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1 第 33 卷第 8 期西南大学学报 ( 自然科学版 ) 2011 年 8 月 Vol.33 No.8 JournalofSouthwestUniversity (NaturalScienceEdition) Auġ 2011 文章编号 : (2011) 小鼠 CHD5 基因 sirna 重组腺 1 病毒载体的构建及鉴定 陈妮 1, 左国伟 2, 潘玥 1, 赖国旗 1,3, 杨根岭 1, 向廷秀 4, 韩建红 5, 黄云 6 1. 重庆医科大学实验动物中心, 重庆 ;2. 重庆医科大学医学检验系, 重庆 ; 3. 重庆医科大学感染性疾病分子生物学教育部重点实验室, 重庆 ; 4. 重庆医科大学附属第一医院分子肿瘤及表观遗传学实验室, 重庆 ; 5. 泸州医学院实验动物科, 四川泸州 ;6. 泸州市畜牧局, 四川泸州 摘要 : 目的 : 构建小鼠染色质区解旋酶 DNA 结合蛋白 5(CHD5) 基因干扰 RNA(smalinterferingRNA,siRNA) 重 组腺病毒载体并在 NIH3T3 细胞中验证其干扰作用. 方法 : 人工合成靶向 CHD5 的 sirna 干扰序列, 用分子克隆 的方法插入到穿梭载体 pses-hus 上, 并与腺病毒骨架质粒 padeasy-1 在 BJ5183 细菌中进行同源重组, 得到 padeasy-ses-hus-chd5sirna 重组质粒, 在 HEK293 细胞中包装成重组腺病毒 AdṟsimCHD5, 然后感染 NIH3T3 细胞, 用 RT-PCR 和 WesternBlot 方法检测其对 CHD5mRNA 和蛋白表达的干扰效果. 结果 : 得到高滴度 AdṟCHD5siRNA 重组腺病毒,RT-PCR 和 WesternBlot 结果表明该重组腺病毒能有效地降低 CHD5 基因的表 达. 结论 : 成功构建 AdṟCHD5siRNA 重组腺病毒载体, 并在 NIH3T3 细胞上实现 CHD5 基因表达抑制, 为进一步 研究 CHD5 基因功能奠定了基础. 关键词 : 染色质区解旋酶 DNA 结合蛋白 5 (CHD5);RNA 干扰 ; 腺病毒载体 中图分类号 :Q783 文献标志码 :A 染色质区解旋酶 DNA 结合蛋白 5(chromodomainhelicaseDNA-bindingprotein,CHD5) 是 Swi/Snf 亚家族成员, 该家族成员包含 1 个 Swi-Snf 解螺旋酶和 2 个染色质区基序, 参与染色体重组并影响基因的 转录.CHD5 基因位于人 1 号染色体短臂 (1p36) 上, 在神经胶质瘤等多种癌症中发现该区域的缺失与癌症 [1-3] [4] 发生存在紧密联系.Bagchi 等利用小鼠模型发现 CHD5 基因通过 p19arf/p53,p16ink4a 途径调控细胞的增殖衰老和凋亡等活动, 具有抑制肿瘤生长的功能.CHD5 基因可能是整个抑癌体系的上游关键基 因, 详细的抑癌机制及与 1p36 上其他抑癌基因之间的相互作用尚待进一步研究阐明. 本研究通过筛选 3 段 针对小鼠 CHD5 基因的有效干扰序列, 构建重组腺病毒感染载体, 感染 NIH3T3 细胞, 检测干扰效果, 为 进一步应用 CHD5 基因探讨肿瘤发生机制及治疗提供新思路和新工具. 1 材料与方法 1.1 材料 细菌 质粒和细胞 DH5α 和 BJ5183 细菌,HEK293 细胞为本实验室冻存,NIH3T3 细胞由重庆市超声医学工程重点实验 1 收稿日期 : 基金项目 : 国家自然科学基金资助项目 ( /H1622). 作者简介 : 陈妮 (1984 ), 女, 广西玉林人, 硕士研究生, 主要从事宫颈癌基因治疗方面的研究. 通信作者 : 赖国旗, 教授.

2 58 西南大学学报 ( 自然科学版 ) htp://xbbjb.swu.cn 第 33 卷 室惠赠,pSES-HUS 和 padeasy-1 质粒由美国芝加哥大学分子肿瘤学实验室惠赠 主要试剂 KpnⅠ 和 EcoRⅤ 等限制性核酸内切酶 T4 DNA 连接酶 DNA 胶回收试剂盒 RNA 提取试剂盒及 RT-PCR 试剂盒购自 TaKaRa 公司 ; 脂质体 2000 试剂盒购自 Invitrogen 公司 ; 质粒提取试剂盒购自 OME- GA 公司 ;DMEM 培养基 胎牛血清购自 Hyclone 公司 ;Western 和 IP 细胞裂解液 β -actin 单克隆抗体 辣根过氧化物酶标记的山羊抗兔二抗 辣根过氧化物酶标记的山羊抗鼠二抗和 DAB 试剂购自碧云天公司 ; CHD5 多克隆抗体购自 SataCruz 公司 ;PCR 引物由上海生工公司合成 靶向 CHD5 干扰片段 根据 Genbank 获得小鼠 CHD5 基因 cdna 序列 (NM_ ), 参考 RNA 干扰的设计原则, 应用 Dharmacon sirna Design 软件设计的 3 对针对 CHD5 基因 sirna 靶位点的寡核苷酸序列 ( 表 1), 送上海 生工公司合成. 表 1 CHD5 基因 sirna 靶位点的寡核苷酸序列 质粒名称 CHD5siRNA1 CHD5siRNA2 CHD5siRNA3 寡核苷酸序列 5 -AGGACAGAAGAGGTGGAGAATTTT-3 5 -ATTCTCCACCTCTTCTGTCCTTTT-3 5 -AAGAAGAAACTGAAGGAGAATTTT-3 5 -ATTCTCCTTCAGTTTCTTCTTTTT-3 5 -AGGAAGAAGGTGCAGGAGTTTTTT-3 5 -AAACTCCTGCACCTTCTTCCTTTT 方法 pses-hus-chd5sirna 载体的构建 构建 pses-hus-chd5sirna 载体 ( 图 1). 用 SfiⅠ 酶切 pses-hus 质粒, 胶回收酶切大片段, 将 3 对 靶向 CHD5 的干扰序列退火成为双链 DNA 片段, 分别与酶切后的 pses-hus 质粒连接,CaCl2 法转化到 DH5α 感受态细胞中, 用氨苄青霉素选择性培养基筛选阳性克隆, 提取质粒, 用 KpnⅠ 和 EcoRⅤ 双酶切鉴 定正确后进行测序, 确保插入序列正确, 获得含 CHD5siRNA 表达框的重组腺病毒穿梭质粒 padeasy-ses-hus-chd5sirna 和 padeasy- SES-HUS 载体的构建 首先用 CaCl2 法将 padeasy-1 转化到 BJ5183 感受 态细胞中, 建成 BJ-easy 感受态细菌, 然后用 PmeⅠ 酶切 pses-hus,pses-hus-chd5sirna 质粒并胶 回收纯化目的片段, 最后用 CaCl2 法转化目的片段到 BJ-easy 感受态细胞中. 氨苄青霉素及链霉素抗性培 养基筛选阳性克隆, 提取质粒. 用 PacⅠ 酶切鉴定正 确后转化 DH5α 感受态细胞进行扩增, 再提取质粒纯 化获得 padeasy-ses-hus-chd5sirna 和 padeasy- 图 1 pses-hus-chd5sirna 图谱 SES-HUS 载体, 备用 重组腺病毒的包装扩增与病毒滴度测定 HEK293 细胞培养 : 在 6 孔板中每孔接种 个细胞, 用含 10% 胎牛血清的 DMEM 培养基, 在 37,0.5% CO2 条件下培养 HEK293 细胞至融合度为 50%~60% 时进行转染. 转染 : 将 padeasy-ses-hus-chd5sirna 和 padeasy-ses-hus 经 PacⅠ 酶切回收后, 根据 Lipofectamine TM 2000Reagent 转染试剂说明书转染 HEK293 细胞, 并设只接种细胞不做处理的空白对照组. 转染后在 37,0.5% CO2 条件下继续培养 10~14d 后收集细胞,-80 和 37 反复冻融 4 次获取重组腺病毒原液, 病毒原液继续感染 HEK293 细胞使病毒大量扩增, 收集三轮扩增的病毒液, 分装后 -80 保存. 病毒滴度的测定 : 将病毒液进行对数稀释, 感染 HEK293 细胞, 参

3 第 8 期陈妮, 等 : 小鼠 CHD5 基因 sirna 重组腺病毒载体的构建及鉴定 59 [5] 照 Kaneto 等的 GFP 阳性细胞计数法计算病毒滴度 重组腺病毒感染 NIH3T3 细胞 在 6 孔板中用含 10% 胎牛血清的 DMEM 培养基培养 NIH3T3 细胞至融合度达到 50%~70%, 加入不 同滴度的阴性对照病毒 AḏRFP 进行感染,48h 后观察细胞荧光, 确定最佳感染复数 (multiplicityofinfection,moi). 再将重组腺病毒以合适的 MOI 感染 NIH3T3 细胞, 感染后 48h 收集细胞检测 CHD5 基因表 达. 实验设 AdṟCHD5siRNA 实验组 AḏRFP 对照组和不感染病毒的空白对照组 RT-PCR 检测 NIH3T3 细胞 CHD5mRNA 的变化 用 RNA 提取试剂盒提取腺病毒感染 48h 的 NIH3T3 细胞总 RNA, 用 RT-PCR 试剂盒进行反转录,PCR 扩增 CHD5 基因和内参 β-actin.chd5 基因的上 下游引物分别为 :5 GCAGGTCCTTCCACTTGAT3 和 5 CCGCCACCCTTTGATTAC3, 产物大小为 201bp. 反应条件为 :95 预变性 2 min,95 30s,49 30s,72 30s, 共 25 个循环, 最后 72 再延伸 5 min. 内参 β-actin 的上 下游引物分别为 :5 - AGCGATGTACGTAGCCAT-3 和 5 -CTCTCAGCTGTGGTGTGAA-3, 产物大小为 228bp. 反应条件 为 :94 预变性 2min,94 30s,56 30s,72 30s, 共 25 个循环, 最后 72 再延伸 5min.2% 琼 脂糖电泳分析 PCR 产物, 检测 NIH3T3 细胞 CHD5mRNA 表达的变化 WesternBlot 检测 NIH3T3 细胞 CHD5 蛋白的变化 用细胞裂解液提取 NIH3T3 细胞感染后 48h 的总蛋白,Bradford 法测定蛋白质量浓度, 取 50μg 蛋 白进行 WesternBlot 检测. 蛋白样品经 SDS-PAGE 分离后转移到 PVDF 膜上,5% 脱脂奶粉封闭 ( 室温, 1h),CHD5 一抗孵育 (4,12h),TBST 漂洗, 辣根过氧化物酶标记的山羊抗兔二抗孵育 ( 室温, 2h),TBST 漂洗,DAB 显色分析. 2 结果 2.1 pses-hus-chd5sirna 载体的测序 提取阳性克隆菌质粒,KpnⅠ 和 EcoRⅤ 双酶切,RNA 干扰片段插入成功的克隆仅被 KpnⅠ 单酶切, 空载质粒 pses-hus 被切成 6.8bp 和 1.8bp 左右的 2 条片段. 选取电泳结果正确的克隆进行测序, 测序 结果正确 ( 图 2). 图 2 pses-hus-chd5sirna 的测序鉴定

4 60 西南大学学报 ( 自然科学版 ) htp://xbbjb.swu.cn 第 33 卷 2.2 重组腺病毒 padeasȳses-hus-chd5sirna 和 padeasȳses-hus 载体的酶切鉴定 PmeⅠ 线性化 pses-hus-chd5sirna 和 pses-hus 后与 Adeasy-1 在 BJ5183 细菌内进行同源重组, 得到重组子 padeasy-ses-hus-chd5sirna 和 padeasy-ses-hus,pacⅠ 酶切后, 得到 2 个分别为 37.6kb 和 4.5kb 左右的片段, 酶切鉴定正确, 显示骨架载体同源重组成功 ( 图 3). 2.3 重组腺病毒 padeasȳses-hus-chd5sirna 和 padeasȳses-hus 的包装扩增及滴度数据 HEK293 细胞至融合度为 50%~60% 时转染 PacⅠ 线性化后的重组子 Adeasy-SES-HUS-CHD5siRNA 和 Adeasy-SES-HUS, 转染后 24h 可观察到少量细胞发 出红色荧光, 随着时间延长, 荧光逐渐增多 ( 图 4), 10~14d 后病毒颗粒成熟, 收获病毒原液, 将其继 续感染 HEK293 细胞进行 3 轮扩增的病毒液, 病毒 M. λ-hindⅢ DNA 标准 ;1. Adeasy-1;2. padeasy-ses-hus- CHD5siRNA1;3. padeasy-ses-hus-chd5sirna2;4. padeasy- SES-HUS-CHD5siRNA3;5.pAdeasy-SES-HUS. 图 3 重组腺病毒载体的 PacⅠ 酶切鉴定 得到大量扩增. 滴度测试显示重组腺病毒 AdṟCHD5siRNA 和 AḏRFP 的滴度高达 pfu/ml 和 pfu/ml. 图 4 转染 CHD5 干扰腺病毒 72h 后的 HEK293 细胞 ( 40) 2.4 NIH3T3 细胞中 CHD5 基因的表达变化 AḏRFP 感染 NIH3T3 细胞的适宜感染复数为 100~500. 将 CHD5 干扰病毒颗粒等量混合后与对照病毒一起以感染复数值为 100 分别感染 NIH3T3 细胞 ( 图 5),48h 后提取细胞总 RNA 和总蛋白检测 CHD5 基因表达水平差异.RT-PCR 结果显示感染了 AdṟCHD5siRNA 的 NIH3T3 细胞 CHD5mRNA 水平降低 ( 图 6).WesternBlot 进一步证实干扰后 NIH3T3 细胞 CHD5 蛋白表达受到抑制 ( 图 7). 图 5 CHD5 干扰腺病毒感染 48h 后的 NIT3T3 细胞 ( 100)

5 第 8 期陈妮, 等 : 小鼠 CHD5 基因 sirna 重组腺病毒载体的构建及鉴定 61 M. DNA 标准 ;1,4. 空白组 ;2,5. 对照组 ;3,6. 干扰组. 图 6 RNA 干扰 48h 后 NIH3T3 细胞中 CHD5mRNA 的表达变化 1. 空白组 ;2. 对照组 ;3. 干扰组. 图 7 RNA 干扰 48h 后 NIH3T3 细胞中 CHD5 蛋白的表达变化 3 讨论 CHD5 基因在人类多种癌症中存在基因缺失突变现象. 前人的研究已证实 CHD5 作为一个抑癌基因, [4] 正向作用于 p19arf/p53 信号通路, 调控细胞的增殖 凋亡和衰老等活动. RNA 是生物体内的重要物质, 内源性或外源性的双链 RNA(dsRNA) 经剪切形成的小片段 RNA 可通 [6] 过与互补序列的结合反作用于 DNA, 引起基因的表达沉默或抑制.RNA 干扰既是许多生物的基因调控 [7] 方法, 也是一种强大的了解基因功能的工具. 目前常用的制备 sirna 的方法主要包括化学合成法 体外 转录法 制备 sirna 混合物和 sirna 表达框架 (sirnaexpressioncassetes,secs) 法 sirna 表达载体 法. 前 3 种方法属于体外制备 sirna 法, 或价格昂贵 或作用时间短, 且需直接操作 RNA, 不利于长期研 [8] [9] 究, 而 sirna 表达框架的缺点在于难以对细胞进行转染.He 等创建的 padessy 重组腺病毒系统通过 细菌内高效同源重组, 结合抗生素抗性标记, 是一种方便有效构建 sirna 重组腺病毒体内表达载体的方 法. 该方法发挥了腺病毒可以高效率感染细胞稳定表达外源基因, 达到长时间沉默基因的优势, 制备的重 组腺病毒载体既可用于体外研究也可用于动物的体实验. 本实验通过 padessy 系统构建小鼠 CHD5 基因的重组干扰腺病毒载体, 同时使用 3 段有效干扰序列可 以达到一定的 鸡尾酒 效应, 在 NIH3T3 细胞中证实其能稳定 有效地抑制 CHD5 基因表达, 是进一步研 究 CHD5 基因功能的有用工具. 参考文献 : [1] BRODEUR G M,SEKHONG,GOLDSTEIN M N.ChromosomalAberrationsinHumanNeuroblastomas[J].Cancer, 1977,40(5): [2] WHITEPS,THOMPSONP M,GOTOH T,etal.DefinitionandCharacterizationofaRegionof1p36.3Consistently DeletedinNeuroblastoma[J].Oncogene,2005,24(16): [3] CHEUNG T H,LO K W,YIMSF,etal.ClinicopathologicSignificanceofLossofHeterozygosityonChromosome1in CervicalCancer[J].GynecolOncol,2005,96(2): [4] BAGCHIA,MILLSA A.TheQuestforthe1p36TumorSuppressor[J].CancerRes,2008,68(8): [5] KANETO H,XU Gang.ActivationoftheHexosaminePathwayLeadstoDeteriorationofPancreaticBeta-CelFunction ThroughtheInductionofOxidativeStress[J].JBiolChem,2001,276(33): [6] ARAVIN A,TUSCHL T.IdentificationandCharacterizationofSmalRNAsInvolvedinRNA Silencing [J].FEBS Let,2005,579(26): [7] 荀恒杰, 于源华, 蔡林君.RNA 干扰分子的制作 [J].ChineseBuletinofLifeScience,2006,18(2): [8] 喻彬, 陈炜.RNAi 与肿瘤相关基因及在肿瘤治疗中的研究 [J]. 国际泌尿系统杂志,2007,27(4): [9] HETong-chuan,ZHOUShi-bin,LUIST,etal.ASimplifiedSystemforGenerationRecombinantAdenoviruses[J]. ProcNatlAcadSciUSA,1998,95(5):

6 62 西南大学学报 ( 自然科学版 ) htp://xbbjb.swu.cn 第 33 卷 ConstructionandIdentificationof asirnarecombinantadenovirusvectorfor MouseChromodomainHelicaseDNABindingDomain5Gene CHEN Ni 1, ZUO Guo-wei 2, PAN Yue 1, LAIGuo-qi 1,3, YANG Geṉling 1, XIANG Ting-xiu 4, HANJiaṉhong 5, HUANG Yun 6 1. CenterofExperimentalAnimals,ChongqingMedicalUniversity,Chongqing400016,China; 2. DepartmentofLaboratoryMedicine,ChongqingMedicalUniversity,Chongqing400016,China; 3. KeyLaboratoryofInfectiousDiseaseMolecularBiologyofMinistryEducation, ChongqingMedicalUniversity,Chongqing400016,China; 4. MolecularOncologyandEpigeneticsLaboratoryoftheFirstAfiliatedHospital, ChongqingMedicalUniversity,Chongqing400016,China; 5. DepartmentofLaboratoryAnimal,LuzhouMedicalColege,LuzhouSichuan646000,China; 6.LivestockBureauofLuzhouCity,LuzhouSichuan646000,China Abstract:Objective:Toconstructarecombinantadenoviruscarryingashortinterfering RNA (sirna) targetingchd5d (chromodomainhelicasednabindingdomain5)geneandindentifyitsinhibitiveefect innih3t3cels.methods:thesirnasequencestargetingchd5geneweresynthesizedandclonedinto theshutleplasmidpses-husandthenhomogenouslyrecombinedwiththeadenovirusbackboneplasmid padeasy-1 in E.coli BJ5183 to generate the recombinant adenoviral plasmid padeasy-ses-hus- CHD5siRNA.pAdeasy-SES-HUS-CHD5siRNA wasthentransfectedinto HEK293celsforpackingof AdṟCHD5siRNAvirus.TheexpressionofCHD5wasdeterminedbyRT-PCRandwesternblotafteriṉ fection of AdṟsimCHD5 in NIH3T3 cels for evaluating theinhibitive efect. Results: The Adṟ CHD5siRNAobtainedwasshowntohaveahightiterandreducetheexpressionofCHD5determinedby RT-PCRandwesternblotafterinfection.Conclusion:TherecombinantadenovirusAdṟCHD5siRNA was successfulyconstructedandexpressedinnih3t3cels,whichcouldprovideabasisforfurtherresearch onthefunctionandmechanismofchd5. Keywords:chromodomainhelicaseDNAbindingdomain5;RNAinterference;adenovirusvector 责任编辑夏娟

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