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儒棚笛高
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1 /2014 DOI: \j.issn.1001G G0402 草业科学 PRATACULTURALSCIENCE 31 卷 11 期 Vol.31,No.11 K + 对盐胁迫下罗布麻生长及离子吸收分配的效应夏曾润, 王沛东, 贾文, 未丽, 米莉, 王锁民 ( 兰州大学草地农业科技学院草地农业生态系统国家重点实验室, 甘肃兰州 ) 摘要 : 通过温室盆栽试验, 研究了低钾 (0.01mmol L -1 ) 和正常钾 (2.5 mmol L -1 ) 水平对 NaCl 胁迫下罗布麻 (Apocynumvenetum) 生长和离子吸收分配的影响. 结果表明, 随着介质中 NaCl 浓度的增加, 罗布麻的根茎叶的生物量和株高呈下降趋势 ; 但相同浓度 NaCl 处理下, 低钾和正常钾之间无显著差异 (P>0.05). 罗布麻各器官中 Na + 含量随介质 NaCl 浓度的增加显著上升 (P<0.05), 叶中上升幅度明显大于根和茎 ; 叶和茎中 K + 随介质 NaCl 浓度的增加显著下降, 但仍维持较高水平, 根中 K + 浓度能保持稳定 ; 低钾和正常钾水平下, 与无盐胁迫 ( 对照 ) 相比,50mmol L -1 NaCl 处理植株叶中 K + 浓度无显著变化. 在对照条件下, 罗布麻体内积累大量 K +, 其叶中 K + 浓度是 Na + 的 15 倍多. 可见, 增强 K + 的选择性吸收和运输, 保持叶部较高的 K + 含量和 K + /Na + 比是罗布麻适应盐逆境的重要生理机制. 关键词 : 罗布麻 ;K + 水平 ; 盐胁迫 ; 离子吸收和分配 ;K + /Na + 比中图分类号 :S563.7;Q 文献标识码 :A 文章编号 :1001G0629(2014)11G2088G07 EffectofK + onthegrowth,ionabsorptionanddistributionof Apocynumvenetum undersaltstres XIAZengGrun,WANGPeiGdong,JIA Wen,WEILi,MILi,WANGSuoGmin (ColegeofPastoralAgricultureScienceandTechnology,LanzhouUniversity; StateKeyLaboratoryofGrasslandAgoGecosystems,Lanzhou730020,China) Abstract:TheefectsoftwoK + levels(0.01and2.5mmol L -1 )onthegrowth,ionabsorptionanddistrig butionofapocynumvenetum undernaclstresswereinvestigatedbythepotexperiment.theresultsindig catedthatthebiomassandplantheightofa.venetum decreasedwiththeincreaseofexternalnaclconceng tration,however,therewasnosignificantdiferencebetween0.01and2.5mmol L -1 K + underthesame salttreatment(p>0.05).na + contentsinaltissuesofa.venetumincreasedsignificantly(p<0.05)with theincreaseofexternalnaclconcentrationandtheincreaserateinleafwasgreaterthanthatinrootand stem.incontrasttona +,K + contentsdecreasedsignificantlybutstilmaintainedatahighlevelinleafand stemandmaintainedstableinrootwiththeincreaseofexternalnaclconcentration.furthermore,comg paredwiththecontrol,k + contentsinleafdidnotsignificantlychangewhena.venetum wasexposedto 50mmol L -1 NaCl.Moreover,A.venetum accumulatedhighcontentsofk + intheabsenceofsaltstress, especialyinleafwherek + contentswere15timeshigherthanthatofna +.Inconclusion,enhancingthe capacity ofselectiveabsorptionandtransportfor K +,and hence maintaining high K + contentsand K + /Na + ratioinleafarethekeyadaptivemechanismsofsaltgtoleranceina.venetum. 收稿日期 :2014G09G04 接受日期 :2014G10G15 基金项目 : 教育部博士点基金优先发展领域项目 ( ); 兰州大学中央高校基本科研业务费专项资金 (lzujbkyg2013g203) 第一作者 : 夏曾润 (1990G), 男, 陕西岚皋人, 在读硕士生, 研究方向为植物逆境生理与分子生物学.EGmail:xiazr13@lzu.edu.cn 通信作者 : 王锁民 (1965G), 男, 甘肃宁县人, 教授, 博导, 博士, 研究方向为植物逆境生理与荒漠化治理.EGmail:smwang@lzu.edu.cn

01mmol L -1 ) 和正常钾 (2.5 mmol L -1 ) 水平对 NaCl 胁迫下罗布麻 (Apocynumvenetum) 生长和离子吸收分配的影响.

2 11/2014 草业科学 ( 第 31 卷 11 期 ) 2089 Keywords:Apocynumvenetum;K + levels;saltstress;ionabsorptionanddistribution;k + /Na + ratio Correspondingauthor:WANGSuoGmin EGmail:smwang@lzu.edu.cn K 是维持植物正常生理代谢活动所必需的大量营养元素, 它参与并影响着植物的生长发育过程, 而且在抵抗非生物胁迫的过程中也发挥着重要作用 [1G2]. 当前, 自然因素及不合理的人类活动导致土壤钾匮乏盐碱化和次生盐碱化日益突出, 直接威胁到农牧业的可持续发展. 在低钾及盐渍环境中, 植物能够有效地吸收 K +, 以保持其体内的离子稳态平衡, 这对于保持细胞膨压和维持正常的生命活动具有重要意义 [3G4]. 罗布麻 (Apocynum venetum ) 系夹竹桃科 (Apocynaceae) 多年生宿根草本植物或半灌木, 全株含白色粘稠乳汁 [5G6], 主要生长在盐碱荒地沙漠边缘戈壁荒滩及海滨盐碱低湿地带, 广泛分布于我国西北东北华北和黄河流域, 其中以新疆荒漠地区为最佳产地 [5G8]. 罗布麻是我国西北荒漠地区一种产业化前景良好的兼具生态经济和药用价值的新兴多用途植物资源, 其生态幅度较广, 抗逆性强 [6,9], 在盐碱荒漠化土壤治理和改良方面具有重要的应用价值. 近年来, 罗布麻的开发利用价值越来越受到人们的重视, 众多研究者重点从罗布麻的生长特性 [10G11] 地理分布 [12] 纤维纺织 [13] 生态效 [14] [15] [16G17] 益化学成分及药理作用等方面开展了研究工作, 但对其耐盐机理尤其是缺钾环境下的抗盐生理机制研究甚少. 本研究通过盆栽试验, 对比分析低 K + 和正常 K + 水平下盐胁迫对罗布麻生长状况离子吸收及分配特征的影响, 初步探讨 K + 在其耐盐性中的作用, 以期为充分开发利用野生罗布麻资源及改良盐碱地提供理论依据. 1 材料与方法 1.1 材料培养试验在兰州大学草地农业科技学院榆中校区智能温室进行. 选择同一生态型的罗布麻 ( 小花红麻 ) 为试验材料. 罗布麻种子采自新疆维吾尔自治区阿勒泰市阿拉哈克乡 (47 44 N,87 30 E). 试验用土为黄土草炭土 =10 1 的混合栽培基质, 其水溶性 Na + 和 K + 分别为和 2.49μmol g -1, 交换性及可利用非交换性 Na + 和 K + 分别为和 13.21μmol g -1, 全氮 0.74 mg g -1, 全磷 0.95 mg g -1, 有机质 1.62%,pH 年 6 月, 剪下长为 3~5cm 的多年生罗布麻根段扦插入草炭土中进行培养. 培育 1 个月后, 选取长势基本一致 ( 高约 10cm) 的罗布麻幼苗移栽至装有 1kg 上述混合栽培基质的塑料花盆 ( 口径 14.5cm, 底径 10.0cm, 深 10.5cm) 中, 每盆约 15 株, 在温室条件下培养. 温室的相对湿度为 (60± 5)%, 昼夜温度 (25±2) /(19±2), 光照 16 h d -1, 光照强度约为 800μmol m -2 s -1. 待幼苗成活生长 10d 后间苗, 每盆保留长势一致的幼苗 8~10 株. 期间, 用调整过的 1/2Hoagland 营养液 [2 mmol L -1 KNO3,0.5 mmol L -1 KH2PO4,0.5 mmol L -1 MgSO4 7H2O,0.25 mmol L -1 Ca(NO3) 2 4H2O,1.25 mmol L -1 CaCl2 2H2O,60 μmol L -1 FeGcitrate,50 μmol L -1 H3BO3,10 μmol L -1 MnCl2 4H2O, 1.6 μmol L -1 ZnSO4 7H2O,0.6μmol L -1 CuSO4,0.05μmol L -1 Na2MoO4 2H2O] 浇灌两次. 1.2 试验处理将间苗生长 1 周后的罗布麻幼苗分成两组, 即低钾 (0.01mmol L -1 K + ) 组和正常钾 (2.5mmol L -1 K + ) 组, 每组设 3 个 NaCl 梯度处理, 共 6 个处理, 每个处理设 5 个重复, 共 30 盆. 低钾组 :1) 对照 (CK1). 用含低钾的 1/2Hoagland 营养液 ( 原营养液中 KNO3 和 KH2PO4 分别用等浓度 HNO3 和 H3PO4 代替, 0.01mmol L -1 K + 由 KCl 补充, 调 ph=5.7) 处理 ; 2) 轻度盐胁迫. 用含 50mmol L -1 NaCl 及低钾的 1/2Hoagland 营养液处理 ;3) 重度盐胁迫. 用含 200 mmol L -1 NaCl 及低钾的 1/2 Hoagland 营养液处理. 正常钾组 :1) 对照 (CK2). 用含正常钾的 1/2 Hoagland 营养液 ( 原营养液中 KNO3 和 KH2PO4 分别用等浓度 HNO3 和 H3PO4 代替,2.5 mmol L -1 K + 由 KCl 补充, 调 ph=5.7) 处理 ;2) 轻度盐胁迫. 用含 50mmol L -1 NaCl 及正常钾的 1/2 Hoagland 营养液处理 ;3) 重度盐胁迫. 用含 200 mmol L -1 NaCl 及正常钾的 1/2 Hoagland 营养液处理. 每 3d 浇灌处理液一次, 每次浇灌量为 300mL. 各处理梯度采取完全随机区组摆放, 处理 5 周后 ( 共浇灌 11 次 ), 当低钾重度盐胁迫幼苗叶出现轻

当前, 自然因素及不合理的人类活动导致土壤钾匮乏盐碱化和次生盐碱化日益突出, 直接威胁到农牧业的可持续发展.

3 2090 PRATACULTURALSCIENCE(Vol.31,No.11) 11/2014 微发黄时, 开始取样及测定相关指标. 1.3 测定指标及方法株高和生物量采用常规方法, 胁迫处理 5 周后每盆挑选 5 株长势相当的幼苗测定株高鲜重和干重. 根冠比 (g g -1 )= 根干重 / 地上部干重植物器官中 Na + K + 离子含量参照 Wang [18] 等的方法. 将烘干至恒重的植物样捣碎, 称 0.1 g, 放入 20mL 试管中, 加 100mmol L -1 的冰乙酸 10mL 后, 密封试管, 置于 90 沸水中水浴 2h, 冷却, 过滤, 稀释适当倍数后, 在火焰光度计 (2655G00) 上测定离子含量土壤中 Na + K + 含量分别称取 0.5g 和 2.0 g 过 0.5mm 筛的风干土样于 20mL 试管中, 各加入 2 mol L -1 的 HNO3 溶液 10mL 和去离子水 10mL, 震荡 30 min, 过滤, 稀释适当倍数后, 在火焰光度计 (2655G00) 上测定离子含量, 测定值分别为交换性和有效的非交换性 Na + K + 及水溶性 Na + K +. 土壤有效性 Na + = 水溶性 Na + + 交换性和有效的非交换性 Na +, 土壤有效性 K + = 水溶性 K + + 交换性和有效的非交换性 K +[19]. 1.4 数据处理所得数据用 Excel2010 录入, 并制图. 采用 SPSS16.0 统计软件进行单因素方差分析, 用 Duncan 法进行多重比较. 数据以平均值 ± 标准误表示. 2 结果与分析 2.1 不同处理对罗布麻植株生长的影响 NaCl 胁迫抑制了罗布麻的生长,200mmol L -1 NaCl 的抑制作用最为显著 ( 表 2). 正常钾水平下,200 mmol L -1 NaCl 处理的罗布麻植株生物量均显著低于无 NaCl 胁迫 (P<0.05), 根茎叶鲜重分别下降了 32% 46% 58%, 干重分别下降了 30% 43% 70%, 而 50 mmol L -1 NaCl 对其生物量无显著影响 (P>0.05). 低钾水平下,200 mmol L -1 NaCl 处理植株的根茎叶生物量与对照相比显著下降, 鲜重分别下降了 26% 59% 61%, 干重分别下降了 30% 58% 75%;50 mmol L -1 NaCl 处理植株的叶鲜重干重分别显著下降了 21% 20%( 表 1). 值得注意的是, 在相同浓度 NaCl 胁迫下, 不同 K + 水平对罗布麻生物量影响并不明显, 低钾和正常钾处理植株各器官生物量之间无显著差异 ( 表 1). 随 NaCl 胁迫浓度的增大, 罗布麻的根冠比均呈明显上升的趋势 ( 表 1). 低钾和正常钾水平下,200 mmol L -1 NaCl 处理罗布麻的根冠比均显著高于对照, 分别为对照的 2.3 和 1.7 倍, 低钾水平下其根冠比显著高于正常钾水平 40% ; 相比对照,50 mmol L -1 NaCl 处理植株的根冠比无显著变化 ( 表 1). 与茎的生物量变化相一致, 罗布麻的株高受到 200 mmol L -1 NaCl 胁迫的严重抑制, 而 50 mmol L -1 NaCl 处理相比对照无显著抑制效应 ( 图 1). 低钾和正常钾水平下, 200 mmol L -1 NaCl 处理罗布麻的株高分别比对照显著下降了 30% 和 25%, 但同一浓度 NaCl 胁迫处理时, 其株高在低钾和正常钾处理之间无显著差异 ( 图 1). 表 1 不同 K + 水平下罗布麻鲜重干重及根冠比响应 NaCl 胁迫的变化 Table1 Changesoffresh,dryweightandroot/shootofA.venetum responsetonaclstresunderdiferentk + level 指标 Parameter 鲜重 Freshweight/ g plant -1 干重 Dryweight/ g plant -1 部位 0.01mmol L -1 K + 2.5mmol L -1 K + Part 0 NaCl50 NaCl200 0 NaCl50 NaCl200 (CK1) mmol L -1 mmol L -1 (CK2) mmol L -1 mmol L -1 根 Root 4.00±0.40a 3.77±0.21a 2.97±0.29b 4.18±0.27a 3.89±0.42a 2.83±0.15b 茎 Stem 1.03±0.03a 0.99±0.13a 0.42±0.04b 0.99±0.10a 0.85±0.01a 0.53±0.08b 叶 Leaf 1.43±0.08a 1.13±0.17b 0.56±0.05c 1.50±0.11a 1.36±0.08ab 0.63±0.07c 根 Root 1.05±0.10a 0.98±0.09ab 0.74±0.07b 1.04±0.07a 0.95±0.13ab 0.73±0.04b 茎 Stem 0.31±0.01a 0.33±0.04a 0.13±0.01b 0.30±0.03a 0.28±0.01a 0.17±0.02b 叶 Leaf 0.44±0.02a 0.35±0.04b 0.11±0.01c 0.46±0.03a 0.41±0.03ab 0.14±0.02c 根冠比 Root/Shoot 1.44±0.11c 1.46±0.12c 3.29±0.31a 1.37±0.06c 1.38±0.17c 2.35±0.24b 注 : 同行不同小写字母表示差异显著 (P<0.05). Note:Diferentlowercaseleterswithinthesamerowindicatesignificantdiferenceat0.05level.

1 g, 放入 20mL 试管中, 加 100mmol L -1 的冰乙酸 10mL 后, 密封试管, 置于 90 沸水中水浴 2h, 冷却, 过滤, 稀释适当倍数后, 在火焰光度计 (2655G00) 上测定离子含量. 1.3.3 土壤中 Na + K + 含量分别称取 0.5g 和 2.0 g 过 0.

4 11/2014 草业科学 ( 第 31 卷 11 期 ) mmol L -1 NaCl 胁迫下, 低钾处理植株根和叶中 Na + 含量分别比正常钾处理植株显著高 34% 和 35%. 罗布麻植株地上部叶和茎中的 K + 含量随外界 NaCl 胁迫浓度的增大有所下降, 但根中 K + 浓度变化较小维持了较高且相对稳定的 K + 浓度 ( 图 2). 低钾和正常钾水平下, 与对照相比,50 mmol L -1 NaCl 处理植株叶中 K + 浓度无显著变化, 茎中 K + 图 1 不同 K + 水平下罗布麻株高响应 NaCl 胁迫的变化 Fig.1 ChangesofplantheightofA.venetum responseto NaClstresunderdiferentK + level 注 : 不同的小写字母表示差异显著 (P<0.05). 下同. Note:Diferentlowercaseletermeansignificantdiferenceat0.05 level.thesamebelow. 2.2 不同处理对罗布麻各器官中 Na + K + 浓度的影响罗布麻体内 Na + 含量随外界 NaCl 胁迫浓度的增大不断升高, 且叶中上升幅度明显高于根和茎 ( 图 2). 在低钾和正常钾水平下,50 mmol L -1 NaCl 处理植株根茎叶中的 Na + 含量均显著高于对照 ( 除叶中正常钾水平的 Na + 含量 )(P <0.05), 分别为对照的倍和倍, 在两个 K + 处理水平之间差异并不显著 (P >0.05); 浓度分别显著下降了 17% 和 23%;200 mmol L -1 NaCl 处理植株叶茎中 K + 浓度分别比对照显著下降了 28% 32% 和 34% 32%(P<0.05). 2.3 不同处理对罗布麻各器官中 K + /Na + 的影响在正常钾水平下, 未添加 NaCl 的对照组罗布麻植株体内维持了很高的 K + /Na + ( 图 3), 其叶茎和根中的值分别为和 2.0; 即使在低钾条件下, 其植株地上部叶和茎中的 K + /Na + 仍分别高达 15.5 和 6.1.NaCl 的添加显著降低了罗布麻体内各部位的 K + /Na +. 叶中 K + /Na + 降幅最大, 低钾和正常钾水平下, 与对照相比,50 mmol L -1 NaCl 处理植株叶中 K + /Na + 均显著降低了 88%, 其值分别为 1.8 和 2.0; 植株茎根中 K + /Na + 相比对照分别显著下降了 69% 79% 和 47% 36%, K + /Na + 值也均大于 1; 无论是 50mmol L -1 NaCl 图 2 不同 K + 水平下罗布麻体内 Na + K + 浓度响应 NaCl 胁迫的变化 Fig.2 ChangesofNa + concentrationandk + concentrationofa.venetum responsetonaclstresunderdiferentk + level

低钾和正常钾水平下, 与对照相比,50 mmol L -1 NaCl 处理植株叶中 K + 浓度无显著变化, 茎中 K + 图 1 不同 K + 水平下罗布麻株高响应 NaCl 胁迫的变化 Fig.1 ChangesofplantheightofA.

5 2092 PRATACULTURALSCIENCE(Vol.31,No.11) 11/2014 过离子本身的毒害效应及盐离子导致的渗透胁迫和营养胁迫对植物造成伤害 [20G21]. 生物量是植物对盐胁迫响应的综合反映, 也是植物耐盐性的直接指标 [22]. 本研究结果显示,200 mmol L -1 NaCl 胁迫处理下, 罗布麻生长受到严重抑制, 株高和植株各营养器官生物量均显著下降 ( 图 1, 表 1). 地上部叶和茎的生物量减少幅度大于根系, 表明叶茎对盐胁迫的响应比根系更加敏感, 这可能是罗布麻耐盐碱的一种生长适应策略, 通过减少能量向茎叶的流动, 以维持根系的生长, 显著提高了根冠比 ( 表 1). 低钾和盐分的双重胁迫加速了这一能流过程, 使之更好地维持根系的高生长量, 以保证根系对养分 ( 包括盐分 ) 和水分的吸收, 同时抑制地上部的生长, 减少蒸腾和水分散失, 促进根系干物质积累, 从而形成低钾水平下植株根冠比始终高于正常钾水平的格局. 50mmol L -1 NaCl 处理显著降低了低钾水平下罗布麻叶鲜重, 而对正常钾水平下植株的生长无显著影响 ( 表 1), 说明适宜的 K + 水平在一定程度上能够增强盐胁迫下罗布麻的生长适应能力, 同时也表明维持土壤环境中适宜的 Na + /K + 有助于植物的生 [23] 长. 宋姗姗等在研究与罗布麻同科植物长春花 (Catharanthusroseus) 时也发现,3 NaCl 胁迫下, 施入一定量的 KCl, 将 Na + /K + 调整为 20 1 时可图 3 不同 K + 水平下罗布麻叶茎根中 K + /Na + 比响应 NaCl 胁迫的变化 Fig.3 ChangesofK + /Na + ratioinleaf,stemand rootofa.venetum responsetonacl stresunderdiferentk + levels 还是 200mmol L -1 NaCl 胁迫处理, 当外界 NaCl 胁迫浓度相同时, 罗布麻体内各组织中的 K + /Na + 在低钾和正常钾水平间差异不显著. 2.4 供试土壤有效性 Na + K + 浓度变化试验处理前土壤有效性 Na + K + 浓度分别为 μmol g -1 干土,Na + /K + 为 4.39; 试验处理后, 经测算分析, 土壤中有效性 Na + 浓度大幅上升, 有效性 K + 浓度变化较小, 从而 0( 对照 ) mmol L -1 NaCl 处理 5 周后低钾和正常钾处理土壤的 Na + /K + 分别为和讨论与结论盐胁迫是影响植物生长的重要非生物因子, 通以显著缓解盐胁迫对长春花的危害. 离子稳态是植物抗盐的重要生理机制. 盐胁迫下, 细胞内正常生理状态下的离子平衡往往受到破坏, 渗透势的改变影响植物对水分和养分的吸收, 从而影响生长. 许多研究表明 [24G26], 随着外界 NaCl 浓度的不断增大, 植株地上部 Na + 含量逐渐升高 K + 含量逐渐降低, 本试验结果与之相一致. 宁建凤 [27] 等利用网室盆栽试验研究不同浓度 NaCl(100~ 400mmol L -1 ) 胁迫对罗布麻生理特性的影响, 结果也表明, 在盐胁迫下, 罗布麻根部和地上部 Na + 含量明显增加,K + 含量随着介质中盐浓度的增加而降低. 植物在接触高盐环境后数小时到数天内渗透胁迫在影响植物生长中占主导地位, 经过长时间的盐胁迫, 营养胁迫则占主导地位 [20].K + 是植物生长发育的重要营养元素, 也是高等植物体内质量分数最多的阳离子, 具有调控离子平衡渗透调节蛋白质合成细胞膨压光合作用等生理功能 [28]. 本试验中, NaCl 胁迫处理 5 周后, 罗布麻各器官中 Na + 含量随介质 NaCl 浓度的增加显著上升, 特别是叶中上升幅

地上部叶和茎的生物量减少幅度大于根系, 表明叶茎对盐胁迫的响应比根系更加敏感, 这可能是罗布麻耐盐碱的一种生长适应策略, 通过减少能量向茎叶的流动, 以维持根系的生长, 显著提高了根冠比 ( 表 1).

6 11/2014 草业科学 ( 第 31 卷 11 期 ) 2093 度很大 ; 但其叶和茎中 K + 含量仍维持较高水平, 且根中 K + 浓度能保持稳定 ( 图 2), 表明罗布麻对 K + 具有较强的选择性吸收和运输能力. K + /Na + 是衡量植物耐盐性的重要指标, 适盐性植物一个主要特征是细胞质内 K + /Na + 维持在 [29] 合适范围之内. 盐胁迫下, 植物体内 K + /Na + 显 [28,30] 著下降. 抗盐植物能够维持较高的 K + /Na + 以确保体内足够的 K + 浓度. 本研究表明, 罗布麻体内尤其是叶中积累了大量的 K +, 在盐胁迫下, 根中能够始终贮存稳定含量的 K +, 地上部 K + 浓度虽有所下降但仍维持了较高的水平 ( 图 2), 从而使其体内保持了相对高的 K + /Na +, 表现出对 Na + K + 强的运输调控能力.50 mmol L -1 NaCl 胁迫下, 低钾和正常钾处理土壤中 Na + 分别为 K + 的 15.8 和 10.1 倍, 然而, 罗布麻叶中 K + /Na + 分别高达 1.8 和 2.0( 图 3), 均高于同等盐浓度下的豌豆 (Pisum sativum) [31] 高粱 (Sorghum bicolor) [32] 等农作物耐盐品种的 K + /Na +, 也高于苇状羊茅 (Festuca arundinacea) [33] 四翅滨藜 (Atriplexcanescens) [34] 等耐盐碱荒漠植物的 K + /Na +. 由此可见, 通过增强有益离子 K + 的选择性吸收和运输, 从而保持叶部较高的 K + 含量和 K + /Na + 是罗布麻适应盐逆境的决定因子之一. 此外, 罗布麻作为传统中药, 其降压作用已被广泛证明 [16G17,35], 至今在新疆地区仍流传着高血压不可怕, 三年一斤罗布麻的民族医药古训. 药理研究指出 [36G38], 减少饮食中 Na + 的摄入补充 K +, 尤其是降低 Na + /K + 是高血压和心血管疾病发病预防和治疗的一项重要非药物性控制措施. 宋建平 [39] 等对罗布麻叶中的无机元素进行了系统测定和分析, 结果表明, 在检测的 23 个无机元素中, 罗布麻叶中 K 元素平均含量最高. 本研究表明, 即使在根际土壤 K + 水平很低 (Na + /K + 为 4.3) 的环境下, 罗布麻也能够高效地吸收 K + 并运送至地上部叶中, 维持高达 15.5 的 K + /Na + ( 图 3), 这为罗布泊地区民众心血管疾病的低发生率与其长期饮用罗布麻茶这一传统生活习惯密切相关提供了有力证据支持. 罗布麻具有广泛而特异的药用保健功效, 人们对其开展了大量的药理研究, 然而, 关于罗布麻叶降血压的确切机理目前仍不清楚, 有待进一步深入研究. 参考文献 [1] 廖红, 严小龙. 高级植物营养学 [M]. 北京 : 科学出版社,2003. [2] ZörbC,Senbayram M,PeiterE.PotassiuminagricultureGstatusandperspectives[J].JournalofPlantPhysiology,2014, 171(9):656G669. [3] ZhuJK,LiuJ,XiongL.GeneticanalysisofsalttoleranceinArabidopsis:Evidenceforacriticalroleofpotassiumnutrition [J].PlantCel,1998,10(7):1181G1191. [4] 周峰, 李平华, 王宝山.K + 稳态与植物耐盐性的关系 [J]. 植物生理学通讯,2003,39(1):67G70. [5] XieW Y,ZhangX Y,WangT,HuJJ.Botany,traditionaluses,phytochemistryandpharmacologyofApocynumvenetum L.(Luobuma):Areview[J].JournalofEthnopharmacology,2012,141(1):1G8. [6] 李国旗, 陈彦云. 罗布麻生理生态学研究 [M]. 北京 : 科学出版社,2012. [7] 张绍武. 我国罗布麻分布区的地理区划 [J]. 西北植物学报,2002,22(7):1G5. [8] 谢彬. 新疆罗布麻的生物生态学特性研究 [D]. 乌鲁木齐 : 新疆大学,2009. [9] 铁桂春, 刘红献. 野生罗布麻特性及利用价值 [J]. 草业科学,2006,23(6):46G47. [10] 于德花, 徐化凌, 常尚连.NaCl 胁迫对罗布麻种子萌发及幼苗生长的影响 [J]. 湖北农业科学,2008,47(7):772G775. [11] 胡瑞林, 钱学射. 罗布麻在陕西关中引种适应性的研究 [J]. 西北植物学报,2002,22(7):57G67. [12] 刘起棠, 肖正春, 张卫明, 陆长梅, 张广伦. 罗布红麻和罗布白麻生态地理特性探讨 [J]. 中国野生植物资源,2009,28(2):13G16. [13] WangLL,HanG T,ZhangY M.Comparativestudyofcomposition,structureandpropertiesofApocynumvenetum fig bersunderdiferentpretreatments[j].carbohydratepolymers,2007,69(2):391g397. [14] 平晓燕, 林长存, 白宇, 刘起棠, 卢欣石. 新疆阿勒泰平原荒漠罗布麻种植区的生态效益评价 [J]. 草业学报,2014,23(2): 49G58. [15] 程秀丽, 张素琼, 李青山. 罗布麻叶中黄酮类化合物研究 [J]. 中药材,2007,30(9):1086G1088. [16] Kim D W,YokozawaT,HatoriM,KadotaS,NambaT.EfectsofaqueousextractsofApocynum venetum leaveson

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(Microsoft Word - \254\354\256i$1$.doc)

$(Microsoft Word - \254\354\256i$1$.doc)$ 神奇的滅孑師太 ~~ 探討日常生活常用水溶液及植物對於消滅孑孓之成效壹研究動機春眠不覺曉, 處處蚊子咬, 夜來巴掌聲, 蚊子死多少? 夏天即將到來, 蚊子的惡夢一直困擾著我們了, 班上同學舉起手腳指著一個一個紅豆冰咒念, 真是令