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1 ,2,3 1, (46.0%) (41.3%) (10.9%) S. aureus 32.0% % (P < 0.05) % 2.6% 7 CVVH (continuous veno-venous hemofiltration) :27: (foreign chemicals) (02) DOI: /ICJ

2 248 (gluconeogenesis) erythropoietin renin [1] [2] Acinetobacter baumannii, Enterococcus faecium Klebsiella pneumoniae [3] coagulase-negative staphylococci Staphylococcus aureus [4,5] Fram D. 6.6 [6] [7-9] 19 16, , % 16,550 [10-12] 7.8 [13] 15~33% 30 [8,9,14,15]

3 , (femoral venous catheter, FVC) (jugular venous catheter, JVC) 2010 (CVC bundle) ( ) (permanent central venous catheter, perm catheter) (arteriovenous bridge grafts/fistula, AVB/AVF) (retrospective study) (Centers for Disease Control and Prevention, CDC) 2008 [16] ( ) ( < 90 mmhg) ( ) 48 (central venous catheter, CVC) perm catheter ( ) 7 (continuous veno-venous hemofiltration, CVVH) ( ) 7 ( ) ORSA (Oxacillin resistant S. aureus) ORCNS (Oxacillin resistant coagulase negative staphylococci) VRE (Vancomycin-resistant Enterococcus) CRAB (Carbapenem-resistant A. baumannii) CRE (Carbapenemresistant Enterobacteriaceae)

4 250 [16] ( ) (healthcare-associated infection, HAI) ( ) (bloodstream infection, BSI) (> 38 ) ( 90 mmhg) ( ) (central line associated bloodstream infection, CLABSI) 48 Microsoft Excel PSPP ( ) ( / ) 1,000 ( / ) 100 ORSA (ORSA / S. aureus ) Chi square Fisher s exact test Mann- Whitney U test p < ( ) % 41.3% 10.9% ( ) A. baumannii (18.5%) K. pneumoniae (17.8%) Escherichia coli (12.1%) S. aureus (61.0%) coagulase negative staphylococci (12.1%) E. faecium (9.2%) Candida albicans (48.6%) C. tropicalis (21.6%) C. glabrata (16.2%) ( ) % % (p = 0.095)

5 251 Chi-square p=0.095 p=0.044 p=0.790 p=0.855 *Chi-square for trend % % (p = 0.044) ( ) S. aureus, A. baumannii K. pneumoniae ORCNS 76.5% ORSA 51.2% VRE 48.2% CRAB 37.9% CRE 7.7% ( ) % 44.0% % % 48 (perm cath) 26.9% (CVC, JVC, FVC) 56.8% (175 ) S. aureus 32% (56/175) CVC 9 FVC 5 JVC % %

6 252 / () (n = 141) Staphylococcus aureus 22 (71.0) 12 (44.4) 14 (73.7) 9 (52.9) 7 (53.9) 12 (66.7) 10 (62.5) 86 (61.0) Coagulase negative staphylococci 3 (9.7) 10 (37.0) 0 1 (5.9) 2 (15.4) 1 (5.6) 0 17 (12.1) Entercoccus faecium 2 (6.5) 1 (3.7) 0 5 (29.4) 2 (15.4) 2 (11.1) 1 (6.3) 13 (9.2) (n = 157) Acinetobacter baumannii 4 (21.1) 7 (29.2) 4 (17.7) 4 (12.1) 3 (20.0) 4 (19.1) 3 (13.6) 29 (18.5) Klebsiella pneumoniae 4 (21.1) 5 (20.8) 4 (17.7) 10 (30.3) 1 (6.7) 0 4(18.2) 28 (17.8) Escherichia coli 2 (10.5) 3 (12.5) 1 (4.4) 0 3 (20.0) 6 (28.6) 4(18.2) 19 (12.1) (n = 37) Candida albicans 2 (50) 3 (50) 5 (55.6) 1 (16.7) 1 (50) 2 (50) 4 (66.7) 18 (48.7) Candida tropicalis 0 2 (33.3) 1 (11.1) 2 (33.3) 1 (50) 1 (25) 1 (16.7) 8 (21.6) Candida glabrata 2 (50) 0 1 (11.1) 2 (33.3) (16.7) 6 (16.2) (n = 6) Lactobacillus species 1 (100) (100) (33.3) 13.6% 54.7% 67.6% ( ) 32.0% (99/309) % (70/99) 30

7 (n = 309) 30 (n = 70) 30 (n = 239) (95% ) ( ) 191 (61.8) 40 (57.1) 151 (63.2) 0.78 (0.45~1.34) ( ) 75 (22~96) 79 (31~96) 72 (22~94) a 12 (2~171) 29.5 (3~171) 10 (2~112) < a 49 (15.9) 26 (37.1) 23 (9.6) 5.55 (2.90~10.61) < (44.0) 31 (44.3) 105 (43.9) 1.01 (0.59~1.73) (6.5) 8 (11.4) 12 (5.0) 2.44 (0.96~6.23) (13.9) 29 (41.4) 14 (5.9) (5.54~23.34) < CVC 75 (23.3) 38 (54.3) 37 (15.5) 6.48 (3.61~11.66) < CVC ( ) 9 (1~32) 8.5 (1~23) 9 (1~32) a JVC 24 (7.8) 5 (7.1) 19 (7.9) 0.89 (0.32~2.48) 1 JVC ( ) 8 (1~20) 5 (1~16) 8 (2~20) a FVC 109 (35.3) 22 (31.4) 87 (36.4) 0.80 (0.45~1.42) FVC ( ) 5 (1~52) 6 (1~52) 5 (1~29) a Perm cath 83 (26.9) 20 (28.6) 63 (26.4) 1.12 (0.62~2.02) AVB/AVF 62 (20.1) 9 (12.9) 53 (22.2) 0.52 (0.24~1.11) (CVC, JVC, FVC) 175 (56.8) 48 (68.6) 127 (53.1) 1.92 (1.09~3.39) (17.8) 33 (47.1) 22 (9.2) 8.80 (4.63~16.72) < ( ) 11 (1~111) 10 (1~75) 11 (1~111) a (54.7) 32 (45.7) 137 (57.3) 0.63 (0.37~1.07) (13.6) 22 (31.4) 20 (8.4) 5.02 (2.54~9.92) < (67.6) 50 (71.4) 159 (66.5) 1.26 (0.70~2.26) CVVH 12 (3.9) 11 (15.7) 1 (0.4) (5.62~350.55) < (52.1) 59 (84.3) 102 (42.7) 7.20 (3.60~14.40) < (8.1) 5 (7.1) 20 (8.4) 0.84 (0.30~2.32) (%) ( ) Chi-Square Test ( a Mann-Whitney U Test) (95% ) p 30 p

8 CVVH (p < 0.05) ( ) (p < 0.05) 1 3.4% 1 2.6% 7 CVVH ( ) 73.4% [17] CVC bundle care [18-20] 2010 CVC bundle care 2010~2011 ( ) Menegueti MG bundle care (95% ) p ( 1 ) (1.004~1.066) ( 1 ) (1.011~1.041) ( / ) (0.347~1.536) ( / ) (1.539~8.873) ( / ) (0.546~2.260) ( / ) (1.839~10.305) ( / ) (0.562~5.094) ( / ) (0.129~4.433) ( / ) (0.921~5.093) CVVH ( / ) (2.167~ ) ( / ) (0.236~7.933) 0.726

9 255 bundle care [18] (CVC, JVC, FVC) CVC bundle care (2007~2010 ) 61.3% 48.2% (2011~2013 ) (p = 0.026) CVC bundle care Fram D. (72%) S. aureus (32.1%) 25% [6] (65%) (25%) coagulase-negative staphylococci S. aureus [4] A. baumannii, E. faecium, K. pneumoniae [3] S. aureus, A. baumannii, K. pneumoniae (p = 0.095) (p = 0.044) S. aureus % % coagulase-negative staphylococci % % CVC bundle care Vandecasteele SJ S. aureus 20% (biofilms) (vascular access) [2] 2010~ S. aureus [21] 30 [22] 70 [8,9,14,15]

10 256 CVVH 2007~2013 S. aureus CVVH 30 (V104A-022) 1. Eric Widmaier HR, Kevin Strang: The kidneys and regulation of water and inorganic ions. In: Eric Widmaier HR, Kevin Strang. Vander s Human Physiology, 9th eds, New York: Mc Graw Hill 2004: Vandecasteele SJ, Boelaert JR, De Vriese AS: Staphylococcus aureus infections in hemodialysis: what a nephrologist should know. Clin J Am Soc Nephrol 2009;4: (2017) (TNIS) download.aspx?fileid= Wisplinghoff H, Bischoff T, Tallent SM, et al: Nosocomial bloodstream infections in US hospitals: analysis of 24,179 cases from a prospective nationwide surveillance study. Clin Infect Dis 2004;39: Lillie P, Allen J, Hall C, et al: Long term mortality following bloodstream infection. Clin Microbiol Infect 2013;19: Fram D, Okuno MFP, Taminato M, et al: Risk factors for bloodstream infection in patients at a Brazilian hemodialysis center: a case-control study. BMC Infect Dis 2015;15: ;15: Gasch O, Camoez M, Domínguez M, et al: Predictive factors for early mortality among patients with methicillin-resistant Staphylococcus aureus bacteraemia. J Antimicrob Chemother 2013;68: Gasch O, Camoez M, Dominguez M, et al: Predictive factors for mortality in patients with methicillin resistant Staphylococcus aureus bloodstream infection: impact on outcome of host, microorganism and therapy. Clin Microbiol Infect 2013;19: Orsi GB, Stefano LD, Noah N: Hospital-acquired, laboratory-confirmed bloodstream infection: increased hospital stay and direct costs. Infect Control Hosp Epidemiol 2002;23: Rosenthal VD, Guzman S, Migone O, et al: The attributable cost, length of hospital stay, and mortality of central line-associated bloodstream infection in intensive care departments in Argentina: A prospective, matched analysis. Am J Infect Control 2003;31: Centers for Disease Control and Prevention: Vital signs: central line-associated blood stream infections-united States, 2001, 2008, and MMWR 2011;60: ;27: Pau CK, Ma FF, Ip M, et al: Characteristics and outcomes of Klebsiella pneumoniae bacteraemia in Hong Kong. Infect Dis 2015;47: Chopra T, Marchaim D, Awali RA, et al: Epidemiology of bloodstream infections caused by Acinetobacter baumannii and impact of drug resistance to both carbapenems and ampicillinsulbactam on clinical outcomes. Antimicrob Agents Chemother 2013;57:

11 Horan TC, Andrus M, Dudeck MA: CDC/ NHSN surveillance definition of health care associated infection and criteria for specific types of infections in the acute care setting. Am J Infect Control 2008;36: Eleftheriadis T, Liakopoulos V, Leivaditis K, et al: Infections in hemodialysis: a concise review- Part 1: bacteremia and respiratory infections. Hippokratia 2011;15: Menegueti MG, Ardison KM, Bellissimo- Rodrigues F, et al: The impact of implementation of bundle to reduce catheter-related bloodstream infection rates. J Clin Med Res 2015;7: Tang HJ, Lin HL, Lin YH, et al: The impact of central line insertion bundle on central lineassociated bloodstream infection. BMC Infect Dis 2014;14: Kim JS, Holtom P, Vigen C: Reduction of catheterrelated bloodstream infections through the use of a central venous line bundle: epidemiologic and economic consequences. Am J Infect Control 2011;39: Fram D, Taminato M, Ponzio V, et al: Risk factors for morbidity and mortality of bloodstream infection in patients undeergoing hemodialysis: a nested case-control study. BMC Res Notes 2014;7: Jeong S, Yoon S, Bae I, et al: Risk factors for mortality in patients with bloodstream infections caused by carbapenem-resistant Pseudomonas aeruginosa: clinical impact of bacterial virulence and strains on outcome. Diagn Microbiol Infect Dis 2014;80:

12 258 Analysis and Predictors of Mortality of Patients with Bloodstream Infections in the Nephrology Wards of a Medical Center Meng-Ching Chen 1, Fu-Der Wang 1,2,3, Yin-Yin Chen 1,3 1 Infection Control, 2 Division of Infectious Diseases, Department of Medicine, Taipei Veterans General Hospital, Taipei, Taiwan 3 National Yang-Ming University, Taipei, Taiwan Bloodstream infections (BSIs) are common in patients in nephrology wards, and result in prolonged hospitalization, increased medical expenses, and increased risk of mortality. This study aimed to investigate the risk factors and predictors of mortality of patients with BSIs. This retrospective study was performed in the nephrology ward from 2007 to 2013, and epidemiological investigations were conducted. The chi-square or Fisher exact test was used for categorical data; the Mann-Whitney U test, for data with nonnormal distribution; and logistic regression analysis, for assessing risk factors and predictors of mortality. In the study, 309 patients with BSIs were included. The density of BSI was decreased from 2.46 to 1.97 per 1000 patient-days. Staphylococcus aureus was the most common causative organism. The overall mortality rate was 32%, and the 30-day all-death mortality rate was 70.7%. On the logistic regression analysis, age, length of hospital stay, shock, use of antibiotics, and continuous venovenous hemofiltration were identified as independent predictors of mortality. Key words: Bloodstream infection, risk factors of mortality, nephrology, infection control

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