FOREGENE Plant Leaf Direct qpcr Kit-Taqman Instruction Manual Plant Leaf Direct qpcr Kit- Taqman Plant Leaf Direct qpcr Kit-Taqman Plant Leaf Direct q

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彻徐
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leaves containing low polysaccharide and polyphenol components without prior

1 Plant Leaf Direct qpcr Kit- Taqman Plant Leaf Direct qpcr Kit-Taqman Plant Leaf Direct qpcr Kit (UNG)-Taqman For performing qpcr directly from Plant leaves containing low polysaccharide and polyphenol components without prior DNA purification Research use only Copyright Foregene 2016/04. All rights reserved. 1/15

3 产品介绍本产品采用独特的裂解缓冲液体系, 可以快速的从多糖多酚含量低的植物叶片 ( 如 : 水稻小麦烟草等 ) 样本中释放出基因组 DNA 用于 qpcr 反应裂解缓冲液处理叶片时, 叶片无需研磨或剪碎处理, 因此特别适合大规模基因检测裂解缓冲液释放基因组 DNA 过程可以在 95 C 条件下 10-30min 内完成, 不需要其他去蛋白 RNA 或者次生代谢产物的过程, 即可将释放出的微量 DNA 作为模板进行 qpcr 反应 2 Leaf qpcr Easy TM Mix-Taqman 具有很强的 PCR 反应抑制物耐受性, 能以待测样本的裂解液为模板, 进行高效特异性扩增该试剂包含 Taq DNA 聚合酶优化配比的 dntps MgCl 2 稳定剂增强剂优化剂与裂解缓冲液配合使用能够快速简便地对样品进行检测, 并具有灵敏度高特异性强稳定性好等特点 2 Leaf qpcr Easy TM Mix (UNG) -Taqman 在 2 Leaf qpcr Easy TM Mix-Taqman 的基础上用 dutp 替代了 dttp, 并同时加入能够降解含有 dutp 模板的 UNG 酶 (Uracil-N-glycosylase) 在 PCR 反应前, 利用 UNG 酶降解含有尿嘧啶的 PCR 产物, UNG 酶对不含有尿嘧啶的模板不会造成任何影响, 从而保证扩增的特异性和准确性, 防止了大规模基因检测时可能出现的 PCR 产物污染问题 Copyright Foregene 2016/04. All rights reserved. 3/15

4 产品特点无需进行费时而昂贵的 DNA 纯化样品需求量小, 只需直径 2-5mm 的叶片即可进行实验无需研磨剪碎等特殊处理, 操作简便优化的 PCR 体系, 使 PCR 具有更高的特异性更强的 PCR 反应抑制物耐受性防污染 PCR 体系 2 Leaf qpcr Easy TM Mix(UNG)-Taqman, 有效消除由 PCR 产物所引起的污染, 保证扩增的特异性和准确性试剂盒应用适用范围 : 多糖多酚含量低的植物叶片样本裂解释放的 DNA: 仅用作 qpcr 模板试剂盒可用于以下用途 : 转基因鉴定基因分型等产品质量控制按照福际生物试剂盒质量检测体系标准, 每一批次的植物叶片直接 qpcr 系列试剂盒 -Taqman 都严格进行多次测试, 确保每一批次试剂盒质量的可靠性和稳定性 Copyright Foregene 2016/04. All rights reserved. 4/15

5 试剂盒内容试剂盒组成 Plant Leaf Direct qpcr Kit-Taqman 植物叶片直接 qpcr 试剂盒 -Taqman DQT-0211T DQT DQT DQT 次 200 次 500 次 2000 次 Part I Part II Buffer QL1 3ml 10ml 25ml 100ml Buffer QL2 3ml 10ml 25ml 100ml 2 Leaf qpcr Easy TM Mix-Taqman 500μl 1ml 2 1.7ml 3 1.7ml ROX Reference Dye 50μl 200μl 500μl 1ml 2 说明书 1 份 1 份 1 份 1 份 Plant Leaf Direct qpcr Kit(UNG)- Taqman 植物叶片直接 qpcr 试剂盒 (UNG)-Taqman DQT-0212T DQT DQT DQT 试剂盒组成 50 次 200 次 500 次 2000 次 Part I Part II Buffer QL1 3ml 10ml 25ml 100ml Buffer QL2 3ml 10ml 25ml 100ml 2 Leaf qpcr Easy TM Mix(UNG)-Taqman 500μl 1ml 2 1.7ml 3 1.7ml ROX Reference Dye 50μl 200μl 500μl 1ml 2 说明书 1 份 1 份 1 份 1 份 Copyright Foregene 2016/04. All rights reserved. 5/15

6 试剂盒组分信息 Buffer QL1: 作为裂解液, 提供植物叶片裂解反应所需的环境 Buffer QL2: 中和裂解液, 使其不影响后续 qpcr 反应 2 Leaf qpcr Easy TM Mix-Taqman: 包括特别改造 Taq DNA Polymerase dntps MgCl 2 反应缓冲液 PCR 反应增强剂优化剂以及稳定剂等 qpcr 反应时, 只需将适当的 DNA 模板引物 Taqman 探针 ddh 2 O 添加到 2 Leaf qpcr Easy TM Mix-Taqman 中即可用于 qpcr 反应 2 Leaf qpcr Easy TM Mix(UNG)-Taqman: 在 2 Leaf qpcr Easy TM Mix-Taqman 的基础上用 dutp 替代了 dttp, 并同时加入能够降解含有 dutp 模板的 UNG 酶, 从而能够有效防止 PCR 扩增产物污染 ROX Reference Dye: 只使用在 ABI Stratagene 等公司的荧光定量 PCR 仪上, 用以校正孔与孔之间产生的荧光信号误差 ( 具体用量见表 1) Roche Bio-Rad Eppendorf 等荧光定量 PCR 仪不必使用 ( 当使用以上未提及仪器时, 请参考仪器的说明书或与仪器厂家联系进行确认是否需要加入 ROX Reference Dye 进行校正 ) 表 1: 不同荧光定量 PCR 仪中 ROX Reference Dye 的用量荧光定量 PCR 仪 ABI PRISM7000/7300/7700/ 7900HT/Step One 等 ROX Reference Dye 终浓度 1 ( 如 20μl 体系, 加入 1μl 20 ROX Reference Dye) ABI 7500/7500 Fast 和 Stratagene Mx3000P/Mx3005P/Mx4000 等 0.5 ( 如 20μl 体系, 加入 0.5μl 20 ROX Reference Dye) Copyright Foregene 2016/04. All rights reserved. 6/15

7 储存条件 1. 输运条件全程低温冰盒运输, 保证试剂盒 Part II 处于 <4 状态 2. 保存条件本试剂盒 Part I 保存在常温或 2-8 试剂 Buffer QL1 和 Buffer QL2, 在干燥条件下, 可保存 12 个月 ; 如需保存更长时间可置于 2 8 注意 : 若低温保存, 溶液容易产生沉淀在使用前务必将试剂盒内的溶液在室温中放置一段时间, 必要时可在 37 水浴中预热 10 分钟, 以溶解沉淀, 混匀后再使用本试剂盒 Part II 保存在 -20 试剂 2 Leaf qpcr Easy TM Mix, 若频繁使用, 也可置于 4 短期保存 ( 限 10 天内用完 ) 试剂 20 ROX Reference Dye,-20 避光保存注意事项 :( 请务必在使用试剂盒前仔细阅读注意事项 ) 注意实验用具的清洁以及实验的操作手法, 避免样本间的交叉污染请尽量使用植物新鲜幼嫩叶片进行实验, 若叶片组织比较枯老, 请避免使用叶片主脉部位组织若 Buffer QL1 有沉淀析出, 可放置于 37 待沉淀消失, 并混匀溶液后使用 2 Leaf qpcr Easy TM Mix 应避免反复冻融, 否则会影响 PCR 效率 2 Leaf qpcr Easy TM Mix 冻存后可能会产生白色或淡黄色的沉淀为了避免沉淀导致溶液成分不均匀, 试剂解冻后于室温条件下, 轻柔上下颠倒混匀数次直至完全溶解, 轻微离心后再使用 Copyright Foregene 2016/04. All rights reserved. 7/15

8 操作前准备事项使用本试剂盒前, 请务必仔细阅读说明书植物叶片直接 qpcr 系列试剂盒操作简单方便快速, 说明书提供了整个试剂盒的完整信息和正确使用方法请在使用前准备好必要的实验材料和设备实验材料和设备各种来源的植物叶片 ( 新鲜的冷冻保存的 ) 1.5ml 无菌离心管 0.2ml 无菌 PCR 管台式离心机 ( 13,400 g) 荧光定量 PCR 仪金属浴移液器等安全性本产品仅供科研使用, 请勿用于医药临床医疗食品及化妆品等用途使用化学品时, 穿戴合适的实验服, 手套, 防护眼镜等 Buffer QL1 含 SDS: 刺激性致敏性 Buffer QL1 含 NaOH: 刺激性致敏性 Copyright Foregene 2016/04. All rights reserved. 8/15

9 操作指南预防样本间交叉污染为了避免样本间交叉污染, 每次取样后都需要将取样器材的刃口或与样本直接接触的部位浸入 2% 次氯酸钠溶液中, 反复洗刷数次进行清洗, 然后用干净的纸巾擦干残余液体后再进行使用为了试验方便, 也可准备多个取样器材, 在使用完后进行统一清洗, 确保每一单独样本均使用的是无污染的取样器材操作说明 : 植物叶片直接 qpcr 操作步骤 A. 样本 DNA 释放 1. 剪取直径 2-5mm 叶片组织到离心管内若选用材料为较成熟的叶片, 尽量避免剪取叶片主脉部分注意 : 切勿加入过量组织, 否则会降低裂解效率 2. 加入 50μl Buffer QL1, 确保裂解液能够完全浸没叶片组织处理 10-30min 注意 : 95 裂解, 一般只需 10min 即可满足多数 PCR 需求若样品较难裂解, 可以将时间延长至 30min( 其间每间隔 10min 可以轻微晃动离心管, 以帮助植物组织裂解 ) 4. 加入 50μl Buffer QL2, 置于涡旋混匀仪上充分震荡混匀 5. 短暂离心, 转移上清至新的离心管,4 ( 可保存 15 天 ) 或 -20 放置备用或直接用于 PCR 扩增 B. qpcr 反应鉴定 1. 将 2 Leaf qpcr Easy TM Mix 和其它冻存组分置于冰上解冻, 单独混匀后置于冰上待用注意 : 解冻后的 2 Leaf qpcr Easy TM Mix 可能会出现白色或淡黄色沉淀, 可于室温条件下, 轻柔上下颠倒混匀数次直至完全溶解 ( 请勿使用涡旋仪振荡混匀 ), 轻微离心后再使用 Copyright Foregene 2016/04. All rights reserved. 9/15

10 2. 按比例加入反应所需的 2 Leaf qpcr Easy TM Mix (ROX) 引物探针 H 2 O 制备成 PCR 预混液 ( 见表 2) 置于涡旋仪上充分涡旋混匀后, 瞬时离心将预混液集于管底, 并分装至适当的 PCR 反应管中 3. 按照 PCR 体系 10% 的比例, 将步骤 A 得到的裂解产物作为模板加入上述配制的 PCR 体系中注意 : 以裂解产物作为模板时, 加入量以 PCR 体系的 5-10% 之间最佳, 不能超过 20% 如 20μl 的 PCR 体系中, 加入 1-2μl 裂解产物即可, 但不能超过 4μl 4. 将反应管放入荧光定量 PCR 仪, 根据优化好的 PCR 条件 ( 退火温度等 ) 进行 PCR 反应 ( 见表 3) 注意 : 尽量使用优化后的条件进行 PCR 反应, 可以得到更好的结果表 2:qPCR 反应体系配制 PCR 体系添加内容 20μl 反应体系 50μl 反应体系终浓度 2 Leaf qpcr Easy TM Mix 10μl 25μl 1 20 ROX Reference Dye - - 1* Forward Primer (10μM) 0.8μl 2μl 0.4μM 2* Reverse Primer (10μM) 0.8μl 2μl 0.4μM 2* Probe(4μM) 1μl 2.5μl 0.2μM 3* DNA 模板 2μl 5μl ddh 2 O( 灭菌蒸馏水 ) Add to 20μl Add to 50μl 1*: 根据不同的荧光定量 PCR 仪, 选择合适终浓度的 ROX Reference Dye 常见荧光定量 PCR 仪的最适 ROX Reference Dye 浓度参照组分信息中表 1( 第 6 页 ) 2*: 通常引物终浓度为 0.4μM 可以得到较好结果反应性能较差时, 可以在 μM 范围内调整引物浓度 3*: 通常探针终浓度为 0.2μM 可以得到较好结果反应性能较差时, 可以在 μM 范围内调整探针浓度表 3: qpcr 反应条件步骤温度时间循环数内容 1* min 1 UNG 酶处理 min 1 灭活 UNG 酶 & 预变性 sec 变性 * 20-30sec 退火 / 延伸 / 荧光采集 Copyright Foregene 2016/04. All rights reserved. 10/15

11 1*: 可选步骤, 使用 2 Leaf qpcr Easy TM Mix (UNG)-Taqman 时, 通过该步骤有效去除污染 ; 若使用 2 Leaf qpcr Easy TM Mix-Taqman 可跳过该步骤 2*: 推荐退火 / 延伸温度为 60 在具体操作中, 需要根据目的片段大小扩增片段的碱基序列和引物的 GC 含量及长短等具体情况在范围内优化 PCR 对照反应在 qpcr 结果分析时, 不管是阳性结果或阴性结果, 如果没有对照反应, 我们都不能确定结果是否可靠为了便于后续实验结果的分析, 我们建议在进行 PCR 时, 设置阳性和阴性 PCR 对照反应以便于排除假阳性或假阴性的干扰 A: 阳性对照采用纯化的样本 DNA(50-200ng) 作为模板, 加入 PCR 预混液作为阳性对照, 以确定 qpcr 反应体系和条件的正确性以及 2 qpcr Easy TM Mix 有效性 B: 阴性对照建议在每次试验过程中都加入除 DNA 模板外的 PCR 反应体系作为阴性对照, 以监控试验过程中是否存在污染 Copyright Foregene 2016/04. All rights reserved. 11/15

13 问题分析指南正对照待测样本均无目的片段的扩增信号或 Ct 值过大 1. 荧光定量 PCR 仪的设置不正确建议 : 确保荧光定量 PCR 仪在荧光的采集步骤种类以及检测位置等参数设置正确, 然后再进行试验 2. PCR 试剂保存不当失去活性建议 :2 qpcr Easy TM Mix 应保存于 -20, 使用时避免反复冻融若使用频繁, 可在 4 短时间存放 3. qpcr 反应条件不合适建议 : 使用推荐的 PCR 程序进行试验必要时, 以纯化 DNA 为模板对反应条件进行优化后, 再进行大规模检测 4. 扩增产物过长建议 :PCR 扩增产物长度以 60bp~200bp 为宜, 不能超过 300bp 5. 引物或探针浓度不合适建议 : 适当调整反应体系中引物或探针的浓度 6. 引物或探针设计问题建议 : 尝试重新设计引物或探针进行检查试验重复性差 1. 未引入校正系统建议 : 根据各自荧光定量 PCR 仪的要求, 进行系统校正 2. 加样误差建议 : 规范使用微量移液器, 使用硅化处理后的枪头进行加样 3. 反应管侧壁残留液体或有气泡建议 : 进行扩增反应之前, 将完成加样的反应管进行瞬时离心, 仔细检查反应管内是否有气泡残留 4. 模板浓度太低或抑制物浓度过高建议 : 适当调整模板用量 5. 反应体系过小建议 : 适当增大 PCR 反应体系 Copyright Foregene 2016/04. All rights reserved. 13/15

14 正对照扩增信号正常, 待测样本无目的片段的扩增信号或 Ct 值过大 1. 样本及其裂解产物保存不当或保存时间过久,DNA 基因组已经降解建议 : 尽量使用新鲜样本, 制备好的裂解产物尽快进行 qpcr 检测 2. 叶片中多糖多酚含量较高建议 : 若材料裂解后的溶液呈棕黄色或棕红色, 使用多糖多酚植物叶片直接 PCR 试剂盒 (Plant Leaf Direct qpcr Plus Kit) 3. 裂解液中和液加入比例不当建议 : 裂解完成后, 严格按照说明书要求进行中和正常条件下, 经步骤 A 得到的裂解产物 ph 应该在 7-8 左右 4. 裂解产物中抑制物过多建议 : 在 PCR 反应体系 5-10% 范围内优化模板加入量 5. PCR 循环数不足建议 : 适当增加 PCR 的循环数, 推荐在循环为佳空白对照出现目的片段的扩增曲线 1. 操作工具或试剂污染建议 : 实验所有试剂或器材均应高压灭菌操作时应小心轻柔, 防止将样品吸入加样枪内或溅出离心管外 2. 样本间交叉污染建议 : 每个取样器只对一个样本使用 ; 或取完一个样本后, 将取样器刃口浸入 2% 的次氯酸钠溶液中, 反复涮洗, 然后用干净的纸巾擦干残液 3. PCR 产物污染建议 : 如果实验室经常检测同类型样本, 最好使用含 UNG 防 PCR 产物污染系统的试剂盒进行实验使用 ROX 染料校正后的荧光信号不正常 1. ROX Reference Dye 加入量过多或过少建议 : 根据表 1 的推荐用量的 ROX Reference Dye 2. 荧光定量 PCR 仪器颜色校正不准确建议 : 根据荧光定量 PCR 仪说明进行重新校正 Copyright Foregene 2016/04. All rights reserved. 14/15

目录产品介绍产品特点试剂盒应用产品质量控制试剂盒内容试剂盒组分信息储存条件注意事项操作

目录产品介绍产品特点试剂盒应用产品质量控制试剂盒内容试剂盒组分信息储存条件注意事项操作 Animal Tissue Direct qpcr Kit-SYBR Green I Animal Tissue Direct qpcr Kit-SYBR Green I Animal Tissue Direct qpcr Kit(UNG)-SYBR Green I For performing qpcr directly from animal tissue without prior DNA purification