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盟却
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1 Hieff Clone Plus Multi One Step Cloning Kit Cat No

2 HB 目录产品信息... 1 产品描述... 1 产品组分... 1 产品应用... 1 运输与保存方法... 1 实验流程... 1 应用实例... 5 常见问答... 5

3 产品信息产品名称货号规格储存 Hieff Clone Plus Multi One Step Cloning Kit 多片段一步法快速克隆试剂盒 10912ES10 10 T -20 Hieff Clone Plus Multi One Step Cloning Kit 多片段一步法快速克隆试剂盒 10912ES T -20 产品描述 Hieff Clone Plus Multi One Step Cloning Kit 是一款简便快速高效的 DNA 定向克隆产品, 该试剂盒可以将 PCR 产物定向克隆至任何载体的任何位点, 可高效克隆 50 bp-10 kb 片段将载体线性化, 并在插入片段正反向 PCR 引物 5 端引入 bp 的线性化载体末端同源序列, 使得插入片段 PCR 产物 5 和 3 末端分别带有与线性化载体两末端对应的完全一致的序列 PCR 产物和线性化载体在重组酶的作用下, 仅需 50 反应 20 min 即可进行转化, 完成定向克隆克隆阳性率可达 95% 以上试剂盒中 2 Hieff Clone MultiS Enzyme Premix 预混了重组酶和重组反应所需缓冲液, 并添加了独特的重组增强因子, 可显著提高重组克隆效率使用该试剂盒, 可以一次实现多至 5 个片段的顺序拼接克隆产品组分产品编号 / 规格编号组分 10912ES10 (10 T) 10912ES50 (5 10 T) A 2 Hieff Clone MultiS Enzyme Premix 100 μl μl B 500 bp Control Insert (25 ng/μl) 5 μl 5 5 μl C puc 19 Control Vector, linearized (50 ng/μl) 5 μl 5 5 μl 产品应用快速克隆 ; 定向克隆 ; 定点突变运输与保存方法冰袋运输 -20 保存, 有效期 1 年实验流程 1 载体线性化 : 酶切或反向 PCR 制备线性化载体 2 插入片段的制备 : 由 PCR 制备, 所用扩增引物在设计时需在其 5 端添加同源序列 ( 图中以红色黄色紫色和绿色标记 ), 使得扩增产物之间以及扩增产物与线性化载体之间各有一段同源序列 3 重组反应 : 按比例混合线性化载体和插入片段, 在重组酶催化作用下,50 反应 20 min 即可完成重组 4 转化涂板 : 将重组产物直接转化后涂平板图 1 Hieff Clone 多片段一步法快速克隆试剂盒实验流程图 1

4 一. 制备线性化载体选择合适的克隆位点, 并对载体进行线性化建议尽量选择无重复序列且 GC 含量均匀的区域进行克隆载体克隆位点上下游 25 bp 区域内 GC 含量均在 40%-60% 范围内最佳线性化载体可通过限制性内切酶酶切或反向 PCR 扩增获得 1. 酶切制备线性化载体 1) 双酶切线性化 : 线性化完全, 转化背景低建议使用 2) 单酶切线性化 : 线性化程度较差可适当延长酶切时间以降低转化背景注 : 不含插入片段的假阳性克隆是由未线性化环状载体转化而形成的若这种假阳性克隆比例较高, 建议重新制备线性化载体 2. 反向 PCR 扩增制备线性化载体建议使用高保真聚合酶 ( 如 :Hieff Canace High-Fidelity DNA Polymerase,Cat No ES) 进行载体扩增, 以减少扩增突变的引入 PCR 扩增模板应尽量使用预线性化质粒, 以防止残留环状质粒模板对克隆阳性率的影响 Hieff Clone 重组反应体系兼容几乎所有酶切反应体系和常规 PCR 反应体系, 当载体酶切产物或反向 PCR 扩增产物纯度较高时, 可以无需纯化, 直接进行重组反应但纯度较低且有可能含有未线性化环状质粒时, 建议使用高质量的试剂盒对线性化载体进行胶回收纯化, 以提高产物纯度并去除一部分未线性化的环状载体, 有利于提高重组效率二. PCR 扩增制备插入片段 1. 设计扩增引物 Hieff Clone 引物设计方式 : 通过在插入片段正反向 PCR 引物的 5 端引入 bp( 不包括酶切位点 ) 的线性化载体末端同源序列, 使得插入片段 PCR 产物 5 和 3 末端分别带有与线性化载体两末端对应的完全一致的序列推荐使用翊圣无缝克隆引物设计软件 ( 自动生成插入片段的扩增引物若手动设计, 可参照以下实例以在 puc18 载体 ( 注 : 与该试剂盒中提供的 C 组分不同,C 组分为 puc19) 的 EcoR I 和 Hind III 酶切位点间插入三段基因的引物设计为例, 引物具体设计方案如下 : 首先设计第一片段的正向扩增引物和第三片段的反向扩增引物 ( 与载体相邻的两个插入片段 ) 第一片段正向扩增引物设计方式 : 5 上游载体末端同源序列 + 酶切位点 ( 可保留或删除 )+ 第一片段基因特异性正向扩增序列 3 第三片段反向扩增引物设计方式 : 3 第三片段基因特异性反向扩增序列 + 酶切位点 ( 可保留或删除 )+ 下游载体末端同源序列 5 注 :1 基因特异性正 / 反向扩增序列即常规插入片段正 / 反向扩增引物序列 ; 2 上游 / 下游载体末端同源序列为线性化载体最末端序列 ( 用于同源重组 ),GC 含量 40%-60% 为佳图 2 与载体相邻的两个插入片段引物设计方案 2

其次设计第一片段的反向扩增引物和第二片段的正向扩增引物用于片段之间进行重组的同源序列可以添加至前方片段的反向扩增引物中, 也可以添加至后方片段的正向扩增引物中, 还可以两片段各添加一部分以将同源序列添加至前方片段 ( 第一片段 ) 的反向扩增引物中为例, 引物具体设计方案如图 3 所示 : 第一片段反向扩增引物设计方式 : 3 第一片段基因特异性反向扩增序列 + 第二片段 5 端同源序列 5

5 其次设计第一片段的反向扩增引物和第二片段的正向扩增引物用于片段之间进行重组的同源序列可以添加至前方片段的反向扩增引物中, 也可以添加至后方片段的正向扩增引物中, 还可以两片段各添加一部分以将同源序列添加至前方片段 ( 第一片段 ) 的反向扩增引物中为例, 引物具体设计方案如图 3 所示 : 第一片段反向扩增引物设计方式 : 3 第一片段基因特异性反向扩增序列 + 第二片段 5 端同源序列 5 第二片段正向扩增引物设计方式 : 5 第二片段基因特异性正向扩增序列 3 注 :1 基因特异性正 / 反向扩增序列即常规插入片段正 / 反向扩增引物序列 ; 2 第二片段 5 端同源序列即用于第一片段与第二片段进行重组的添加序列最后设计第二片段的反向扩增引物和第三片段的正向扩增引物设计方式与第一片段的反向扩增引物和第二片段的正向扩增引物设计方式一致具体方案参见图 3 图 3 第一片段的反向扩增引物和第二片段的正向扩增引物设计方案注 : 最终引物长度超过 40 bp, 建议选用 PAGE 纯化方式进行引物合成计算扩增引物退火温度时, 只需计算基因特异性扩增序列的 Tm 值, 载体末端同源序列不应参与计算, 为了得到高效率克隆, 建议 Tm 插入片段 PCR 扩增插入片段扩增可用任意 PCR 酶扩增, 无需考虑产物末端有无 A 尾 ( 重组过程中将被去除, 在最终载体中不会出现 ) 但为了减少扩增突变的引入, 建议使用高保真聚合酶进行扩增 (Hieff Canace High-Fidelity DNA Polymerase,Cat No ES) PCR 扩增结束后, 取少量产物进行琼脂糖凝胶电泳以检验扩增产量和特异性 Hieff Clone 重组反应体系兼容常规 PCR 反应体系因此, 如果扩增模板不是与载体抗性相同的环状质粒, 且 PCR 产物电泳条带单一, 则扩增产物可以无需纯化, 直接用于重组反应但 PCR 扩增产物纯度较低时, 建议使用高质量的试剂盒对 PCR 扩增产物进行胶回收纯化, 以提高产物纯度, 有利于提高重组效率三. 线性化载体与插入片段浓度测定推荐使用琼脂糖凝胶电泳比较条带亮度的方法对 DNA 进行定量将线性化载体和插入片段扩增产物做数个等体积稀释梯度, 原始产物和稀释后产物各取 1 μl 进行琼脂糖凝胶电泳, 与 DNA 分子量标准 (DNA Marker) 比较条带亮度以确定其近似浓度 3

6 四. 重组反应 1. 线性化载体与插入片段使用量计算 Hieff Clone Plus Multi 重组反应体系最适 DNA 使用量为每片段 ( 包括线性化载体 )0.03 pmol 该摩尔数对应的 DNA 质量可由以下公式粗略计算获得 : 每片段最适使用量 = [0.02 载体碱基对数 ]ng (0.03 pmol) 例如, 将长度为 0.5kb 1kb 2 kb 三插入片段克隆至长度为 5 kb 的载体时, 各片段最适使用量应为 : 线性化载体最适使用量 : = 100 ng; 0.5kb 插入片段最适使用量应为 : = 10 ng; 1 kb 插入片段最适使用量应为 : = 20 ng; 2 kb 插入片段最适使用量应为 : = 40 ng 注 :1) 插入片段 DNA 使用量应大于 10 ng 当使用上述公式计算 DNA 最适使用量低于这个值时, 直接使用 10 ng 即可 2) 线性化载体的使用量应在 ng 之间当使用上述公式计算最适使用量超出这个范围时, 则选择最低或最高使用量即可 3) 线性化载体和插入片段扩增产物未纯化, 直接使用时, 使用总体积应不超过反应体系体积的 1/5, 如 20 μl 体系不超过 4 μl 2. 反应体系 ( 推荐冰上配制, 各组分使用前需混匀 ) 组分重组反应阴性对照 -1 阴性对照 -2 阳性对照 ddh 2O Up to 20 μl Up to 20 μl Up to 20 μl Up to 20 μl 2 Hieff Clone MultiS Enzyme Premix 10 μl 0 μl 0 μl 10 μl 线性化载体 X μl X μl 0 μl 1 μl N 个插入片段 Y μl 0 μl Y μl 1 μl 注 :1)X 和 Y 分别是根据公式计算得到线性化载体和插入片段用量 2) 阴性对照 -1 可用来确认线性化载体有无环状质粒残留, 可选择性进行 3) 当插入片段扩增模板是与载体抗性相同的环状质粒时, 可用阴性对照 -2 来确认有无环状质粒模板残留, 可选择性进行 4) 试剂盒中提供阳性对照反应所需组分 (B 组分和 C 组分 ), 可用来排除其他实验材料及操作因素的影响, 可选择性进行 3. 重组反应 1) 体系配制完成后, 用移液器轻轻吸打混匀各组分, 短暂离心将反应液收集至管底 2) 置于 50 反应 min 当插入片段总和 >5 kb 时, 建议提高孵育时间到 min 可以增大重组效率注 : 建议在 PCR 仪或水浴锅等温控精确的仪器上进行反应 3) 待反应完成后, 建议将反应管置于冰上冷却 5 min, 以防温度过高降低感受态转化效率 4) 反应产物可直接进行转化, 也可储存于 -20, 待需要时解冻转化五. 重组产物转化涂板 1) 在冰上解冻克隆感受态细胞 ( 如 :DH5α Chemically Competent Cell,Cat No ES) 2) 取 10 μl 冷却重组产物, 加入到 100 μl 感受态细胞中, 轻弹管壁数下混匀, 在冰上放置 30 min 3)42 热激 90 秒, 冰浴孵育 2 min 4) 加入 900 μl SOC 或 LB 培养基,37 孵育 10 min 充分复苏 37,200 rpm, 摇菌 45 min 5)5000 rpm 离心 3 min, 弃掉 900 μl 上清用剩余培养基将菌体重悬, 用无菌涂布棒在含有正确抗性的平板上轻轻涂匀待菌液被吸收, 将平板倒置, 于 37 过夜培养六. 克隆鉴定最方便快捷的方法是菌落 PCR 用无菌的枪头或牙签将单个菌落挑至 μl LB 培养基中混匀, 直接取 1 μl 作为 PCR 模板推荐至少用一条通用测序引物进行菌落 PCR, 这样可以避免 PCR 假阳性的产生后续也可做酶切或测序鉴定 4

应用实例图 4 Hieff Clone Plus Multi One Step Cloning Kit 进行三片段克隆 A: 重组转化平板 B: 插入片段和载体浓度检测电泳图 C:PCR 方法鉴定每个单片段和最终连接基因箭头指示目的条带载体 :pcamiba1302,10 kb, 三个插入片段长度 :1 kb,1.5 kb 和 2.

7 应用实例图 4 Hieff Clone Plus Multi One Step Cloning Kit 进行三片段克隆 A: 重组转化平板 B: 插入片段和载体浓度检测电泳图 C:PCR 方法鉴定每个单片段和最终连接基因箭头指示目的条带载体 :pcamiba1302,10 kb, 三个插入片段长度 :1 kb,1.5 kb 和 2.5 kb, 重组反应条件 :50,20 min 常见问答 1 最佳克隆位点选择? 答 : 在选择克隆位点时, 应避免选择克隆位点上下游 50 bp 内有重复序列的区域当克隆位点上下游 25 bp 区域内 GC 含量均在 40%-60% 范围内时, 重组效率将达到最大若高于 70% 或者低于 30%, 重组效率会受到较大影响 2 无克隆长出或克隆数较少? 答 : 出现该情况, 建议同时使用试剂盒所附带的阳性对照, 可排除试剂盒本身的影响, 并进行进一步判定, 主要有以下可能情况 : 1) 引物设计不合适 : 推荐同源序列 (15-25 bp)+ 完整的酶切位点 + 基因特异性扩增引物,GC 含量 40% - 60% 2) 感受态细胞效率低 : 使用新鲜制备或妥善冻存的感受态细胞, 确保其转化效率 >10 7 cfu/μg 每次操作时可设置一组转化质粒的对照实验, 以检测感受态细胞的转化效率选择克隆感受态细胞 ( 如 DH5α), 不能选择表达感受态细胞 3) 线性化载体和插入片段扩增产物的使用量不足 / 过量, 或者比例不佳 : 尽量按照推荐的量和比例配制重组反应体系 4) 线性化载体和插入片段扩增产物不纯, 抑制反应 : 线性化载体和插入片段扩增产物未纯化, 直接使用时, 使用总体积应不超过反应体系体积的 1/5, 如 20 μl 体系不超过 4 μl 建议线性化载体插入片段扩增产物进行凝胶回收纯化, 纯化产物溶解在 ddh2o 中 3 出现较多假阳性答 : 主要有以下可能情况 : 1) 载体线性化不完全 : 即使是痕量未完全酶切的载体也会产生很高的转化背景可通过阴性对照检测载体是否线性化完全, 优化酶切体系, 提高限制性内切酶使用量延长酶切反应时间胶回收纯化酶切产物等都可以有效减少环状质粒残留 2) 插入片段扩增产物混有非特异扩增产物 : 建议 :1 优化 PCR 体系, 提高特异性 ;2 胶回收 PCR 产物 ;3 鉴定更多克隆 3) 反应体系中混入了相同抗性的质粒 :PCR 扩增模板 ( 载体或插入片段 ) 为环状质粒时, 若扩增产物直接用于重组反应, 残留环状质粒模板会产生较高的转化背景建议使用预线性化质粒作为扩增模板扩增产物进行 DpnI 消化或扩增产物进行胶回收纯化 4 菌落 PCR 无条带答 : 主要有以下可能情况 : 1) 引物不正确 : 推荐使用载体的通用引物或至少使用一条通用引物进行菌落 PCR 检测 2)PCR 体系或程序不合适 : 没有目的条带也没有空质粒条带, 建议优化 PCR 体系程序 ; 或者提取质粒, 以质粒做模板 PCR 验证 ; 或者进行酶切验证 3) 重组失败 : 没有目的条带, 只有空质粒的条带, 说明重组不成功, 载体线性化不完全, 建议优化酶切体系 5

C112-上传版本

C112-上传版本 ClonExpress II One Step Cloning Kit C112 www.vazyme.com Vazyme biotech co., ltd. 使用说明书 Version 7.1 目录 Contents 01/ 产品概述... 02 02/ 产品组分... 02 03/ 保存条件... 02 04/ 适用范围... 02 05/ 自备材料... 02 06/ 实验流程概要... 03

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