生物工程学报 Chin J Biotech 2010, April 25; 26(4): 470 475 journals.im.ac.cn Chinese Journal of Biotechnology ISSN 1000-3061 cjb@im.ac.cn 2010 CJB, All rights reserved. 动物及兽医生物技术 鸡氨肽酶 N 的高效可溶性表达及生物学功能分析 尹鑫, 刘澜澜, 贾莹, 明晓波, 张颖, 李甜甜, 魏萍 东北农业大学动物医学学院, 哈尔滨 150030 摘要 : 本研究旨为克隆鸡氨肽酶 N(chAPN) 基因, 高效表达可溶性目的蛋白, 并测定其生物学功能 应用 RT-PCR 方法从鸡胚肾细胞中克隆 chapn 的基因片段, 经测序鉴定后再克隆至原核表达载体 pcold-tf, 构建重组原核表达质粒 pcold-tf-chapn, 在大肠杆菌 BL21(DE3) 中经不同条件诱导表达目的蛋白 ; 利用镍柱亲和层析法纯化可溶性蛋白, 并进行 SDS-PAGE Western blotting 鉴定 ;Leu-PNA 酶促反应和 ELISA 等方法检测目的蛋白生物学功能 结果显示, 重组质粒 pcold-tf-chapn 在大肠杆菌中以可溶形式高效表达 ; 酶促反应及 ELISA 结果显示该蛋白具有酶活性, 可结合传染性支气管炎病毒 (IBV), 并表现为剂量依赖性 这为今后研究 chapn 的酶活性 作为 IBV 受体及抗病毒功能奠定了实验基础 关键词 : 鸡氨肽酶 N, 可溶性, 酶活性 Expression and biological function analysis of chicken aminopeptidase N Xin Yin, Lanlan Liu, Ying Jia, Xiaobo Ming, Ying Zhang, Tiantian Li, and Ping Wei College of Veterinary Medicine, Northeast Agricultural University, Harbin 150030, China Abstract: To clone and express the gene encoding chicken aminopeptidase N (chapn), and analysis the biological function of chapn expressed in Escherichia coli (E. coli). The chapn gene was amplified by RT-PCR from the kidney cells of chicken embryo and then cloned into the prokaryotic expression vector pcold-tf. Recombinant expression plasmid of pcold-tf-chapn was constructed and then transformed into the competent E. coli BL21(DE3) cells for expression under different conditions such as induction time and inductor concentrations. Purified soluble recombinant chapn was obtained by Ni-NTA His Bind Resin affinity chromatography and identified by SDS-PAGE gel and Western blotting assay. Its biological function was detected by its reaction with Leu-PNA and Enzyme-Linked Immunosorbent Assay (ELISA). The results showed that the expression product of chapn gene in E. coli was soluble. It was able to bind infectious bronchitis virus (IBV) dose-dependently. In conclusion, chapn gene has been successfully cloned and expressed in E. coli, which will establish a basis for further research the enzymatic activity and antiviral function. Keywords: chapn, solubility, enzymatic activity Received: October 27, 2009; Accepted: March 8, 2010 Supported by: Scientific Research Fund of Heilongjiang Provincial Education Department (No. 2003fz012), Program for Innovative Research Team of Northeast Agricultural University (No. CXT-006-4-1). Corresponding author: Ping Wei. Tel: +86-451-55190125; Fax: +86-451-55190463; E-mail: weiiping@yahoo.com.cn 黑龙江省教育厅科学技术研究项目 (No. 2003fz012), 东北农业大学创新团队课题 (No. CXT-006-4-1) 资助
尹鑫等 : 鸡氨肽酶 N 的高效可溶性表达及生物学功能分析 471 氨肽酶 N(APN), 是一种 Ⅱ 型金属蛋白酶, 主要分布于肾 小肠 呼吸道上皮细胞 粒细胞 单核细胞 成纤维细胞 内皮细胞 血脑屏障处的脑外膜细胞以及中枢神经系统突触膜等处 [1-2], 具有促进血管生发 [3] 酶解多肽 充当病毒细胞受体 介导 [1] 信号转导等多种生物学功能 在冠状病毒属中, APN 可作为多种病毒的细胞受体 [4], 如猪传染性胃肠炎病毒 (TGEV) [5] 猫传染性腹膜炎病毒(FIPV) [6] 猫冠状病毒 (FCoV) [7] 犬冠状病毒(CCoV) [6] 及人冠状病毒 (HCoV-229E) [8] 等的受体 研究表明, 鸡氨肽酶 N (chapn) 可作为鸡传染性支气管炎病毒 (IBV) 的细胞受体 [9], 同时在鸡胚发育过程发挥重要作用 [10] 而国内外未见该蛋白高效可溶性表达, 对其生物学功能研究也极少 本研究成功扩增了 chapn 的全基因, 构建了重组表达质粒 pcold-tf-chapn, 实现了 chapn 的高效 可溶性表达, 并探讨了表达产物的生物学功能, 为今后进一步开展相关研究奠定了基础 1 材料与方法 1.1 实验材料 1.1.1 毒株 菌株 质粒及血清 IBV M41 株由中国农业科学院哈尔滨兽医研究所刘胜旺研究员馈赠 ;pcold-tf 由本研究室保存 ; 大肠杆菌 DH5α BL21 (DE3) 由本研究室保存 ; 兔抗 IBV M41 血清由本研究室制备保存 1.1.2 主要仪器与试剂 fast 200 总 RNA 提取试剂盒购于 Fastgene 公司 ;Wizard Purification Plasmid DNA Purification System 购自 Promega 公司 ; 质粒小量提取试剂盒购于宝泰克公司 ; 氨苄青霉素购于 Amersco 公司 ;IPTG (Dioxane free) M-MLV 反转录酶 Oligo(dT) 18 dntps RNase Inhibitor pmd 18-T Simple 载体 T4 DNA 连接酶 EcoRⅠ SalⅠ 等均购于 TaKaRa 公司 ; 蛋白纯化试剂盒购于 Novagen 公司 ; 辣根过氧化物酶 (HRP) 标记羊抗兔 IgG 购于 Sigma 公司 1.1.3 引物根据 GenBank 上已登录的鸡氨肽酶 Ey 序列 (Accession No. D87992) 及 pcold-tf 多克隆位点 设计引物如下 :chapn-up:5 -GAATTCATGGCAG CCGGCTTCTTCAT-3 ( 下划线处为 EcoRⅠ 酶切位点 );chapn-down:5 -GTCGACGGCTAGCTGGAGG CGGTCTC-3 ( 下划线处为 SalⅠ 酶切位点 ), 用以扩增 chapn 基因序列 引物由上海生工有限公司合成, 预期扩增目的片段为 2906 bp 1.1.4 鸡胚 18 d 鸡胚购于东北农业大学孵化场 1.2 chapn 基因的克隆与鉴定 1.2.1 鸡胚肾组织的处理及总 RNA 提取无菌采集 18 d 鸡胚肾组织, 液氮研磨后, 按照 Fastgen 公司 fast 200 总 RNA 提取试剂盒说明书上的操作方法提取总 RNA 1.2.2 chapn cdna 第一链的合成取 10 μl 上述提取的 RNA 与 2 μl Oligo (dt) 18, 混匀,65 水浴 10 min, 立即置冰上 2 min 然后加入 4 μl 5 buffer,2 μl dntp Mix,1 μl RNase Inhibitor,1 μl M-MLV, 共 20 μl 体系, 混匀,42 水浴 60 min, 得到 cdna, 20 保存备用 1.2.3 chapn 全长基因扩增以上述合成的 cdna 第一链为模板, 扩增 chapn 基因片段 PCR 反应条件 :95 5 min;94 50 s,61.6 l min,72 3 min,30 个循环 ;72 20 min 反应结束后对 PCR 产物进行琼脂糖凝胶电泳检测 1.2.4 chapn 基因的克隆将 PCR 产物用 DNA 琼脂糖凝胶回收试剂盒纯化后与 pmd 18-T Simple 载体连接, 转化 E. coli DH5α 感受态细胞,LB 平板 (AMP 抗性 ) 过夜培养筛选, 挑选单菌落, 振荡培养后用质粒小量提取试剂盒提取质粒,PCR 和 EcoRⅠ SalⅠ 双酶切及 EcoRⅠ 单酶切鉴定均为阳性的质粒送上海生工生物工程技术服务有限公司测序, 进一步测序鉴定正确的阳性重组质粒命名为 PMD 18-T-chAPN 1.3 chapn 原核表达载体的构建与鉴定 EcoRⅠ 和 Sal Ⅰ 双酶切阳性重组质粒 PMD 18-T-chAPN, 切出 chapn 目的基因, 同时用 EcoR Ⅰ 和 Sal Ⅰ 双酶切 pcold-tf 空载体 ; 经 DNA 琼脂糖凝胶回收试剂盒分别回收 chapn 目的基因和
472 ISSN1000-3061 CN11-1998/Q Chin J Biotech April 25, 2010 Vol.26 No.4 pcold-tf 空载体部分 ; 在 T4 DNA 连接酶作用下 16 连接过夜, 连接产物转化 E. coli DH5α 感受态细胞, 涂布含 Amp 的 LB 平板,37 培养箱过夜, 挑取单菌落, 振荡培养后用质粒小量提取试剂盒提取质粒, 进行 PCR 鉴定及 EcoR I 单酶切 EcoR I/ Sal I 双酶切鉴定, 鉴定均为阳性的质粒送 TaKaRa 公司测序, 进一步测序鉴定正确的阳性重组质粒命名为 pcold-tf-chapn 1.4 chapn 的诱导表达及 SDS-PAGE 分析将测序正确的阳性表达重组体质粒转化至感受态 E. coli BL21 (DE3), 随机挑取 Amp 抗性单菌落, 接种于 5 ml 含 Amp 的 LB 和 SOC 培养液中,37 振荡培养过夜, 次日按 1:100 比例接种于 10 ml 含 Amp 新鲜 LB 和 SOC 培养基,37 剧烈振摇至菌液 OD 600 为 0.5~0.7,15 预冷培养物 30 min 后, 加入终浓度为 0.1~2.0 mmol/l 的 Isopropylthio-β-Dgalactoside (IPTG),15 低温诱导表达, 分别于 4 8 12 24 36 48 h 取等量菌液,4 5000 r/min 离心 10 min, 收集菌体 于冰浴中超声波破碎菌体, 超声时间 10 s, 间隔时间 10 s, 功率 300 W, 破碎 10 min 裂解菌液于 4 12 000 r/min 离心 10 min, 取等量上清液和沉淀, 进行 8% SDS-PAGE 电泳, 用考马斯亮蓝染色, 观察蛋白表达结果 Bandscan 软件分析不同诱导表达条件下目的蛋白相对表达量 1.5 chapn 表达产物的亲和纯化取 3 g 诱导表达菌用 20 ml 的非变性纯化裂解液超声破碎,4 12 000 r/min 离心 15 min, 取上清进行蛋白纯化 层析柱预先用 Binding Buffer 平衡 10 倍柱体积, 上样后用 Binding Buffer 洗至基线, 然后用 6 倍柱体积的 Wash Buffer (500 mmol/l NaCl,20 mmol/l Tris,80 mmol/l 咪唑,pH 7.9) 洗去非特异吸附蛋白, 最后以 Elute Buffer (500 mmol/l NaCl,20 mmol/l Tris,1 mol/l 咪唑,pH 7.9) 洗脱特异性结合的融合蛋白, 收集洗脱液 纯化目的蛋白经蛋白纯化仪脱盐处理后, 将其超滤浓缩, 以 Bradford 法蛋白浓度检测试剂盒测定蛋白浓度, 即得到最终的目的蛋白 利用 8% SDS-PAGE 电泳检测纯化产物 1.6 Western blotting 分析 取纯化的重组蛋白样品作 SDS-PAGE 分析, 将凝胶内蛋白条带转印至硝酸纤维素 (NC) 膜上, 用 5% 脱脂奶粉 4 封闭过夜后, 将膜放置于鼠抗 His 单抗 (1 2000) 中,37 温育 2 h; 再加入辣根过氧化物酶标记的山羊抗鼠 IgG (1 5000) 于 37 孵育 60 min,dab 避光显色 1.7 氨肽酶活性的测定 [11] 参照 Blackmon 等的方法 取 1 ml 不同稀释浓度的纯化目的蛋白, 加入 1 ml Tris-NaCl Buffer, 50 μl Leu-PNA 中,37 水浴 1 h, 再加入 0.1 ml 0.4 mol/l Na 2 CO 3 使反应终止, 在 410 nm 波长下测定各测定管的吸光度值 (OD 410 ), 同时取 1 mg 蛋白质所在相同的体积加入 1 ml Tris-NaCl Buffer,50 μl Leu-PNA,0.1 ml 0.4 mol/l Na 2 CO 3 作为标准液, 每次试验至少重复测定 3 次, 以 3 次平行试管的算术平均值表示, 比较不同浓度表达蛋白与 Leu-PNA 反应后 OD 410 的差异性 1.8 ELISA 检测 chapn 与 IBV 的结合能力 用不同稀释度的纯化目的蛋白包被酶标板,4 包被 16 h,pbst 洗涤 3 次 ; 经 1% BSA 于 37 封闭 30 min 后加入倍比稀释 IBV 尿囊液进行方阵滴定, 37 孵育 60 min; 加入兔抗 IBV 多抗血清 (1 8000), 37 孵育 60 min, 洗涤后加入新鲜稀释的酶标羊抗兔 IgG,37 孵育 60 min,tmb 显色后检测 450 nm 波长 OD 值, 同时设阴性对照及空白对照 2 结果 2.1 chapn 全长基因的克隆和鉴定 利用合成引物以鸡胚肾细胞的 cdna 第一链为模板进行 PCR 扩增, 并将扩增产物克隆到 pmd 18-T Simple 载体中, 经琼脂糖凝胶电泳分析, 在 2906 bp 处有特异性的单一条带 ( 图 1), 与预期大小一致, 将该 chapn 基因序列提交 GenBank (Accession No. GU223212) 2.2 chapn 基因原核表达载体的构建与鉴定 以 EcoRⅠ 和 SalⅠ 双酶切含有 chapn 基因的 pmd 18-T Simple, 回收目的基因片段, 插入 pcold-tf 载体的相同酶切位点获得重组表达质粒 pcold-tf-chapn, 以重组质粒进行 EcoRⅠ 单酶
尹鑫等 : 鸡氨肽酶 N 的高效可溶性表达及生物学功能分析 473 切 EcoR Ⅰ/ SalⅠ 双酶切后琼脂糖凝胶电泳分析, 结果得到长约 2906 bp 的片段 ( 图 2), 阳性克隆测序并分析后证实基因插入位置 方向 读码框均正确 2.3 表达产物 SDS-PAGE 鉴定及可溶性分析 SDS-PAGE 电泳结果显示, 在约 160 kda 处出现特异性目的条带, 大小与预期相符, 而空菌及空载体对照无此特异性条带 ( 图 3); 经蛋白可溶性分析看出, 融合蛋白 90% 以上以可溶形式表达 ( 图 4) 2.4 chapn 非变性纯化及 Western blotting 检测 菌体裂解上清液中融合蛋白经亲和层析纯化后,SDS-PAGE 结果显示, 出现 160 kda 的蛋白带, 与预期蛋白的大小一致 ( 图 5), 经凝胶薄层扫描分析, 其纯度大于 95% 经 Bradford 法定量纯化的 图 3 SDS-PAGE 分析鸡氨肽酶 N 在 pcold-tf 表达系统中的表达 Fig. 3 SDS-PAGE analysis of the recombinant chapn in pcold-tf system. M: protein marker; 1: whole fraction of recombinants with pcold-tf-chapn; 2 3: the supernatant of sonicated recombinants with pcold-tf-chapn; 4: control; 5: the supernatant of sonicated recombinants with pcolf-tf. 图 1 鸡氨肽酶 N 重组质粒的鉴定 Fig. 1 Identification of the recombinant chicken aminopeptidase N plasmid. M: DNA marker; 1: identification of the recombinant chapn plasmid by PCR; 2: pmd18-t-chapn digested with EcoR I; 3: pmd18-t-chapn digested with EcoR I and Sal I. 图 4 表达产物的可溶性分析 Fig. 4 Solubility analysis of the expressed product. M: protein molecular weight marker; 1 2: sediment of sonicated recombinants with pcold-tf-chapn; 3 4: supernatant of sonicated recombinants with pcold-tf-chapn. 图 2 pcold-tf-chapn 表达载体的构建与鉴定 Fig. 2 Construction and identification of the recombinant pcold-tf-chapn. M: DNA marker; 1: PCR identification of pcold-tf-chapn; 2: pcold-tf-chapn digested with EcoR I; 3: pcold-tf-chapn digested with EcoR I and Sal I. 图 5 SDS-PAGE 分析 Ni-NTA 亲和层析纯化的鸡氨肽酶 N Fig. 5 SDS-PAGE analysis of purified recombinant chapn. M: protein marker; 1: the purified recombinant chapn.
474 ISSN1000-3061 CN11-1998/Q Chin J Biotech April 25, 2010 Vol.26 No.4 chapn 蛋白浓度为 4.8 mg/ml Western blotting 分析鉴定, 显示获得良好带 His 标签目的蛋白, 表明获得高表达量的目的蛋白 ( 图 6) 2.5 不同诱导条件下目的蛋白的表达量分析 SDS-PAGE 电泳分析不同诱导条件下目的蛋白的表达量, 通过 Bandscan 软件分析目的蛋白表达相对量, 结果显示 :pcold-tf-chapn BL21(DE3) 在 SOC 培养基中,IPTG 终浓度为 0.1 mmol/l, 诱导表达时间为 24 h 时目的蛋白产量最高 ( 图 7 8) 2.6 蛋白酶活性的测定氨肽酶 N 可特异性作用于 Leu-PNA 底物, 释放出黄色的对硝基苯胺, 在 410 nm 下有最大吸光度 结果显示, 随着表达蛋白浓度梯度性的变化,OD 410 也呈现梯度性变化 ( 图 9), 结果表明, 表达蛋白具有酶活性 2.7 ELISA 检测结果用不同浓度的 chapn 包被酶标板, 同时设立阴 图 8 不同 IPTG 浓度目的蛋白表达相对量 Fig. 8 The relative yield of recombinant chapn in different concentrations of IPTG. 图 6 Western blotting 鉴定鸡氨肽酶 N Fig. 6 Western blotting analysis of recombinant chapn. 1: the purified recombinant chapn reacted with anti-his mab; M: protein marker. 图 9 不同稀释度的鸡氨肽酶 N 酶活性测定结果 Fig. 9 Enzymatic activity of the expressed chapn at different dilution rates. 性对照与空白对照, 结果表明, 表达目的蛋白与 IBV 具有较好的结合能力,P/N 值均大于 3, 证明了 chapn 作为 IBV 受体的可能性 方阵滴定显示, 最佳纯化目的蛋白稀释浓度为 1 640, 最佳病毒稀释浓度为 1 1600 3 讨论 图 7 不同诱导时间目的蛋白表达相对量 Fig. 7 Relative yield of the recombinant chapn in different stages. 鸡氨肽酶 N 是一种 Ⅱ 型金属蛋白酶,Ichishima 等从鸡卵黄中分离到, 并将其命名为氨肽酶 Ey [12] Sihn 等研究证明 chapn 在鸡胚胚胎发育过程中发挥着重要作用 [10], 目前研究表明,chAPN 可介导鸡传染性支气管炎病毒 (IBV) 感染非易感细胞, 可能作为 IBV 的功能性受体 [13] ; 本研究从鸡胚肾组织中克隆到表达 chapn 的全长大小约 2906 bp 的目的基因, 经 PCR 及酶切鉴定阳性后测序结果与公布序列符合
尹鑫等 : 鸡氨肽酶 N 的高效可溶性表达及生物学功能分析 475 率达 99.48%, 为深入研究 chapn 的生物学功能创造了条件 明晓波及陈汉阳利用 pet-28a pet-32a 原核表达载体表达了 chapn, 但是表达的融合蛋白主要以包涵体形式存在, 需对包涵体成分进行繁琐的变性复性处理, 而且活性蛋白回收率低 [13-14] 本研究选用 pcold-tf 低温调控原核表达载体进行表达, 由于 pcold-tf 带有可溶标签 TF (Trigger factor), 能促使融合蛋白最大限度地以可溶形式存在, 同时该原核表达载体带有冷休克蛋白 A (Cold shock protein A), 能使重组菌在 15 条件下低温诱导表达, 在该条件下, 非目的蛋白表达受到抑制, 而融合蛋白的表达量 纯度 活性得到相应的提高 本研究通过摸索优化诱导表达条件, 如 IPTG 浓度 诱导时间 培养基等, 提高了目的蛋白的表达量 Leu-PNA 酶促反应结果显示, 该表达蛋白具有酶活性, 呈现剂量依赖性, 但 chapn 的性质 ( 最适温度 最适 ph 值 最适底物浓度 金属离子等 ) 对酶活性的影响有待进一步研究 Miguel 等认为猫氨肽酶 N 可能作为 IBV 的受体 [15], 但 Victor 等否定了前者的结论 [16] 目前研究显示,chAPN 可作为 IBV 的功能性受体, 为了进一步验证 chapn 作为 IBV 功能性受体的可能性, 本研究通过体外结合试验检测 chapn 与 IBV 结合能力, 通过优化反应条件, 显示 chapn 能够特异性结合 IBV, 且存在剂量依赖性, [14] 这与陈汉阳的结果相一致, 进一步表明 chapn 是 IBV 功能性受体之一 chapn 及其抗体的抗病毒活性,chAPN 是否可作为其他冠状病毒的功能性受体, 其是否与不同血清型的 IBV 的组织嗜性存在一定的关系, 将有待进一步研究 本研究选用 pcold-tf 原核表达载体高效表达了 chapn, 对该诱导表达条件进行了摸索 ; 对表达蛋白的酶活性 生物学功能进行了探讨, 为进一步研究 chapn 的生物学功能奠定了基础 REFERENCES [1] Albiston AL. Membrane bound members of the M1 family: more than aminopeptidases. Protein Pept Lett, 2004, 11: 491 500. [2] Jeffery CJ. Moonlighting proteins: old proteins learning new tricks. Trends Genet, 2003, 19: 415 417. [3] Fukasawa K, Hideji F, Yurka S, et al. Aminopeptidase N (APN/CD13) is selectively expressed in vascular endothelial cells and plays multiple roles in angiogenesis. Cancer Lett, 2006, 243: 135 143. [4] Paul SM. The molecular biology of coronavirues. Adv Virus Res, 2006, 66: 193 292. [5] Delmas B, Gelfi J, Haridon R, et al. Aminopeptidase N is a major receptor for the entero-pathogenic coronavirus TGEV. Nature, 1992, 357: 417 420. [6] Hegyi A, Kolb AF. Characterization of determinants involved in the feline infectious peritonitis virus receptor function of feline aminopeptidase N. Gen Virol, 1998, 79: 1387 1391. [7] Tresnan DB, Levis R, Holmes KV. Feline aminopeptidase N serves as a receptor for feline, canine, porcine, and human coronaviruses in serogroup I. Virol, 1996, 70: 8669 8674. [8] Nomura, R. Human coronavirus 229E binds to CD13 in rafts and enters the cell through caveolae. Virol, 2004, 78: 8701 8708. [9] Zeng XW. Analysis on the diversity of tissue tropism of IBV strains and studies on IBV induces apoptosis. Harbin: Northeast Agricultural University, 2006: 79 81. 曾祥伟. IBV 组织嗜性差异分析及其诱导细胞凋亡的研究. 哈尔滨 : 东北农业大学, 2006: 79 81. [10] Sihn G, Savary K, Michaud A, et al. Aminopeptidase N during the ontogeny of the chick. Differentiation, 2006, 74: 119 128. [11] Blackmon DL, Watson AJ, Montrose MH. Assay of apical membrane enzymes based on fluorogenic substrates. Anal Biochem, 1992, 200: 352 358. [12] Ichishima E, Yamagata Y, Chiba H, et al. Soluble and bound forms of aminopeptidase from hen s egg yolk. Agric Biol Chem, 1989, 53: 1867 1872. [13] Ming XB. Tissue quantitation and expression of chicken APN and its potentiality as IBV receptor evaluation. Harbin: Northeast Agricultural University, 2009: 30 35. 明晓波. 鸡 APN 组织定量 表达及其作为 IBV 受体可能性评价. 哈尔滨 : 东北农业大学, 2009: 30 35. [14] Chen HY. Study on infection HeLa cells by infectious bronchitis virus and identification of viral natural receptor. Wuhan: Huazhong Agricultural University, 2007: 95 99. 陈汉阳. 鸡传染性支气管炎病毒感染 HeLa 细胞的研究及其天然受体的鉴定. 武汉 : 华中农业大学, 2007: 95 99. [15] Miguel B, Pharr GT, Wang C, et al. The role of feline aminopeptidase N as a receptor for infectious bronchitis virus. Arch Virol, 2002, 147: 2047 2056. [16] Victor C, Lisa J, Jed M, et al. Feline aminopeptidase N is not a functional receptor for avian infectious bronchitis virus. J Virol, 2007, 4: 113 128.