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横弘
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1 TruePrep DNA Library Prep Kit V2 for Illumina TD501-TD503 使用说明书 Version 20.1

2 目录 Contents 01/ 产品概述 / 产品组分 / 保存条件 / 适用范围 / 自备材料 / 注意事项 / 样品准备 / 实验原理与流程概要 / 实验流程 /DNA 片段化 /PCR 富集 / 扩增产物长度分选 / 文库质量检测 / 常见问题与解决方案... 10

3 01/产品概述 TruePrep DNA Library Prep Kit V2 for Illumina是针对Illumina高通量测序平台定向开发的专用试剂盒使用该试剂盒可以将DNA样品制备成Illumina高通量测序平台专用的测序文库和传统文库构建方法相比 TruePrep试剂盒采用新型的转座酶法进行DNA片段化将繁琐的DNA片段化末端修复和接头连接反应等步骤变为一步简单的酶促反应显著降低了起始模板的投入量并缩短了文库构建时间该试剂盒共有三种规格分别适用于起始模板DNA投入量为50 ng 5 ng和1 ng的反应使用者可根据实验类型自由选择试剂盒中所有试剂都经过严格的质量控制和功能验证最大程度上保证了文库构建的稳定性和重复性 02/产品组分货号 TD501-01/02 TD502-01/02 TD503-01/02 起始DNA量 24/96 rxns 24/96 rxns 24/96 rxns 50 ng 5 ng 1 ng 规格 TTE Mix V50 120/480 μl TTE Mix V5 120/480 μl TTE Mix V1 120/480 μl 5 TTBL 5 TS PPM TAE 5 TAB Control DNA 240/960 μl 96/384 μl 96/384 μl 120/480 μl 120/480 μl 120/480 μl 24/96 μl 24/96 μl 24/96 μl 240/960 μl 240/960 μl 240/960 μl 10/10 μl 10/10 μl 10/10 μl 产品组分表中标注的颜色代表各组分管盖颜色 TTE = TruePrep Tagment Enzyme 转座酶 TTBL = TruePrep Tagment Buffer L 转座酶反应缓冲液 TS = Terminate Solution 终止反应缓冲液 PPM = PCR Primer Mix 引物混合液 TAE = TruePrep Amplify Enzyme 聚合酶 TAB = TruePrep Amplify Buffer 聚合反应缓冲液 Control DNA (Mouse Genomic DNA, 50 ng/μl) 小鼠核酸对照品 03/保存条件 TD ~ -15 保存 0 运输 TD502 5 TS 15 ~ 25 保存其余组分 -30 ~ -15 保存 0 运输 TD503 5 TS 15 ~ 25 保存其余组分 -30 ~ -15 保存 0 运输 04/适用范围本产品适用于将纯化的DNA样品制备成Illumina高通量测序平台专用文库如DNA样品为PCR产物应保证其长度 500 bp 因转座酶无法作用于DNA末端因此PCR产物最末端50 bp测序覆盖度可能会有所降低推荐在制备PCR产物时将待测区域两末端各延长 bp 以避免出现末端测序覆盖度降低的情况 01/ 02

4 05/ 自备材料 VAHTS DNA Clean Beads(Vazyme #N411); 磁力架 ; PCR 热循环仪 ; 低吸附 EP 管 PCR 管 ; 无水乙醇 ; 灭菌超纯水 ; TruePrep Index Kit V2 for Illumina (Vazyme #TD202); 或 TruePrep Index Kit V3 for Illumina(Vazyme #TD203) 06/ 注意事项 1. 磁珠操作注意事项 : 使用前将磁珠平衡至室温, 所有磁珠操作都应于室温进行, 切勿将磁珠置于 -20 C 冻存 ; 每次吸取磁珠前都应涡旋振荡充分混匀,DNA 样品加入磁珠后应保证与磁珠充分混匀 ; 移取上清时应在磁珠被彻底吸附后小心进行, 避免吸到磁珠而影响后续实验 ; 80% 乙醇应现配现用, 漂洗磁珠后应尽量吸干残留乙醇 ; 磁珠在洗脱前应充分干燥 ( 表面由光亮褐色变为磨砂褐色 ), 以免乙醇残留影响后续实验, 但也需避免磁珠过分干燥开裂而影响 DNA 样品洗脱效率 2. 样品交叉污染注意事项 : 吸取不同样品时应更换枪头 ; 使用带滤芯的枪头 3. PCR 产物污染注意事项 : 将 PCR 反应体系配制区和 PCR 产物纯化区进行强制性的物理隔离 ; 使用专用的移液器等设备 ; 定时对各实验区域进行清洁 ( 使用 0.5% 次氯酸钠或 10% 漂白剂进行擦拭清理 ) 4. 试剂使用注意事项 : 试剂应避免反复冻融, 首次使用后将剩余试剂小份分装冻存 07/ 样品准备 1. 起始材料 : 纯化过的 DNA, 溶于灭菌超纯水中 2. DNA 浓度测定 : 因 TTE Mix 对 DNA 浓度非常敏感, 所以准确的 DNA 浓度测定对实验成功与否至关重要推荐使用 Qubit 或荧光染料 PicoGreen 对 DNA 样品进行浓度测定, 请勿使用任何基于吸光度测量为基础的测定方法 3. DNA 纯度要求 : A260/A280 =

08/实验原理与流程概要 TruePrep Tagment Enzyme Mix Adapter 1 Adapter 2 Tagmentation of input DNA Strand Displacement and Limited-Cycle PCR P5 N5 Index 1 (i7) N7 P7 Index 2 (i5) Size-Selection and Purification

containing index 2 (i5) and index 1 (i7) respectively TruePrep文库构建基本原理 TruePrep Tagment Enzyme Mix (TTE Mix)中包含转座酶和两种等摩尔的接头Adapter 1和Adapter 2 将该预混液与DNA混合 55 C下孵育10 min 即可实现DNA片段化的同时末端接上接头这种

5 08/实验原理与流程概要 TruePrep Tagment Enzyme Mix Adapter 1 Adapter 2 Tagmentation of input DNA Strand Displacement and Limited-Cycle PCR P5 N5 Index 1 (i7) N7 P7 Index 2 (i5) Size-Selection and Purification Sequencing Strategy i5 index Read i7 index Read Read 1 Read 2 Adapter 1 and Adapter 2, two oligos embedded in TruePrep Tagment Enzyme P5 and P7, two universal PCR Primers N5 and N7, two index primers containing index 2 (i5) and index 1 (i7) respectively TruePrep文库构建基本原理 TruePrep Tagment Enzyme Mix (TTE Mix)中包含转座酶和两种等摩尔的接头Adapter 1和Adapter 2 将该预混液与DNA混合 55 C下孵育10 min 即可实现DNA片段化的同时末端接上接头这种片段化产物经N5 (N5XX)和N7 (N7XX)以及P5和P7 (PCR Primer Mix, PPM)两对引物扩增扩增产物大小分选和纯化后即为可测序文库文库结构 Index 2 (i5) 5 -AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACIIIIIIIITCGTCGGCAGCGTCAGATGTGTATAAGAG ACAG-NNNNNN-CTGTCTCTTATACACATCTCCGAGCCCACGAGACIIIIIIIIATCTCGTATGCCGTC Index 1 (i7) TTCTGCTTG-3 IIIIIIII: Index 2 (i5), 8 bases IIIIIIII: Index 1 (i7), 8 bases -NNNNNN-: 插入序列 03/ 04

6 TD501 (50 ng DNA Input) TD502/503 (5 ng/1 ng DNA Input) 片段化片段化 5 TTBL 10 μl 5 TTBL 4 μl 50 ng DNA x μl 5 ng / 1 ng DNA x μl TTE Mix V50 TTE Mix V5 / V1 ddh 2O To 50 μl ddh 2O To 20 μl 55 C 孵育 10 min 55 C 孵育 10 min VAHTS DNA Clean Beads 纯化加入 5 TS 终止反应 PCR 富集 PCR 富集纯化产物 24 μl ddh 2O 4 μl 5 TAB 10 μl 片段化产物 2 PPM 5 TAB 10 μl N5XX N5XX N7XX N7XX TAE 1 μl TAE 1 μl 扩增 5-9 个循环扩增 8-15 个循环 VAHTS DNA Clean Beads 长度分选与纯化 VAHTS DNA Clean Beads 长度分选与纯化 09/ 实验流程请在实验前仔细阅读本操作说明, 本说明书适用于三种规格的试剂盒, 分别对应起始模板 DNA 投入量为 50 ng 5 ng 和 1 ng 的反应三种规格试剂盒中某些组分有差异, 相应的反应体系有细微差别, 实验操作过程中不可混用, 以免造成不必要的浪费或者实验进度的耽误! 09-1/DNA 片段化 ( 根据试剂盒货号选择合适的方案 ) 1-A:50 ng 起始 DNA 片段化 ( 适用于试剂盒 TD501) 1. 室温解冻 5 TTBL, 上下颠倒混匀后备用确认 5 TS 是否处于室温, 并轻弹管壁确认有无沉淀如有沉淀,37 C 加热并涡旋振荡混匀, 沉淀即可溶解

7 2. 在灭菌 PCR 管中配制如下反应体系 : 组分 5 TTBL 50 ng DNA TTE Mix V50 ddh2o 体积 10 μl x μl To 50 μl 3. 使用移液器轻轻吹打 20 次充分混匀 ( 重要!) 4. 将反应管置于 PCR 仪中, 运行如下反应程序 : 温度时间 105 C 热盖 55 C 10 min 10 C Hold 反应完成后应立即进行产物纯化, 否则 DNA 样品将过度片段化, 导致最终文库片段变小 5. 片段化产物使用 VAHTS DNA Clean Beads 进行纯化 1 涡旋振荡混匀 VAHTS DNA Clean Beads 并吸取 50 μl 至 50 μl 片段化产物中, 涡旋振荡或使用移液器吹打 10 次充分混匀, 室温孵育 5 min 2 将反应管短暂离心并置于磁力架上, 使磁珠与液体分离, 待溶液澄清后 ( 约 5 min) 小心移除上清 3 保持反应管始终处于磁力架上, 加入 200 μl 新鲜配制的 80% 乙醇漂洗磁珠, 室温孵育 30 sec, 小心移除上清 4 重复步骤 3, 总计漂洗两次 5 保持反应管始终处于磁力架上, 开盖空气干燥约 5 min 6 将反应管从磁力架上取出, 加入 26 μl 灭菌超纯水洗脱涡旋振荡或使用移液器吹打 10 次充分混匀, 室温孵育 5 min 7 将反应管短暂离心并置于磁力架上, 使磁珠与液体分离, 待溶液澄清后 ( 约 5 min) 小心吸取 24 μl 上清至新的灭菌 PCR 管中除此之外, 片段化产物也可使用其他磁珠或柱纯化试剂盒进行纯化 6. 立即进行步骤 09-2/PCR 富集 1-B:5 ng 起始 DNA 片段化 ( 适用于试剂盒 TD502) 1. 室温解冻 5 TTBL, 上下颠倒混匀后备用确认 5 TS 是否处于室温, 并轻弹管壁确认有无沉淀如有沉淀,37 C 加热并涡旋振荡混匀, 沉淀即可溶解 2. 在灭菌 PCR 管中配制如下反应体系 : 组分 5 TTBL 5 ng DNA TTE Mix V5 ddh2o 3. 使用移液器轻轻吹打 20 次充分混匀 ( 重要!) 体积 4 μl x μl To 20 μl 05/ 06

8 4. 将反应管置于 PCR 仪中, 运行如下反应程序 : 温度 105 C 55 C 10 C 时间热盖 10 min Hold 5. 反应完成后立即向产物中加入 5 TS, 使用移液器轻轻吹打充分混匀, 置于室温放置 5 min 反应完成后应立即加入 5 TS 终止反应, 否则 DNA 样品将过度片段化, 导致最终文库片段变小 6. 立即进行步骤 09-2/PCR 富集 1-C:1 ng 起始 DNA 片段化 ( 适用于试剂盒 TD503) 1. 室温解冻 5 TTBL, 上下颠倒混匀后备用确认 5 TS 是否处于室温, 并轻弹管壁确认有无沉淀如有沉淀,37 C 加热并涡旋振荡充分混匀, 沉淀即可溶解 2. 在灭菌 PCR 管中配制如下反应体系 : 组分体积 5 TTBL 4 μl 1 ng DNA x μl TTE Mix V1 ddh2o To 20 μl 3. 使用移液器轻轻吹打 20 次充分混匀 ( 重要!) 4. 将反应管置于 PCR 仪中, 运行如下反应程序 : 温度时间 105 C 热盖 55 C 10 min 10 C Hold 5. 反应完成后立即向产物中加入 5 TS, 使用移液器轻轻吹打充分混匀, 置于室温放置 5 min 反应完成后应立即加入 5 TS 终止反应, 否则 DNA 样品将过度片段化, 导致最终文库片段变小 6. 立即进行步骤 09-2/PCR 富集 09-2/PCR 富集 1. 将 PCR 管置于冰上, 配制如下反应体系 : 试剂盒货号 TD501 TD502/TD503 ddh2o 4 μl 步骤 09-1 产物 24 μl 2 5 TAB 10 μl 10 μl PPM N5XX* N7XX* TAE 1 μl 1 μl *TruePrep Index Kit V2 for Illumina (Vazyme #TD202) 中提供 8 种 N5XX 和 12 种 N7XX, 可根据样品数量和 Index 搭配策略自行选择

9 2. 使用移液器轻轻吹打充分混匀, 将反应管置于 PCR 仪中, 运行如下反应程序 : 温度 105 C 72 C* 98 C 72 C 4 C 98 C 60 C 72 C 时间热盖 3 min 30 sec 5 min Hold 15 sec 30 sec *72 C 孵育步骤用于进行链置换反应, 请勿删除该步骤扩增循环数需根据实际情况自行选择, 选择原则如下 : 3 min 循环数 5-15 起始 DNA 量 50 ng 5 ng 1 ng 适用试剂盒 TD501 TD502 TD503 参考循环数扩增循环数越少, 扩增 Duplication 越低, 但文库产量也相应降低 ; 不同循环数的扩增产物经过磁珠分选后能获得的文库总量可参考步骤 09-4/ 文库质量检测 3. PCR 反应结束后进行步骤 09-3/ 扩增产物长度分选 09-3/ 扩增产物长度分选推荐使用 VAHTS DNA Clean Beads 对扩增产物进行长度分选, 使用前请将磁珠平衡至室温并涡旋振荡充分混匀初始 PCR 产物体积为 50 μl, 因 PCR 过程中样品蒸发导致产物体积不足 50 μl 进行分选操作前必须使用灭菌蒸馏水将体积补齐至 50 μl, 否则分选片段的长度可能与预期不一致扩增产物长度分选中两轮磁珠的使用量 (R1 和 R2) 参见下表 : 文库平均总长度约 350 bp 约 450 bp 约 550 bp 文库平均插入长度约 230 bp 约 330 bp 约 430 bp 文库总长度分布范围 bp bp bp 第一轮磁珠用量 R1 = 35.0 μl (0.70 ) R1 = 30.0 μl (0.60 ) R1 = 25.0 μl (0.50 ) 第二轮磁珠用量 R2 = 7. (0.15 ) R2 = 7. (0.15 ) R2 = 7. (0.15 ) 磁珠用量是依据 PCR 产物初始体积计算而得, 如使用 0.60 进行分选, 则 R1: μl = 30.0 μl, R2: μl = 涡旋振荡混匀 VAHTS DNA Clean Beads 并吸取 R1 体积至 50 μl PCR 产物中, 涡旋振荡或使用移液器吹打 10 次充分混匀, 室温孵育 5 min 磁珠比较粘稠, 请准确移取相应的体积, 否则可能导致分选片段的长度与预期不一致 2. 将反应管短暂离心并置于磁力架上, 使磁珠与液体分离, 待溶液澄清后 ( 约 5 min) 小心转移上清至新的灭菌 PCR 管中, 丢弃磁珠 3. 涡旋振荡混匀 VAHTS DNA Clean Beads 并吸取 R2 体积至上清中, 涡旋振荡或使用移液器吹打 10 次充分混匀, 室温孵育 5 min 07/ 08

10 4. 将反应管短暂离心并置于磁力架上, 使磁珠与液体分离, 待溶液澄清后 ( 约 5 min) 小心移除上清 5. 保持反应管始终处于磁力架上, 加入 200 μl 新鲜配制的 80% 乙醇漂洗磁珠室温孵育 30 sec, 小心移除上清 6. 重复步骤 5, 总计漂洗两次 7. 保持反应管始终处于磁力架上, 开盖空气干燥磁珠约 5 min 8. 将反应管从磁力架上取出, 加入 22 μl 灭菌超纯水洗脱涡旋振荡或使用移液器吹打 10 次充分混匀, 室温孵育 5 min 9. 将反应管短暂离心并置于磁力架上, 使磁珠与液体分离, 待溶液澄清后 ( 约 5 min) 小心吸取 20 μl 上清至新的灭菌 PCR 管中,-20 C 保存此外, 如需获得长度分布更集中的文库, 扩增产物可使用胶回收试剂盒进行片段长度分选和纯化如对文库长度分布范围无特殊要求, 扩增产物也可不进行长度分选直接使用磁珠或柱纯化试剂盒进行纯化 09-4/ 文库质量检测文库浓度测定为了得到高质量的测序结果, 必须对文库浓度进行精确测定推荐使用 Realtime PCR 的方式对文库浓度进行绝对定量此外, 文库浓度还可以使用基于特异性识别双链 DNA 的荧光染料法进行测定 ( 如 Qubit 或荧光染料 PicoGreen), 最终使用下表推荐的近似公式换算文库的摩尔浓度请勿使用任何基于吸光度测量为基础的方法文库平均总长度 350 bp 450 bp 550 bp 近似转换公式 1 ng/μl = 4.3 nm 1 ng/μl = 3.3 nm 1 ng/μl = 2.7 nm TruePrep DNA Library Prep Kit V2 for Illumina 文库产出参照表 : TD501 (50 ng DNA Input) 扩增循环数 : TD502 (5 ng DNA Input) 扩增循环数 : TD503 (1 ng DNA Input) 扩增循环数 : 文库产出 ( 不进行片段长度分选, ng): ,000 1,500 文库产出 ( 进行片段长度分选, ng): 表中所述 ng 数为文库总质量文库质量浓度可由该数值除以文库终体积计算而得文库摩尔浓度可根据文库平均长度由文库质量浓度计算而得文库长度分布检测将制备好的文库在 Agilent 2100 Bioanalyzer 上进行长度分布检测

Agilent 2100 Bioanalyzer文库质量分析使用TruePrep DNA Library Prep Kit V2 for Illumina (TD501, PCR扩增9个循环)制备的人基因组文库红色线 PCR产物不进行片段长度分选直接使用1 磁珠纯化后得到的文库紫色线通过磁珠分选得到的约350 bp文库绿色线通过磁珠分选得到的约450 bp文库黄色线

11 Agilent 2100 Bioanalyzer文库质量分析使用TruePrep DNA Library Prep Kit V2 for Illumina (TD501, PCR扩增9个循环)制备的人基因组文库红色线 PCR产物不进行片段长度分选直接使用1 磁珠纯化后得到的文库紫色线通过磁珠分选得到的约350 bp文库绿色线通过磁珠分选得到的约450 bp文库黄色线通过磁珠分选得到的约550 bp文库 10/常见问题与解决方案该试剂盒是否包含打断步骤答包含 TruePrep试剂盒采用新型的转座酶法进行DNA片段化将繁琐的DNA片段化末端修复和接头连接反应等步骤变为一步简单的酶促反应显著缩短了实验耗时 TruePrep系列试剂盒利用转座酶打断DNA是否存在偏好性答转座酶打断时存在一定的偏好性但测试表明其并不影响测序结果及数据分析可否采用TD502或TD503构建50 ng起始的dna文库答不推荐这么做 TD501 TD502 TD503分别对应的模板投入量为50 ng 5 ng 和1 ng 相应试剂盒中酶的浓度不同如采用TD502或TD503构建50 ng起始的dna文库将使模板 DNA片段化不完全或者大小偏大导致最终的文库与预期相差较远因此强烈建议根据实际DNA起始量选择相应规格的产品使用TD501/502/503构建DNA文库时 55 C反应10 min后可否不用磁珠纯化或ts 溶液终止反应而直接进行PCR文库扩增答请按照说明书流程进行纯化或终止反应否则片段化反应不能有效终止可能导致最终的文库总长度与预期相比偏小文库质量较差等 TruePrep系列能提供多少index组合答最多提供384种index组合其中TruePrep Index Kit V2 for Illumina (Vazyme #TD202) 包含8种N5XX和12种N7XX 可提供96种index组合 TruePrep Index Kit V3 for Illumina (Vazyme #TD203)包含16种N6XX以及24种N8XX 可提供384种index组合 09/ 10

12 Vazyme Biotech Co., Ltd. Web: Tel: Sales: Support: Service:

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TruePrep TM DNA Library Prep Kit V2 for Illumina TD501-TD503 Vazyme Biotech Co., Ltd Web: Tel: 400-600-9335 Sales: sales@vazyme.com Support: support@vazyme.com Service: service@vazyme.com Vazyme biotech