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1 Glutathione Beads 4FF 目录 1. 产品介绍 纯化流程 填料清洗 问题及解决方案.3 5. 订购信息及相关产品 4 1. 产品介绍 Glutathione Beads 4FF 可以纯化各种表达系统融合表达的谷胱甘肽 -S- 转移酶的目的蛋白 谷胱甘肽依赖性蛋白和谷胱甘肽转移酶的重组衍生物 Glutathione Beads 4FF 是以高度交联的 4% 琼脂糖凝胶为基质, 因其耐压的基质, 该产品更适合用于工业大规模蛋白的纯化, 可以在相对较高的流速下, 实现对目的蛋白的纯化 Glutathione Beads 4FF 可以耐受最高 0.3 MPa 的压力, 更稳定 具体性能见表 1 表 1. Glutathione Beads 4FF 产品性能 性能 指标 基质 配体 载量 (/ml 介质 ) 高度交联的 4% 琼脂糖微球 通过 12 原子间隔臂偶联的谷胱甘肽 >10 mg GST 蛋白 (40 kda) 粒径 (μm) 最大流速 0.3 MPa, 3bar ph 稳定范围 3-12 储存缓冲液 20% 乙醇 储存温度 2 C -8 C 2. 纯化流程 2.1 Buffer 的准备所用水和 Buffer 在使用之前建议用 0.22μm 或 0.45 μm 滤膜过滤 结合 / 洗杂 Buffer: PBS, ph 7.4 (140 mm NaCl, 2.7 mm KCl, 10 mm Na 2 HPO 4,1.8 mm KH 2 PO 4,pH 7.4) 洗脱 Buffer: 50 mm Tris-HCl, 10 mm 还原型谷胱甘肽,pH 8.0 注意 : 结合液和洗脱液中可加入 1 10 mm DTT 2.2 样品准备样品在上样前建议离心或用 0.22μm 或 0.45μm 滤膜过滤, 减少杂质, 提高蛋白纯化效率 1 / 5 常州天地人和生物科技有限公

2 和防止堵塞柱子 2.3 Glutathione Beads 4FF 装填 Glutathione Beads 4FF 被广泛应用于工业纯化, 因此, 涉及到各种中压色谱层析柱的填装, 下面介绍使用 Glutathione Beads 4FF 填装层析柱的方法 层析柱的装填 ( 使用储液器装填 ) 1. 用去离子水冲洗层析柱底筛板与接头, 确保柱底筛板上无气泡, 关闭柱底出口, 并在柱底部留出 1-2cm 的去离子水 2. 将树脂悬浮起来, 小心的将浆液连续地倒入层析柱中 用玻璃棒沿着柱壁倒入浆液可减少气泡的产生 3. 如果使用储液器, 应立即在层析柱和储液器中加满水, 将进样分配器放置于浆液表面, 连接至泵上, 避免在分配器或进样管中产生气泡 4. 打开层析柱底部出口, 开起泵, 使其在设定的流速下进行 最初应让缓冲液缓慢流过层析柱, 然后缓慢增加至最终流速, 这样可避免液压对所形成柱床的冲击, 也可以避免柱床形成的不均匀 如果达不到推荐的压力或流速, 可以用你所使用泵的最大流速, 这样也可以得到一个很好的装填效果 ( 注意 : 在随后的色谱程序中, 不要超过最大装柱流速的 75%) 当柱床高度稳定后, 在最后的装柱流速下至少再上 3 倍柱床体积的去离子水 标上柱床高度 5. 关闭泵, 关闭层析柱出口 6. 如果使用储液器, 去除储液器, 将分配器至于层析柱中 7. 将分配器推向柱子至标记的柱床高度处 允许装柱液进入分配器, 锁紧分配器接头 8. 将装填好的层析柱连接至泵或色谱系统中, 开始平衡 如果需要可以重新调整分配器 2.4 样品纯化 1. 将 Glutathione Beads 4FF 装入合适的层析柱, 层析用 5 倍柱体积的结合 Buffer 进行平衡, 使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下, 起到保护蛋白的作用 2. 将样品加到平衡好的 Glutathione Beads 4FF 中 ( 保证目的蛋白与 Glutathione Beads 4FF 充分接触, 提高目的蛋白的回收率 ), 收集流出液 3. 用 倍柱体积的洗杂 Buffer 进行清洗, 去除非特异性吸附的杂蛋白, 收集洗杂液 4. 使用 5-10 倍柱体积的洗脱 Buffer, 收集洗脱液, 即目的蛋白组分 5. 依次使用 3 倍柱体积的结合 Buffer 和 5 倍柱体积的去离子水平衡填料, 最后再用 5 倍柱体积的 20% 的乙醇平衡, 然后保存在等体积的 20% 的乙醇中, 置于 4 度保存, 防止填料被细菌污染 2.4 SDS-PAGE 检测将使用纯化产品得到的样品 ( 包括流出组分 洗杂组分和洗脱组分 ) 以及原始样品使用 SDS-PAGE 检测纯化效果 2 / 5 常州天地人和生物科技有限公

3 3. 填料清洗 GST 标签蛋白纯化产品可以重复使用而无需再生, 但随着非特异性结合的蛋白的增多和蛋 白的聚集, 往往造成流速和结合载量都下降, 这时需要对树脂进行清洗 去除一些沉淀或变性物质 用 2 倍柱体积的 6M 盐酸胍溶液进行清洗, 然后立即用 5 倍柱体积的 PBS, ph 7.4 清洗 去除一些疏水性吸附造成的非特异性吸附物质 用 3-4 倍柱体积的 70% 乙醇或 2 倍柱体积的 1% Triton X-100 清洗, 然后然后立即用 5 倍柱体积的 PBS, ph 7.4 清洗 4. 问题及解决方案 问题原因分析推荐解决方案 柱子反压过高填料被堵塞按照第 3 部分进行树脂清洗 洗脱组分中没有目的蛋白 目的蛋白没有完全洗脱下来 3 / 5 常州天地人和生物科技有限公 样品太粘稠 缓冲液太粘稠 GST 标签蛋白变性了 过度的裂解使目的蛋白变性 目的蛋白聚集产生了沉淀 融合蛋白改变了 GST 的构象, 影响了目的蛋白的结合力 柱子平衡时间太短, 目的蛋白不是在 ph6.5-ph8 范围内结合的 洗脱体积太少 洗脱液中谷胱甘肽浓度太低 低 ph 影响洗脱 裂解液中含有微小的固体颗粒, 建议上柱前使用滤膜 (0.22 或 0.45 μm) 过滤, 或者离心去除 样品中含有高浓度的核酸, 加长破碎时间直至粘度降低, 或者添加 DNase I ( 终浓度 5 μg/ml),mg 2+ ( 终浓度 1mM), 冰上孵育 分钟 有机溶剂或者蛋白稳定试剂 ( 如甘油等 ) 可能会引起反压增高, 降低操作流速 使用温和的裂解条件, 实验条件以经验为准 在细胞裂解前溶液中加入 DTT, 终浓度为 1 20 mm 测定 pgex 中 GST 的结合力, 对载体进行超声处理, 检测其结合力 如果载体中 GST 有很高的亲和力, 有可能改变融合蛋白的构象从而降低了 GST 标签蛋白的亲和力 降低结合温度至 +4 C, 充分地清洗 用 ph 6.5 ph 8.0 的 Buffer 进行充分的平衡 ( 例如 PBS) 增加洗脱液体积, 减小洗脱流速 增加洗脱液中谷胱甘肽浓度, 可尝试用 50 mm Tris-HCl, mm 还原型谷胱甘肽, ph 8.0 洗脱 在不增加洗脱液中的谷胱甘肽量时, 提高洗脱液中 ph 至 ph 8 9 会有改善 增加洗脱液中离子强度, 如 M

4 电泳或 western blot 检测中发现多条带 4 / 5 常州天地人和生物科技有限公 洗脱液中的谷胱甘肽被氧化 非特异性疏水作用影响目的蛋白的溶解与洗脱 Mr 蛋白与目的蛋白一起被纯化出来 GST 融合蛋白已经发生降解 细胞破碎过度 共价共纯化 5. 订购信息及相关产品 抗体与 E. coli 的各种蛋白反应 NaCl 使用新鲜配制的洗脱液 加入 DTT 洗脱液中加入非离子型洗涤剂, 如 0.1% 的 Triton X-100 或者 2% 正辛基 -β-d- 吡喃葡糖苷 Tween-20 Mr 的蛋白有可能是大肠杆菌基因 dnak 的产物, 可以通过在目的蛋白中加入 50 mm Tris-HCl, 2mM ATP,10 mm MgSO 4,pH 7.4 在 37 C 加热 10 分钟去除 可以通过 ATP- 琼脂糖胶或离子交换来去除目的蛋白溶液中的 DnaK 蛋白 在裂解液中加入蛋白酶抑制剂, 如加入 1 mm PMSF 有可能是蛋白酶对目的蛋白部分降解造成的, 可以使用蛋白酶缺陷型宿主菌 ( 如 lon- 或 ompt) 减少细胞破碎时间, 超声前加入溶菌酶 ( 菌液体积的 0.1 倍的 10 mg/ml 溶菌酶,25 mm Tris-HCl, ph8.0), 避免发泡导致蛋白变性, 过度超声破碎增加宿主内源蛋白与 GST 融合目的蛋白的共纯化 包括促进蛋白正确折叠的分子伴侣的共纯化, 如 :DnaK (Mr ~70 000), DnaJ (Mr ~37 000), GrpE (Mr ~40 000),GroEL (Mr ~57 000) 和 GroES (Mr ~10 000) 可再进行一次纯化可以改善 抗体吸附 E. coli 蛋白 :GST- 抗体 超声处理去除 GST 抗体, 可以用 Western Blots 检测 名称货号规格 Glutathione Beads SA mL SA SA mL 100mL SA008C 定制 * GSTPur Glutathione Kit SA008K 3 次 Glutathione Beads 4FF SA mL SA SA mL 100mL SA010C 定制 * GSTCap 4FF SA010C11 1X1mL SA010C51 5x1mL

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