力架上 待溶液澄清后(约5 min) 小心吸取20 上清至 最后移除上清时需要使用 移液器将残留液体吸干净 一个新的Nuclease-free PCR管中 磁珠干燥时避免因过分干燥(龟裂)降低回收效率 分选方案 获得插入片段长度大于200 bp的文库(适用于片段化条件为94 5 min 85 6 min. 将样品从磁力架上取出 加入22.5 Nuclease-free ddh2o 使用移液器轻轻吸打充分混 和85 5 min) 匀 室温静置2 min后置于磁力架上 待溶液澄清后(约5 min) 小心吸取20 上清至一个新 0 ng以下的总rna起始经mrna抓取或rrna去除后建库 推荐选择纯化方案直接纯化 不 转移上清时切勿吸取到磁珠 即使微量残留都将影响后续文库产量 建议做片段分选 纯化产物可在-30 ~ -15 暂存24 h 的Nuclease-free PCR管中 若想获得峰型更加集中的文库 可参考附录 纯化分选方案 使用VAHTS RNA Adapters Set 8 for MGI(Vazyme #NM208) 其分选方案请参考下表最佳 参数 13/ 14

g. 保持样品处于磁力架上 在室温下开盖干燥磁珠约5 - min 08-5/文库扩增 加入80%乙醇时不要吹散磁珠 1. 配制PCR反应体系 最后移除上清时需要使用 移液器将残留液体吸干净 磁珠干燥时避免因过分干燥(龟裂)降低回收效率 20 5 25 50 纯化过的接头连接产物 PCR Primer Mix 5 for MGI 2 HF Amplification Mix h. 将样品从磁力架上取出 加入25 Nuclease-free ddh2o 涡旋振荡或使用移液器轻轻吸 打充分混匀 室温静置2 min后置于磁力架上 待溶液澄清后(约5 min) 小心吸取22.5 上清至一个新的Nuclease-free PCR管中 如同时进行多个样品的操作 可选择先在大小合适的离心管中预配制混合液再分装到各PCR管 转移上清时请勿吸取磁珠 即使微量残留都将影响后续文库质量的分析 ng起始建库较易产生引物二聚 可增加一轮0.85 磁珠纯化去除 中 建议按照实际反应数1.1倍配制混合液以弥补损耗 2. 将移液器调至30 量程 并轻轻吸打次充分混匀 5. 用Agilent 20 Bioanalyzer评价文库质量 取1 纯化后的PCR产物 用Agilent DNA 00 Kit(Agilent, Cat.No.5067-1504)分析 良好的文库 3. 将样品置于PCR仪中 进行文库扩增反应 步骤 热盖 预变性 变性 退火 延伸 完全延伸 5 98 98 60 72 72 4 On 45 sec 15 sec 30 sec 30 sec 1 min 循环数 1 应在预计大小的位置有一个较窄的峰 如图所示 如果在80 bp左右出现峰 则提示文库中有 adapter-dimer污染 此时 将文库用Nuclease-free ddh2o稀释至50 重复步骤08-5(步骤4)再 次纯化PCR产物 9-19 1 从不同物种和个体提取的等量总RNA中 mrna的占比也不一定相同 根据物种实际情 况 可适当调整PCR循环数 一般为9-19个循环 各起始量循环数参考下表进行选择 起始量 总RNA 纯化的mRNA 2-4 μg 1-2 μg 0-999 ng - 99 ng 0 ng - 99 ng 0.5-9.9 ng 扩增循环数 9 - - 12 13-15 16-19 图1-A/B. 1 μg/0 ng 293T细胞RNA 片段化条件为94 8 min 并用0.9 VAHTS DNA Clean Beads纯化 /1 13 4. PCR产物纯化 a. 将VAHTS DNA Clean Beads提前30 min从2 ~ 8 取出 静置使其平衡至室温 0 /1 11 0 8/ 6/ b. 颠倒或涡旋振荡使VAHTS DNA Clean Beads充分混匀 吸取45 (0.9 )加入到PCR 产物中 使用移液器轻轻吸打次充分混匀 c. 室温孵育 min 使DNA结合到磁珠上 d. 将样品置于磁力架上 待溶液澄清后(约5 min) 小心移除上清 e. 保持样品处于磁力架上 加入200 80%乙醇(新鲜配制)漂洗磁珠 室温孵育30 sec 小心移除上清 f. 重复步骤e一次 图2. 200 ng 293T细胞RNA 不同的片段化条件 根据不同的比例的VAHTS DNA Clean Beads 进行片段大小分选 15/ 16

09/常见问题与解决方案 rrna残留较高的问题 注意mRNA获取方法的不同 其兼容的起始量有所不同 请选择规格范围内的起始总RNA投入 错误操作及补救措施 步骤 正确操作 加入200 Beads Wash 方案A Buffer重悬和漂洗mRNA 步骤6 Capture Beads 方案A 步骤7 加入50 Tris Buffer重悬 mrna Capture Beads 加入50 Beads Binding 方案A Buffer使mRNA与mRNA 步骤9 Capture Beads再结合 加入200 Beads Wash 方案A Buffer重悬mRNA Capture 步骤12 Beads 方案A 加入Frag/Prime Buffer(1 ) 打断mRNA 步骤14 错误操作 补救措施 弃尽乙醇 并晾干 重新用200 误加为200 80%乙醇 Beads Wash Buffer重悬磁珠 并 继续后续操作 若未做80 2 min处理 可以用磁力 误加为Beads Binding Buffer 架 吸 附 弃 掉 上 清 后 重 新 加 Tris Buffer 误加为Tris Buffer 未加入Beads Wash Buffer重悬 而直接加入Frag/Prime Buffer 丢弃Beads Wash Buffer后 发现2 Frag/Prime Buffer仍 未融化 方案B 放大反应体系 再补加与Tris Buffer等 的Beads Binding Buffer ① 使用VAHTS mrna Capture Beads(Vazyme #N401)对mRNA富集兼容起始量为0.01 4 μg ② 使用Ribo-off rrna Depletion Kit(Human/Mouse/Rat)(Vazyme #N406)去除rRNA兼容的起 始量为0.01-1 μg ③ 使用Ribo-off rrna Depletion Kit(Bacteria)(Vazyme #N407)去除rRNA兼容的起始量为0.01-5 μg ④ 使用Ribo-off Globin & rrna Depletion Kit(Human/Mouse/Rat)(Vazyme #N408)兼容的起始量为 0.01-1 μg ⑤ 使用Ribo-off rrna Depletion Kit(Plant)(Vazyme #N409)去除rRNA兼容的起始量为1-5 μg 若还未加热打断 可重新放上磁力架 将Frag/Prime Buffer丢弃后 重新加 Beads Wash Buffer 本试剂盒是否适合用于Small RNA文库制备? 再加入Beads Wash Buffer浸泡mRNA 不适用 因为Small RNA的长度仅为22 nt左右 而本试剂盒中磁珠抓取片段最低为0 bp左右 Capture Beads 至2 Frag/Prime 无法有效富集到Small RNA片段 Buffer融化 并配制好Mix 弃尽Beads Wash Buffer 继续实验 FFPE样本是否可以用该试剂盒建库? 后续分选步骤必须选择与此处打断条 FFPE样本中的mRNA会有一定降解 完整度较差 建议与Ribo-off rrna Depletion Kit(Human/Mouse/ 方案C 对加过Frag/Prime Buffer(1 ) 片段化条件与最初设置不符 如 件对应的操作 否则会建库失败 最 Rat)(Vazyme #N406)试剂盒搭配使用 进行文库构建 步骤2 的样品做高温打断处理 将85 6 min处理为94 8 min 终得到的文库插入片段大小也会相应 步骤8 改变 方案A 使用说明书方案进行分选 分选插入片段有偏差 为什么? 打断mRNA后 转移上清至 新管中(16 ) 步骤14 方案B 加入Frag/Prime Buffer(1 ) 步骤8 08-4 步骤8 打断mRNA 不分选条件 上清不足16 可加入Frag/Prime Buffer(1 )补足 加入量与规定值不一致 导致所分选的插入片段差异较大 打断加入1st合成Mix 第一轮纯化中 洗脱水加错 若未进行打断 加入2.2 VAHTS RNA Clean Beads再进行一轮纯化 可调整扩增体系 或再进行一轮纯化 如果文库浓度过低 可以从哪些角度去寻找原因并如何改进? 以高质量的RNA样品为模板构建得到的文库浓度都能达到上机测序要求 如果无法提供合 格的RNA样品 可尝试使用以下方法弥补 ① 提高样品起始量 ② 做几个重复的样品 到片段化步骤合并在一起 或做到文库扩增前合并在一起 ③ 做不分选方案 94 8 min打断条件下rna片段虽然偏小 但是分布会很集中 均一性 也较好 使用磁珠分选过程中 磁珠未平衡至室温 未混匀 移液器不准 枪头挂壁严重等均会致使磁珠 文库扩增最高可以使用多少循环? 可根据起始量来调整循环数 如果不确定 建议取1 进行Qubit检测后酌情再补1-2个循环 最多不超过19个循环 文库进行Agilent 20 Bioanalyzer质检 发现产生双峰 产生的原因可能有哪些? ① RNA有杂质残留 建库过程中发生降解 到文库扩增步骤前的有效模板量低 文库扩增时由 于模板不足发生了非特异性扩增 建议将RNA样品在65 条件下加热15 min 检测是否降解 如果确实为RNA的问题则需要重新提取RNA ② 物种本身比较特殊 RNA打断后片段不是连续且均一的分布 做分选方案时可能分选到了两 个范围的片段 ③ 文库浓度较高时使用高敏芯片检测 建议使用Agilent DNA 00 Kit检测 或将文库稀释到适 当的浓度后用Agilent DNA High Sensitivity DNA Kit检测 17/ 18

关于在进行Agilent 20 Bioanalyzer Qubit及qPCR检测时 高产量文库出现过度扩增的 若使用VAHTS RNA Adapters Set 8 for MGI(Vazyme #NM208)时 其分选方案请参考下表选 解释 择最佳分选参数 200-300 280-380 94 5 min 60(0.6 ) 20(0.2 ) 250-350 330-430 85 6 min 55(0.55 ) 20(0.2 ) 350-450 430-530 85 6 min 50(0.5 ) 15(0.15 ) 450-550 530-630 85 5 min 45(0.45 ) 15(0.15 ) 过度扩增产物在Agilent 20 Bioanalyzer峰型中表现为upper marker之后有轻微翘尾 但以 插入片段长度(bp) 文库长度(bp) 打断条件 第一轮磁珠() 第二轮磁珠() 上现象均属正常 不影响文库测序和数据分析 此处的文库长度是插入片段长度+接头长度 分选中磁珠加样偏差将影响最终文库大小 分选中使 高产量文库通常会出现不同程度的过度扩增现象 因为在文库扩增后期 通常引物被最先 耗尽 大量文库片段在无法结合到引物的情况下 片段之间通过不完全匹配关系退火结 合 从而形成部分双链+部分单链的杂合链 且片段更大 根据不同检测方式的对应原理 附录 纯化分选方案 适用于RNA片段化条件为94 5 min 85 6 min和85 5 min 获得插入片段长度大于 200 bp的文库 用0.45 VAHTS DNA Clean Beads纯化连接产物 1. 将VAHTS DNA Clean Beads提前30 min从2 ~ 8 取出 静置使其平衡至室温 2. 颠倒或旋涡振荡使VAHTS DNA Clean Beads充分混匀 吸取45 (0.45 )加入到接头 连接产物中 使用移液器轻轻吸打次充分混匀 用的磁珠比是相对于初始DNA 例如 初始0 DNA溶液 第一轮磁珠60 是 0 的60% 即0.6 第二轮磁珠 是0 的% 即0.1 而非吸取出的155 上清的% 9. 颠倒或旋涡振荡使VAHTS DNA Clean Beads充分混匀 吸取50 (0.5 )加入到纯化过的连 接产物中 使用移液器轻轻吸打次充分混匀. 室温孵育 min 使DNA结合到磁珠上 11. 将样品置于磁力架上 待溶液澄清后(约5 min) 保持样品始终处于磁力架上 吸取145 上 清(此步骤保留上清 切勿丢弃!)至一个新的Nuclease-free PCR管中 12. 加入15 (0.15 )VAHTS DNA Clean Beads 使用移液器轻轻吸打次充分混匀 3. 室温孵育 min 使DNA结合到磁珠上 13. 室温孵育 min 使DNA结合到磁珠上 4. 将样品置于磁力架上 待溶液澄清后(约5 min) 小心移除上清 14. 将样品置于磁力架上 待溶液澄清后(约5 min) 小心移除上清 5. 保持样品处于磁力架上 加入200 新鲜配制的80%乙醇漂洗磁珠 室温孵育30 sec 15. 保持样品处于磁力架上 加入200 新鲜配制的80%乙醇漂洗磁珠 室温孵育30 sec 小心移 小心移除上清 除上清 6. 重复步骤5一次 16. 重复步骤15一次 7. 保持样品处于磁力架上 在室温下开盖干燥磁珠约5 - min 17. 保持样品始终处于磁力架上 在室温下干燥磁珠约5 - min 加入80%乙醇时不要吹散磁珠 加入80%乙醇时不要吹散磁珠 最后移除上清时需要使用 移液器将残留液体吸干净 最后移除上清时需要使用 移液器将残留液体吸干净 磁珠干燥时避免因过分干燥(龟裂)降低回收效率 磁珠干燥时避免因过分干燥(龟裂)降低回收效率 8. 将样品从磁力架上取出 加入2.5 Nuclease-free ddh2o 涡旋振荡或使用移液器 18. 将样品从磁力架上取出 加入22.5 Nuclease-free ddh2o 涡旋振荡或使用移液器轻轻吸 轻轻吸打充分混匀 室温静置2 min后置于磁力架上 待溶液澄清后(约5 min) 小心吸 打充分混匀 室温静置2 min置于磁力架上 待溶液澄清后(约5 min) 小心吸取20 上清至 取0 上清至一个新的Nuclease-free PCR管中 一个新的Nuclease-free PCR管中 用两轮VAHTS DNA Clean Beads进行片段大小分选(以85 6 min打断 插入片段约350-450 bp 转移上清时切勿吸取磁珠 即使微量残留都将影响后续文库产量 为例 其他长度文库请根据表格选择相应的磁珠使用量) 19/ 20

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