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1 86 药学学报 Acta Pharmaceutica Sinica 2017, 52 (1): 新型 PPARδ 受体激动剂体外活性筛选及对高血脂金黄地鼠的调脂作用 李露露 1, 艾进超 2, 李鸿炎 2, 郑晓鹤 2*, 朱慧民 1, 3* (1. 温州医科大学附属第二临床医学院, 浙江温州 ; 2. 浙江海正药业股份有限公司, 浙江台州 ; 3. 浙江省台州市中心医院, 浙江台州 ) 摘要 : 对新型过氧化物酶体增殖物激活受体 (peroxisome proliferator-activated receptors, PPARs) 激动剂 HS 激活 PPARα PPARγ 和 PPARδ 受体的活性进行筛选, 并研究其对饮食性高脂血症金黄地鼠的血脂调节作用 首先, 以肝癌 HepG2 细胞构建 PPARs- 荧光素酶基因报告系统, 转染绿色荧光蛋白 (green fluorescent protein, GFP) 质粒作为内参, 分别加入不同浓度的 HS 后继续培养 24 h, 通过检测荧光素酶的相对活性来评价 HS 对 PPARα PPARγ PPARδ 的激动活性 ; 其次, 以高脂饮食法复制金黄地鼠高脂血症模型, 分别通过预防性给药与治疗性给药考察 HS 对高脂血症金黄地鼠血浆中总胆固醇 (TC) 甘油三酯 (TG) 低密度脂蛋白胆固醇 (LDL-C) 高密度脂蛋白胆固醇 (HDL-C) 水平和脂肪指数的影响 体外研究结果显示, HS 对 PPARδ 受体具有显著的激活作用, 半数有效浓度 (EC 50 ) 为 0.01 μmol L 1 ; 对 PPARα 和 PPARγ 并无明显的激活效应 体内研究结果显示, 通过预防性给药和治疗性给药, 与模型组比较, HS (5 10 和 20 mg kg 1 ) 均可显著降低高脂血症金黄地鼠血浆中 TC TG LDL-C 水平和脂肪指数 (P < 0.01, P < 0.05), 升高 HDL-C 水平 (P < 0.01, P < 0.05) 结果提示, HS 具有较强的 PPARδ 激动活性, 且对金黄地鼠实验性高脂血症具有显著的预防和治疗作用 关键词 : 过氧化物酶体增殖物激活受体 δ; 报告基因 ; 高脂血症 ; 调脂作用中图分类号 : R285 文献标识码 : A 文章编号 : (2017) Impact of a noval PPARδ agonist on blood lipids in hyperlipidemic golden hamsters LI Lu-lu 1, AI Jin-chao 2, LI Hong-yan 2, ZHENG Xiao-he 2* 1, 3*, ZHU Hui-min (1. Second Clinical College of Wenzhou Medicine University, Wenzhou , China; 2. Zhejiang Hisun Pharmaceutical Co., Ltd., Taizhou , China; 3. Taizhou Central Hospital in Zhejiang Province, Taizhou , China ) Abstract: The study was designed to explore the effects of HS on activation of peroxisome proliferator-activated receptors (PPARα, γ and δ) and in the down-regulation of hyperlipidemia in golden hamster. Luciferase gene reporters of PPARα, PPARγ and PPARδ were constructed in HepG2 cells and the green fluorescent protein (GFP) was used as an internal reference. Transfected cells were then cultured with various concentrations of HS for 24 h. The peroxisome proliferator-response element luciferase activity was determined by the dual-luciferase reporter gene assay system. To investigate the lipid-lowering effect of HS060098, hyperlipidemic golden hamsters fed by high-diet were administered orally with HS through prophylactic and therapeutic approaches respectively. The levels of blood lipids such as total cholesterol (TC), triglyceride (TG), low density lipoprotein cholesterol (LDL-C), high density lipoprotein cholesterol (HDL-C) and fat index in hamsters were evaluated. The results showed that HS was a potent activator of PPAR δ with 收稿日期 : ; 修回日期 : * 通讯作者 Tel: , htat@163.com; Tel: , Fax: , zhengxh@hisunpharm.com DOI: /j

2 李露露等 : 新型 PPARδ 受体激动剂体外活性筛选及对高血脂金黄地鼠的调脂作用 87 a good selectivity and the median effective concentration (EC 50 ) is 0.01 μmol L 1, while no obvious PPARα and PPARγ activation was observed. In the golden hamster, oral administration of HS (5, 10, 20 mg kg 1 d 1 ) for 2 weeks, led to a significant decrease the concentrations of plasma TC, TG, LDL-C and fat index (P < 0.05 or P < 0.01), whereas the contents of plasma HDL-C were increased significantly (P < 0.05 or P < 0.01). The data suggest that HS is a novel PPARδ agonist with a significant activity in the prevention and therapy of hyperlipemia in golden hamster. Key words: peroxisome proliferator-activated receptor delta; reporter gene; hyperlipidemia; blood lipids regulation 过氧化物酶增殖物激活受体 (PPARs) 是配体激活的核转录因子, 属于核受体超家族, 其分布具有高度组织选择性 PPARs 有 3 种亚型, 分别是 PPARα PPARγ 和 PPARβ/δ ( 以下简称为 PPARδ) PPARα 主要在肝 骨骼肌 肾和心脏等器官和组织中表达, 发挥着调节脂肪酸和脂蛋白代谢, 降低炎症反应时程, 抑制平滑肌细胞炎症反应, 促进人巨噬细胞中胆固 [1, 醇的排出等作用 2] PPARγ 主要表达在棕色和白色脂肪组织及小肠组织中, 控制细胞分化和脂肪的储存, [3, 调节胰岛素的作用 4] PPARδ 近些年逐渐成为研究热点, PPARδ 分布广泛, 在许多组织中均有表达, 其中在骨骼肌的表达较高, 对于 PPARδ 的生理功能一直知之甚少 随着强效选择性 PPARδ 激动剂的出现以及研究的不断深入, 人们发现 PPARδ 在脂质及糖类代谢 炎症反应 细胞存活 创伤愈合 胚胎移植和中枢神经系统的发育等多方面都有重要作用 [5 8] 研制开发 PPARδ 激动剂已成为预防和治疗以脂代谢紊乱和胰岛素抵抗为主要特征的代谢性疾病的新方向 GW 是葛兰素公司开发的 PPARδ 高选择性激动剂, HS 是浙江海正药业股份有限公司自主研发的 PPARδ 激动剂一类新药 ( 化学结构式见图 1), 本文从体外采用活细胞内核受体模型对其活性进行考察, 从体内采用金黄地鼠高脂血症模型对其血脂调节作用进行评价, 为临床应用提供参考 材料与方法实验动物 SPF 级金黄地鼠, 雄性, 体重 80~ 100 g, 由北京维通利华实验动物技术有限公司提供, 许可证号 : SCXK ( 京 ) 室温 24 ± 2, 单 Figure 1 Chemical structure of HS 笼饲养, 适应性饲养 7 天, 自由饮食饮水, 光暗周期 10 h/14 h 主要试药 胎牛血清 胰蛋白酶 DMEM 培养 液 二甲基亚砜 (DMSO) 均购自 Gibco 公司 ; 质粒载 体 pcdna3.1 购自 Invitrogen 公司 ; 脂质体 FuGENE6 购自 Roche 公司 ; 反转录试剂盒 质粒提取试剂盒购 自 TaKaRa 公司 ; 荧光素酶检测试剂盒购自 Promega 公司 ; 总胆固醇 (TC) 甘油三酯 (TG) 低密度脂蛋 白胆固醇 (LDL-C) 高密度脂蛋白胆固醇 (HDL-C) 试剂盒均购自上海科华生物工程股份有限公司 ; 供 试药 HS 由浙江海正药业股份有限公司提供, 相对分子质量为 529.5; GW 由沈阳药科大学 提供, 相对分子质量为 453.2, 纯度为 98.6%, 均以食 用级玉米油为溶媒, 超声振荡 20 min 溶解 主要仪器 3111 型 CO 2 恒温培养箱 ( 美国 Thermo Scientific 公司 ); SW-CJ-2D 超净工作台 ( 苏州净化 设备有限公司 ); SpectraMax Plus384 多功能酶标仪 ( 美国 MD 公司 ); CHEMIX-180 全自动生化仪 ( 日本 Sysmex 公司 ) HS PPARs 靶点检测 HepG2 细胞在含 10% 胎牛血清 100 u ml 1 青霉素和 100 μg ml 1 链 霉素的 DMEM 培养基中, 于 37 5% CO 2 环境下 培养后, 将细胞按每孔 个接种于 96 孔板内, 每 孔 100 μl 参照转染试剂说明用 FuGENE6 将质粒共 转染 HepG2 细胞, 构建 PPARα PPARγ PPARδ 荧 光素酶基因报告系统, 具体方法参见文献 [9] 24 h 后 将原 100 μl 培养液弃去, 加入 200 μl 新鲜培养液, 然后分别加入不同浓度的药物诱导刺激, DMSO 作为 空白对照, 待测药物每个浓度或空白对照设 3 孔平行 实验 在相同条件下继续培养 24 h 后裂解细胞, 酶标 仪化学发光法迅速检测细胞裂解液中的荧光素酶活 性 为了避免细胞接种数量和化合物毒性等因素造成 的实验误差, 还同时共转染了绿色荧光蛋白 (GFP) 质粒作为内参来校正转染效率, 以溶剂对照的校正 荧光值为 1, 计算各组细胞荧光增加的倍数, 数值越

3 88 药学学报 Acta Pharmaceutica Sinica 2017, 52 (1): 大表示激活能力越高 HS 预防性给药调血脂药效实验金黄地鼠适应性喂养 1 周后, 按体重均匀随机分成 6 组, 分别为正常组 模型组 GW (10 mg kg 1 ) 组 HS (20 mg kg 1 ) 组 HS (10 mg kg 1 ) 组和 HS (5 mg kg 1 ) 组, 每组 8 只 实验药物剂量参考阳性药和前期预实验结果而设定 正常组继续喂饲普通饲料, 其余各组换喂高脂饲料 (0.3% 胆固醇 + 20% 棕榈油 % 基础饲料 ), 造模同时灌胃给药, 给药体积 10 ml kg 1, 正常组和模型组给予等体积溶媒 给药 2 周后, 动物乙醚麻醉, 眼眶后静脉采血 500 μl, 1% 肝素钠抗凝, 4 下 r min 1 离心 15 min, 取血浆 200 μl 于微量杯, 用全自动生化仪测定血浆中 TC TG LDL-C 和 HDL-C 值 随后, 断颈处死动物, 摘取睾丸 肾脏及腹腔白色脂肪, 并称湿重, 计算脂肪指数 HS 治疗性给药调血脂药效实验金黄地鼠适应性喂养 1 周后, 随机挑取 8 只作为正常组, 其余动物喂饲高脂饲料 (0.3% 胆固醇 + 20% 棕榈油 % 基础饲料 ), 喂饲 1 周后, 乙醚麻醉, 动物眼眶后静脉采血取血浆, 用全自动生化仪测定 TC TG LDL-C 和 HDL-C 值 根据体重 TC TG LDL-C HDL-C 值, 筛选出 40 只喂饲高脂饲料动物均匀随机分为模型组 GW (10 mg kg 1 ) 组 HS (20 mg kg 1 ) 组 HS (10 mg kg 1 ) 组和 HS (5 mg kg 1 ) 组, 每组 8 只 分组当日均按 10 ml kg 1 灌胃给药, 正常组和模型组给予等体积溶媒, 给药期间继续喂饲高脂饲料 给药 2 周后, 同法测定血浆中 TC TG LDL-C 和 HDL-C 水平并计算脂肪指数 统计学处理所有实验结果均采用平均值 ± 标准差 (x ± s) 的形式表示, 数据采用 SPSS 19.0 软件处理, 组间差异比较采用 t 检验, P < 0.05 为差异有统计学意义 结果 1 HS 对 PPARs 受体激活情况的影响 半数有效浓度 (median effective concentration, EC 50 ) 是衡量化合物药理作用的重要指标之一 本次 模型筛选中, 观察了 HS 在 6 种不同浓度条件 下对受体的激活情况, 能较全面地反映化合物的药 理特性, 相应的荧光倍数值及 EC 50 值见表 1, HS 对 PPARα 受体和 PPARγ 受体并无明显的 激活作用, 但对 PPARδ 受体具有显著的激活作用, EC 50 为 0.01 μmol L 1 2 HS 预防性给药调血脂作用 与正常组比较, 模型组金黄地鼠血浆中 TC TG 和 LDL-C 水平均明显升高 (P < 0.01), 表明金黄地鼠 高脂血症模型造模成功 与模型组比较, GW 组可显著降低血浆中 TC LDL-C 含量和升高脂肪 指数 (P < 0.01, P < 0.05), 但对 TG 和 HDL-C 无显著 作用 (P > 0.05); HS 高 中 低 (20 10 和 5 mg kg 1 ) 3 个剂量组较模型组比均可显著降低血浆中 TC TG LDL-C 水平和脂肪指数 (P < 0.01, P < 0.05), HS 中 低剂量组可以显著升高血浆中 HDL-C 水平 (P < 0.05), 但 HS 高剂量组 HDL-C 水平 与模型组比较无显著性差异 (P > 0.05), 这可能与预 防性给药实验只按体重分组, 该组 HDL-C 水平基础 值偏低或样本例数过少 个体差异较大有关 结果表 明, HS 调脂效果强于 GW501516, 见表 2 Table 1 The active effects of HS on the peroxisome proliferator-activated receptors. ia: Inactivity Relative fluoresent 1 PPARα PPARγ PPARδ intensity/μmol L ± ± ± ± ± ± ± ± ± ± ± ± ± ± ± ± ± ± 0.30 EC 50 ia ia 0.01 Table 2 Effects of HS on blood lipid levels of hyperlipidemia golden hamsters through prophylactic administration. TC: Total cholesterol; TG: Triglyceride; LDL-C: Low density lipoprotein cholesterol; HDL-C: High density lipoprotein cholesterol. n = 8, x ± s. P < 0.01 vs normal group; * P < 0.05, ** P < 0.01 vs model group Group Dose/mg kg 1 TC/mmol L 1 TG/mmol L 1 LDL-C/mmol L 1 HDL-C/mmol L 1 Fat index/% Normal 3.56 ± ± ± ± ± 0.18 Model ± ± ± ± ± 0.34 GW ± 0.39 ** 2.95 ± ± 0.36 * 2.81 ± ± 0.39 ** HS ± 0.48 ** 1.45 ± 0.35 * 0.44 ± 0.18 ** 2.81 ± ± 0.23 ** ± 0.38 ** 1.04 ± 0.29 ** 0.42 ± 0.10 ** 3.16 ± 0.20 * 1.67 ± 0.32 ** ± 1.31 ** 0.96 ± 0.18 ** 0.56 ± 0.21 ** 3.04 ± 0.32 * 1.99 ± 0.31 *

4 李露露等 : 新型 PPARδ 受体激动剂体外活性筛选及对高血脂金黄地鼠的调脂作用 89 Table 3 Effects of HS on blood lipid level of golden hamsters with hyperlipemia through therapeutic administration. n = 8, x ± s. P < 0.05, P < 0.01 vs normal group; * P < 0.05, ** P < 0.01 vs model group Group Dose/mg kg 1 TC/mmol L 1 TG/mmol L 1 LDL-C/mmol L 1 HDL-C/mmol L 1 Fat index/% Normal 4.09 ± ± ± ± ± 0.21 Model ± ± ± ± ± 1.07 GW ± 0.67 ** 4.61 ± ± 0.73 ** 2.75 ± 0.37 * 3.00 ± 0.43 HS ± 0.80 ** 2.50 ± 1.34 * 0.71 ± 0.50 ** 3.19 ± 0.14 ** 2.73 ± 0.27 * ± 0.83 ** 2.89 ± 0.81 * 1.09 ± 0.28 ** 3.21 ± 0.22 ** 2.83 ± 0.40 * ± 1.12 ** 1.40 ± 0.47 ** 0.94 ± 0.34 ** 3.57 ± 0.50 ** 2.56 ± 0.28 * 3 HS 治疗性给药调血脂作用 与正常组比较, 模型组金黄地鼠血浆中 TC TG LDL-C HDL-C 水平以及脂肪指数均显著升高 (P < 0.01, P < 0.05), 见表 3 与模型组比较, GW 能 显著降低高脂血症金黄地鼠血浆中 TC 水平 (P < 0.01), 显著升高 HDL-C 水平 (P < 0.05), 但对血浆中 LDL-C 水平不降反升 (P < 0.01), 对 TG 和脂肪指数 无显著性影响 (P > 0.05); HS 高 中 低 3 个 剂量组均可显著降低高脂血症金黄地鼠血浆中 TC TG LDL-C 水平和脂肪指数 (P < 0.01, P < 0.05), 显 著升高 HDL-C 水平 (P < 0.01), 其降血脂作用明显优 于 GW 讨论 PPARs 在无配体存在时, 与维甲酸 X 受体 (retinoid X receptor, RXR) 形成 PPARs/RXR 异二聚 体, 并募集辅抑制因子组成无活性的复合体从而抑 制其靶基因的表达 ; 当配体出现, 并与 PPARs 配体结 合区的氨基酸残基结合后, 可激活 PPARs, 此时配体 与 PPARs 及 RXR 形成有转录活性的复合体, 并进一 步与特定基因启动子上的 PPAR 特异性反应元件 (peroxisome proliferator responsive element, PPRE) 结 合, 从而调控下游靶基因的转录, 发挥配体的生物学 效应 [10, 11] 根据 PPAR 信号传导通路的特性, 本研究 利用荧光素酶报告基因法在细胞水平上构建了 PPARα PPARγ PPARδ 激动剂筛选模型, 通过检测 出的荧光素酶活性来评价 PPARα PPARγ 及 PPARδ 的转录活性, 同时还通过量 效分析计算出相应的 EC 50 值, 以此反映 HS 对 PPARs 不同受体激动 能力的强弱 本实验结果表明, HS 对 PPARδ 具有明显的激活作用, 为其药理机制的研究提供了 新的理论 [12] 有研究报道, 与小鼠 大鼠 青鳉和家兔等相 比, 金黄地鼠的脂质代谢特征与人类更为相近, 且对 胆固醇和脂质更为敏感, 具有饲养容易, 血量充足, 造模时间短和模型稳定等优势, 因此金黄地鼠被广泛应用于高脂血症和动脉粥样硬化的研究 [13 15] 综合上述因素, 本研究采用金黄地鼠作为实验动物, 经高脂饮食诱导后形成了以 TC TG LDL-C 升高为特征的高脂血症模型, 成模率达 85% 以上, 其中 HDL-C 显著升高, 这可能是因为高脂饮食后导致金黄地鼠体内总胆固醇急剧上升, 而 HDL-C 是总胆固醇成分 [16, 之一的缘故 17] 本研究分别通过预防性给药与治疗性给药考察了 HS 对高脂血症金黄地鼠血浆中 TC TG LDL-C HDL-C 水平以及脂肪指数的影响 结果显示, 无论是预防性给药还是治疗性给药, HS 表现出调血脂效果均优于 GW 预防性和治疗性给药中, 除 TC 外, HS 降血脂作用量效关系不明显, 推测可能与分组时主要以 TC 平均值一致而其他值相近, 加之每组样本例数过少, 对高脂饮食喂养过程难以控制 对禁食等敏感性不一致带来的个体差异有关 [18], 通过增加样本例数将可能会得到比较好的量效关系 综上所述, HS 是一种选择性很强的新型 PPARδ 受体激动剂, 且具有良好的预防和治疗高脂血症的作用, 药效远好于 GW501516, 前期毒理研究也未显示较大毒性, 目前国内外还没有 PPARδ 激动剂上市, HS 具有良好的发展前景 但本实验仅从核受体模型对 HS 进行了体外筛选研究, 在金黄地鼠高脂血模型上进行了简单的体内降血脂水平的研究, 仅涉及到药物初期的筛选研究, 药效研究不够深入和全面, 其药效学 药代动力学及安全性评价均需具体考察, 进一步可从体外如以肝癌细胞 HepG2 建立细胞内脂质堆积模型, 体内如建立豚鼠或与人类更为接近的灵长类动物恒河猴高血脂模型, 并从血脂水平以及脂肪吸收 代谢相关蛋白和基因的表达等方面进一步研究, 为 HS 成药性评价提供更多的数据支撑

5 90 药学学报 Acta Pharmaceutica Sinica 2017, 52 (1): References [1] Tremblay-Mercier J, Tessier D, Plourde M, et al. Bezafibrate mildly stimulates ketogenesis and fatty acid metabolism in hypertriglyceridemic subjects [J]. J Pharmacol Exp Ther, 2010, 334: [2] Ma JJ, Zhang Q, Fang N, et al. A cell-based screening model for human PPARα agonist ligands discovery and its applicability [J]. Chin Pharm J ( 中国药学杂志 ), 2011, 46: [3] Sugii S, Olson P, Sears DD, et al. PPARγ activation in adipocytes is sufficient for systemic insulin sensitization [J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2009, 106: [4] Festuccia WT, Blanchard PG, Belchior T, et al. PPAR γ activation attenuates glucose intolerance induced by mtor inhibition with rapamycin in rats [J]. Am J Physiol Endocrinol Metab, 2014, 306: E1046 E1054. [5] Berger JP, Akiyama TE, Meinke PT. PPARs: therapeutic targets for metabolic disease [J]. Trends Pharmacol Sci, 2005, 26: [6] Rajagopal R, Semenkovich CF. Peroxisome proliferator activated receptor-δ: the middle child vies for attention [J]. Arterioscler Thromb Vasc Biol, 2014, 34: 5 7. [7] Gong HY, Zhu Y, Li ZH, et al. Embryo-fetus development toxicity of a novel PPAR-δ agonist in rat [J]. Acta Pharm Sin ( 药学学报 ), 2014, 49: [8] Reilly SM, Lee CH. PPARδ as a therapeutic target in metabolic disease [J]. FEBS Lett, 2008, 582: [9] Li Z, Liao C, Ko BCB, et al. Design, synthesis, and evaluation of a new class of noncyclic 1,3-dicarbonyl compounds as PPARα selective activators [J]. Bioorg Med Chem Lett, 2004, 14: [10] Motojima K. Peroxisome proliferator-activated receptor (PPAR): structure, mechanisms of activation and diverse functions [J]. Cell Struct Funct, 1993, 18: [11] Kanzer-Lewis G. Early combination therapy with a thiazolidinedione for the treatment of type 2 diabetes [J]. Diabetes Educ, 2003, 29: [12] Zhang L, Perdomo G, Kim DH, et al. Proteomic analysis of fructose-induced fatty liver in hamsters [J]. Metabolism, 2008, 57: [13] Gao J, Lian ZQ, Zhu P, et al. Lipid-lowering effect of cordycepin (3'-deoxyadenosine) from Cordyceps militaris on hyperlipidemic hamsters and rats [J]. Acta Pharm Sin ( 药学学报 ), 2011, 46: [14] Choi WH, Gwon SY, Ahn J, et al. Cooked rice prevents hyperlipidemia in hamsters fed a high-fat/cholesterol diet by the regulation of the expression of hepatic genes involved in lipid metabolism [J]. Nutr Res, 2013, 33: [15] Jiang CY, Yang KM, Yang L, et al. A 1 H NMR based metabonomics approach to progression of coronary atherosclerosis in a hamster model [J]. Acta Pharm Sin ( 药学学报 ), 2013, 48: [16] Lee CL, Tsai TY, Wang JJ, et al. In vivo hypolipidemic effects and safety of low dosage Monascus powder in a hamster model of hyperlipidemia [J]. Appl Microbiol Biotechnol, 2006, 70: [17] Lian ZQ, Li Y, Gao J, et al. A novel AMPK activator, WS070117, improves lipid metabolism discords in hamsters and HepG2 cells [J]. Lipids Health Dis, 2011, 10: 67. [18] Li LP, Sun JW, Cao YB, et al. Studies on the application of the hyperlipemia model of golden hamster and Wistar rat [J]. J Pharm Pract ( 药学实践杂志 ), 2007, 25:

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