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1 230 ~235 研究论文 Articles 2017 年 第 7 卷 第 3 期 Current Biotechnology ISSN 2095 2341 生物技术进展 秀丽隐杆线虫免疫衰老指标的建立 白志慧 ꎬ 王 彦 ꎬ 张日丽ꎬ 许维恒ꎬ 张俊平 中国人民解放军第二军医大学药学院ꎬ 上海 200433 摘 要: 秀丽隐杆线虫是研究衰老的重要模式生物ꎬ但目前对其免疫衰老的研究缺乏评价指标ꎮ 建立了秀丽隐杆线虫 铜绿假单胞菌感染模型ꎬ考察了线虫抗感染免疫能力与衰老之间的关系ꎬ建立了线虫免疫衰老的评价指标ꎮ 首先用铜绿 假单胞菌感染线虫建立模型ꎬ将处于不同衰老程度的线虫用于感染实验ꎬ考察了线虫感染后的生存时间与衰老程度的关 系ꎻ将感染后的生存时间作为抗感染免疫衰老的指标ꎬ其结果与线虫抗氧化能力和寿命指标的结果相互印证ꎮ 结果显 示ꎬ7 d 14 d 21 d 龄的线虫感染后的生存时间依次减少ꎬ与抗氧化能力的衰退情况相符ꎻ与野生型相比ꎬ长寿线虫( daf 2 突变线虫) 感染后的生存时间延长ꎬ短寿线虫( daf 16 突变线虫) 感染后的生存时间缩短ꎬ线虫的抗感染免疫指标与寿命 指标结果相符ꎻ能延长线虫寿命的化合物酪氨酸也延长了线虫感染后的生存时间ꎮ 因此线虫 铜绿假单胞菌感染模型可 以用于评价线虫的免疫衰老ꎬ感染后线虫的生存时间可作为免疫衰老的评价指标ꎮ 关键词: 秀丽隐杆线虫ꎻ铜绿假单胞菌ꎻ抗感染ꎻ免疫衰老 DOI:10.19586 / j.2095 2341.2016.0154 Establishment of Immune Aging Index of Caenorhabditis elegans BAI Zhihui ꎬ WANG Yan ꎬ ZHANG Riliꎬ XU Weihengꎬ ZHANG Junping School of Pharmacyꎬ Second Military Medical Universityꎬ Shanghai 200433ꎬ China Abstract:Caenorhabditis elegans is an important model organism to study aging. Howeverꎬ it lacks an index of immuno aging. In this studyꎬ through establishing C. elegans Pseudomonas aeruginosa infection modelꎬ the relationship between anti infective immune ability and aging of C. elegans was studiedꎬ and an index of C. elegans immuno aging was established. Firstlyꎬ infection model was established using P. aeruginosa to infect C. elegans. C. elegans in different degrees of aging were used in the infection model to investigate the relationship between survival time and degree of aging. The survival time after infection was used as an anti infective immuno aging index. The data of immuno aging index was compared with the data of antioxidant capacity and the lifespan. The results indicated that with the aging of C. elegans (7 dꎬ 14 d and 21 d old) ꎬ the survival time of infected C. elegans decreased sequentiallyꎬ which was consistent with the decline of their antioxidant capacity. Compared with wildtypeꎬ daf 2 mutation C. elegans with long lifespan exhibited longer survival time after infectionꎬ while daf 16 mutation C. elegans with short lifespan exhibited shorter survival time with infection. The results of anti infective immuno aging index were in accordance with the data of lifespan index. Tyrosineꎬ a compound with anti aging activityꎬ prolonged the survival time of C. elegans after infection. Collectivelyꎬ C. elegans P. aeruginosa infection model can be used to evaluate the immuno aging of C. elegans. The survival time of C. elegans after infection can be used as an index to indicate immuno aging of C. elegans. Key words:caenorhabditis elegansꎻ Pseudomonas aeruginosaꎻ anti infectionꎻ immuno aging 秀丽隐杆线虫( Caenorhabditis elegansꎬ简称线 虫) 是衰老研究中重要的模式生物ꎮ 线虫成虫体 长约为 1 mmꎬ实验室培养以大肠杆菌 Escherichia coli OP50 为 食ꎬ 20 下 的 线 虫 寿 命 为 三 周 左 右 [1] ꎮ 由于线虫用于寿命研究所需要的时间相 对其他物种短ꎬ基因干扰技术简单ꎬ与人类有相似 收稿日期:2016 11 30ꎻ 接受日期:2016 12 29 基金项目:上海市浦江人才计划项目(14PJD001) 资助ꎮ 作者简介: 白志慧与王 彦为本文共同第一作者ꎮ 白志慧ꎬ硕士研究生ꎬ研究方向为分子免疫药理ꎮ E mail: bzh cat 126.comꎮ 王 彦ꎬ副教授ꎬ研究方向为抗感染药物药理ꎮ E mail:wangyansmmu 126.comꎮ 通信作者:张俊平ꎬ教授ꎬ研究方向为分子免 疫药理ꎮ E mail:jpzhang08 163.com

2 白志慧 ꎬ 等 : 秀丽隐杆线虫免疫衰老指标的建立 231 的衰老进程 ꎬ 组织器官的变化可以在显微镜下观察等优势 ꎬ 被广泛应用于衰老相关研究 ꎬ 例如有研究报道二甲双胍和酪氨酸对线虫具有抗衰老作用 [2] ꎮ 评价线虫衰老的指标有很多 ꎬ 包括寿命 抗氧化能力 吞咽次数 运动能力和生殖能力等 [3] ꎮ 寿命这一指标可以整体评价机体的衰老进程 ꎬ 但实验周期长 [2] ꎻ 寿命之外的观察指标可以从一个侧面来反映衰老的进程 [4] ꎬ 因此大多需要多个指标同时观察监测 ꎬ 从而对衰老进程有一个全面客观的评价 ꎮ 近年来对免疫衰老的研究逐渐成为研究的热点 ꎮ 随着机体年龄的增加 ꎬ 免疫功能逐渐退化称为免疫衰老 [5] ꎮ 衰老和免疫功能的退化互为因果关系 ꎬ 抗衰老的同时免疫功能得以维护和保持 ꎬ 而提高免疫功能的同时又常常可以延缓衰老 [5] ꎮ 线虫具有天然免疫 [6] ꎬ 但是还没有成熟的指标来指示线虫的免疫衰老进程 ꎮ 我们通过查阅文献发现先前有研究利用线虫 - 铜绿假单胞菌感染模型考察致病菌感染能力或者筛选抗感染化合物 [7] ꎮ 在本研究中 ꎬ 我们改进了线虫 - 铜绿假单胞菌感染模型 ꎬ 改进后的模型可以反映线虫的免疫功能状态 ꎬ 从免疫功能角度对线虫衰老的程度给予评价 ꎬ 以期为免疫衰老评价体系的建立提供参考 ꎮ 1 材料和方法 1.1 材料 线虫株和菌株野生型线虫 Bristol N2 突变型线虫 daf 16(mu86)Ⅰ daf 2(e1370) Ⅲ 大肠杆菌 E. coli OP50 铜绿假单胞菌 P. aeruginosa PA14 均由美国哈佛大学的 Eleftherios Mylonakis 教授惠赠 ꎮ 试剂与仪器酪氨酸 5 氟尿苷 (5 Fluoro 2 deoxyuridineꎬfudr) 购自南京宝曼公司 ꎻ 百草枯购自阿拉丁公司 ꎻLB 肉汤培养基 胰蛋白胨 琼脂粉购自 BDꎬ 其他试剂均为国药生产 ꎮ 体视显微镜 (Nikon SMZ745)ꎻX 300BS Ⅲ 型恒温培养箱产自上海新苗医疗器械制造有限公司 ꎮ 1.2 方法 菌株培养挑单克隆 OP50 在 LB 液体培养基中培养过夜 ꎬ3 500 g 离心 10 minꎬ 浓缩 20 倍后均匀涂布在线虫培养板 (nematode growth medi umꎬngm) 中 ꎮ 挑 PA14 单克隆于 LB 培养基中 ꎬ 37 振荡培养 14 ~ 16 h 后 ( 不可超过 16 h)ꎬ 将菌 液涂布于 SK( slow killing) 板上 ꎬ 涂布后的 SK 板 在 37 静置培养 24 h 后置于 25 再静置培养 24 hꎮ 线虫一般培养及同期化所用方法参照 [8] Sutphin 等的方法 ꎬ 在 20 下培养 ꎬ 线虫生长在 涂有 OP50 的 NGM 培养板中 ꎮ 若培养板中食物 缺失 ꎬ 将线虫转移至新的 NGM 板中 ꎮ 待板中线 虫长至生殖期 ꎬ 将健康的有卵线虫成虫挑至新的 NGM 板中 ꎬ20 下线虫自然产卵 3 ~ 4 h 后将成虫 挑出 ꎬ 剩下的卵在 20 培养 ꎬ2 d 后 ꎬ 线虫长至 L4 期 ꎮ [9] 感染实验实验方法参考 Powell 等的 方法 ꎬ 将长至 L4 期的线虫转移至实验 NGM 板 中 ꎬ 每个 9 cm 平板中约 100 条线虫 ꎮ 实验 NGM 板中加了 49 μmol / L 的 FUDR 用以抑制线虫卵的 生长 ꎬ100 mg / L 氨苄青霉素用以防止其他杂菌污 染 ꎮ 在培养过程中 ꎬ2 d 观察一次线虫生长情况 ꎬ 一个星期内每 2 天转移一次线虫 ꎬ 一星期后每 7 d 转移一次线虫 ꎮ 待线虫长至 7 d 14 d 21 d 后随 机挑取健康线虫转移至涂有铜绿假单胞菌 PA14 的 SK 板中 ꎬ 每天记录线虫生存死亡数直至线虫 全部死亡 ꎬ 以 OP50 培养的线虫为健康对照 ꎮ 25 下培养 ꎬ 每组 3 块平行板 ꎬ 每板 30 条线虫 ꎮ 死亡标准 : 线虫无移动 ꎬ 且用铂金丝触碰线虫头部 和尾部 ꎬ 线虫无反应视为死亡 ꎮ 酪氨酸处理线虫感染实验 : 将长至 L4 期的线 虫转移至实验 NGM 板中 ꎬ 每个 9 cm 平板中约 100 条线虫 ꎮ 实验 NGM 板中加了 1 mol / L 的酪氨 酸 ꎬ49 μmol / L 的 FUDR 用以抑制线虫卵的生长 ꎬ 100 mg / L 氨苄青霉素用以防止其他杂菌污染 ꎮ 待线虫长至 14 dꎬ 随机挑取健康线虫转移至涂有 铜绿假单胞菌 PA14 的 SK 板中 ꎬ 每天记录线虫生 存死亡数直至线虫全部死亡 ꎮ 氧化应激实验实验方法参考 Zarse [10] 的 方法 ꎬ 待线虫长至 7 d 14 d 21 d 后随机挑取健康 线虫转移至含有 10 mmol / L 百草枯的 NGM 板中 ꎬ 每天记录线虫生存死亡数直至线虫全部死亡 ꎮ 在 20 下培养 ꎬ 每组 3 块平行板 ꎬ 每板 30 条线虫 ꎮ 其余方法同感染实验 ꎮ 统计学分析生存曲线采用 Kaplan Meier 分析法 ꎬLog rank ( Mantel Cox) Text 比较生存率 差异 ꎮ 定量资料以平均值 ± 标准差表示 ꎬP <0.05

3 232 生物技术进展 Current Biotechnology 表示有统计学差异ꎮ 文中数据统计及作图如无特 殊说明均由 SPSS 18.0 软件完成ꎮ 2 结果与分析 2.1 线虫 铜绿假单胞菌感染模型的建立 铜绿假单胞菌 PA14 感染线虫后线虫活动力 感染后平均生存时间为 111.93±5.13 hꎬ最长生存 时间为 196 hꎻ14 d 龄的线虫感染后的平均生存时 间为 62.32±2.70 hꎬ最长生存时间为 127 hꎻ21 d 龄的线虫感染后的平均生存时间为 45. 61 ± 3. 91 hꎬ最长生存时间为 115 hꎮ 表明线虫的抗感染能 力随衰老而减弱ꎮ 下降 死亡率升高ꎮ 7 d 龄的线虫喂食大肠杆菌 OP50 125 h 后线虫状态良好ꎬ 无死亡现象ꎮ 7 d 龄的线虫喂食铜绿假单胞菌 PA14 32 h 后出现死 亡现象ꎻ100 h 后线虫死亡率高于 50 ꎻ125 h 后 线虫死亡率为 70 ( P<0.000 1ꎬ图 1) ꎮ 线虫喂食 PA14 后活动能力明显下降ꎬ被 PA14 感染的线虫 死亡后身体逐渐透明( 图 1) ꎮ 图2 不同衰老程度的线虫抗细菌感染生存曲线 Fig.2 The survival curves of C. elegans in different aging conditions against bacterial infection. 2.3 线虫的抗感染免疫指标与抗氧化之间的 关系 利用百枯草处理使线虫处于氧化应激ꎬ随着 线虫的衰老ꎬ其抗氧化能力逐渐降低ꎬ百枯草导致 氧化刺激 后 的 生 存 曲 线 逐 渐 左 移 ( P < 0. 000 1ꎬ 图 3) ꎮ 7 d 龄的线虫氧化刺激后平均生存时间为 162.97±5.33 hꎬ最长生存时间为 255 hꎻ14 d 龄的 线虫氧化刺激后平均生存时间为 90.45 ± 4.94 hꎬ 最长生存时间为 220 hꎻ21 d 龄的线虫氧化刺激后 平均生存时间为 79.52 ± 4.34 hꎬ最长生存时间为 167 hꎮ 线虫的抗感染免疫指标与抗氧化指标的 结果相符ꎮ 图1 Fig.1 铜绿假单胞菌与大肠杆菌感染后线虫的 生存曲线( A) 和状态( B) The survival curve( A) and state( B) of C. elegans after infection by P. aeruginosa and E. coli. 注:图中箭头方向为感染死亡线虫ꎮ 2.2 线虫的抗感染能力与衰老之间的关系 在线虫培养到第 7 d 14 d 和 21 d 时ꎬ随着线 虫的衰老ꎬ其抗感染能力逐渐降低ꎬ感染后的生存 曲线逐渐左移( P<0.000 1ꎬ图 2) ꎮ 7 d 龄的线虫 图 3 不同衰老程度的线虫抗氧化生存曲线 Fig.3 The survival curves of C. elegans in different aging conditions against oxidative stress.

4 白志慧 ꎬ 等 : 秀丽隐杆线虫免疫衰老指标的建立 长寿线虫和短寿线虫的抗感染能力为了进一步证明该感染模型中线虫的生存时间可以作为线虫衰老的评价指标 ꎬ 利用寿命相关基因突变的线虫开展研究 ꎬ 考察评价指标与公认的寿命指标是否相符 ꎮ 实验中利用了 14 d 龄的线虫 ꎮ 14 d 龄的野生型线虫感染后的平均生存时间为 62.32±2.70 hꎬ 最长生存时间为 127 hꎻ14 d 龄的短寿线虫 daf 16 突变株感染平均生存时间为 30 62±1.29 h( P< ꎬ 图 4)ꎬ 最长生存时间为 67.5 hꎻ14 d 龄的长寿线虫 daf 2 突变株感染平均生存时间为 96.13±4.86 h(p< ꎬ 图 4)ꎬ 最长生存时间为 220 hꎮ 先前的研究显示 daf 16 基因突变导致线虫寿命缩短 [11] ꎬdaf 2 基因突变导致线虫寿命延长 [12] ꎬ 本研究结果显示 : 长寿的线虫抗感染能力比短寿的线虫更强 ꎬ 说明抗感染能力与寿命指标相符 ꎮ 图 4 不同线虫株抗铜绿假单胞菌感染生存曲线 Fig.4 The survival curves of different C. elegans strains against infection by P. aeruginosa. 2.5 抗衰老化合物酪氨酸能增强线虫的抗感染能力酪氨酸处理线虫 14 d 能提高线虫的抗感染能力 (P<0.05ꎬ 图 5)ꎮ 14 d 对照组线虫感染平均生存时间为 76.83±3.23 hꎬ 酪氨酸处理组平均生存时间 86.33±3.50 hꎬ 增加了 12.36%ꎬ 最长生存时间从 112 h 增加到 136 hꎬ 这说明 ꎬ 能够延长线虫寿命的酪氨酸也可以增强线虫抗感染能力 ꎮ 3 讨论衰老常伴随着各种疾病的发生 ꎬ 例如糖尿病 心血管疾病和神经系统疾病等 [13] ꎬ 因此 ꎬ 抗衰老研究是一个历久弥新的领域 ꎮ 秀丽隐杆线虫是抗 图 5 酪氨酸处理 14 d 的线虫抗铜绿假单胞菌 Fig.5 感染生存曲线 The survival curves of C. elegans against infection by P. aeruginosa for 14 days. 衰老研究中重要的模式生物 ꎬ 检测其衰老的指标 有很多 ꎬ 其中自然寿命是衰老研究的首选指标 ꎬ 但 其实验周期长 ꎮ 其他衰老指标包括吞咽 生殖 体 [3ꎬ11ꎬ14] 长等不能完全反应衰老的状况 ꎬ 如二甲双 胍是第一个即将用于临床试验的抗衰老药物 ꎬ 但 其对线虫吞咽功能没有影响 [4] ꎻ 姜黄素有延长线 虫寿命的作用 ꎬ 但处理 4 d 和 8 d 后的线虫吞咽能 力却有下降趋势 ꎬ 产卵率没有变化 [15] ꎻ 酪氨酸也 有延长线虫寿命的作用 ꎬ 但该化合物对线虫体长 没有影响 [16] ꎮ 衰老的生化指标一般利用抗衰老 基因的表达情况 蛋白 DAF 16 核质转运情况 等 [17ꎬ18] ꎬ 但衰老是多基因参与的过程 ꎬ 少数几个 基因不能全面客观地评价线虫的衰老情况 ꎮ 近年 来 ꎬ 衰老的免疫学说逐渐受到重视 ꎬ 从无脊椎动物 到哺乳动物 ꎬ 机体的免疫功能至关重要 ꎬ 且与衰老 过程互为因果 [5] ꎬ 因此 ꎬ 通过免疫力来延缓衰老 也已成为研究的热点 ꎮ 然而 ꎬ 从线虫免疫角度来 评价衰老的研究报道很少 ꎮ 为了全面客观地反映 线虫的衰老状态 ꎬ 免疫功能的检测必不可少 ꎬ 因此 本研究建立了线虫抗感染免疫衰老的指标 ꎮ 本研究利用改进后的线虫 - 铜绿假单胞菌感 染模型反映线虫的免疫功能状态 ꎬ 为衰老研究提 供了新的考察指标 ꎮ 在本研究开展之前 ꎬ 线虫 - 铜绿假单胞菌感染模型主要用于抗感染药物的筛 选 ꎬ 研究者一般感染 L4 期或成虫期的线虫 24 ~ 48 hꎬ 再将感染的线虫转移至含有化合物的板中 ꎬ 通 过比较线虫的生存时间筛选或者评价抗感染化合 物 [19] ꎬ 但未能与抗衰老研究相关联 ꎮ 本研究改进 了原有的感染模型 ꎬ 将线虫在含有化合物的培养

5 234 生物技术进展 Current Biotechnology 板中培养几天或者十几天后 ꎬ 得到了一定衰老程度的线虫 ꎬ 再让这些线虫感染铜绿假单胞菌 ꎬ 观察线虫对铜绿假单胞菌的易感性 ꎬ 利用线虫感染后的生存时间反映线虫的免疫衰老的情况 ꎬ 线虫在感染后的生存时间越短说明免疫衰老越严重 ꎮ 本研究改进了感染模型 ꎬ 将该模型用于免疫衰老研究 ꎬ 为考察线虫的免疫衰老提供了可靠的评价指标 ꎬ 该抗感染指标可以用于研究衰老相关基因 ꎬ 也可以用于筛选抗衰老化合物 ꎬ 而且实验周期短 可靠性强 ꎮ 抗氧化能力这一指标的设立是基于衰老的自由基学说 ꎮ 自由基学说认为机体的衰老是由于细胞正常代谢过程中产生的自由基不断积累造成的 ꎬ 随着年龄的增加以及外界环境的刺激 ꎬ 自由基不断积累引起 DNA 损伤 蛋白质核酸等大分子交联 损害生物膜 ꎬ 影响机体正常功能 ꎬ 因此提高机体抗氧化和清除自由基能力是抗衰老的重点 [20] ꎮ 在线虫研究中有抗衰老作用的化合物一般能提高线虫的抗氧化能力 [21ꎬ22] ꎮ 因此本研究以抗氧化能力作为衰老指标的阳性对照 ꎬ 通过研究发现 ꎬ 线虫的抗感染能力与抗氧化能力相符 ꎬ7 d 14 d 21 d 龄的线虫抗氧化能力逐渐降低 ꎬ 其抗感染能力也同样逐渐降低 ꎬ 进一步说明本研究模型用于评价衰老具有可靠性 ꎮ 在线虫衰老的研究中 ꎬ 寿命是衰老的重要指标 [23] ꎮ 胰岛素 / 胰岛素样生长因子 1 ( Insulin / IGF 1) 信号通路是第一个被发现的与衰老相关的信号通路 [24] ꎮ DAF 2 是线虫体内唯一的胰岛素样生长因子受体 ꎬ 在调控线虫衰老方面有重要作用 ꎮ DAF 2 与配体结合后 ꎬ 激活 Insulin / IGF 1 信号通路下游的 AGE 1 PDK 1ꎬ 最终激活的 AKT 1/ 2 SGK 1 使转录因子 DAF 16 / FOXO 磷酸化 ꎬ 阻止其入核发挥作用 ꎮ 而 DAF 16 / FOXO 作为转录因子可以调控下游抗性基因 ꎬ 其正向作用于寿命性状 [25] ꎮ 因此 ꎬdaf 2 基因突变会延长线虫的寿命 ꎬ 延缓衰老 ꎬ 而 daf 16 基因突变会缩短线虫寿命 ꎬ 加速衰老 ꎮ 本研究分别利用了 daf 2 daf 16 突变线虫 ꎬ 实验结果表明应用抗感染能力这一评价指标和应用寿命这一公认指标相比可以得出同样的研究结论 ꎬ 这进一步证明抗感染能力可用于线虫衰老的评价 ꎮ 有文献报道酪氨酸能延长线虫寿命 提高抗氧化力 ꎬ 具有抗衰老作用 [16] ꎮ 本研究以文献报道 的酪氨酸浓度处理野生型线虫 14 dꎬ 结果表明酪氨酸能提高线虫的抗感染能力 ꎬ 说明抗感染能力这一指标可以用于评价抗衰老化合物 ꎮ 总之 ꎬ 线虫 - 铜绿假单胞菌感染模型在衰老研究中具有应用价值 ꎬ 可用于评价抗衰老化合物和抗衰老基因 ꎮ 本研究提出了免疫衰老这一评价指标 ꎬ 利用感染后线虫的生存时间作为免疫衰老的评价指标 ꎬ 可以与其他指标取长补短 ꎬ 有助于更全面客观地开展衰老相关研究 ꎮ 参考文献 [1] Stiernagle T. Maintenance of C. elegans [ EB / OL]. http: / / / chapters / www_strainmain tain / strainmain tain.htmlꎬ [2] Lees Hꎬ Walters Hꎬ Cox L S. Animal and human models to un derstand ageing [ J]. Maturitasꎬ 2016ꎬ 93: [3] Keith S Aꎬ Amrit F Rꎬ Ratnappan Rꎬ et al.. The C. elegans healthspan and stress resistance assaytoolkit [ J ]. Methodsꎬ 2014ꎬ 68(3): [4] Onken Bꎬ Driscoll M. Metformin induces a dietary restriction like state and the oxidative stress response to extend C. elegans Healthspan via AMPKꎬ LKB1ꎬ and SKN 1 [ J]. PLoS ONEꎬ 2010ꎬ 5(1): e8758. [5] Drela N. Immunological theory of senescence [ J]. Postepy. Biochem.ꎬ 2014ꎬ 60(2): [6] Ermolaeva M Aꎬ Schumacher B. Insights from the worm: The C. elegans model for innate immunity [ J]. Semin. Immunol.ꎬ 2014ꎬ 26(4): [7] Papp Dꎬ Csermely Pꎬ Söti C. A role for SKN 1 / Nrf in pathogen resistance and immunosenescence in Caenorhabditis elegans [J]. PLoS Pathog.ꎬ 2012ꎬ 8(4): e [8] Sutphin G Lꎬ Kaeberlein M. Measuring Caenorhabditis elegans life span on solid media [J]. J. Vis. Exp.ꎬ 2009(27): [ 9] Powell J Rꎬ Ausubel F M. Models of Caenorhabditis elegans in fection by bacterial and fungal pathogens [ J]. Methods Mol. Biol.ꎬ 2008ꎬ 415: [10] Zarse Kꎬ Jabin Sꎬ Ristow M. L theanine extends lifespan of a dult Caenorhabditis elegans [J]. Eur. J. Nutr.ꎬ 2012ꎬ 51(6): [11] Collins J Jꎬ Huang Cꎬ Hughes Sꎬ et al.. The measurement and analysis of age related changes in Caenorhabditis elegas [ EB / OL]. http: / / / chapters / www_measuremen tanalysiscelegans / measurementanalysiscelegans. htmlꎬ [12] Kenyon Cꎬ Chang Jꎬ Gensch Eꎬ et al.. A C. elegans mutant that lives twice as long as wild type [ J]. Natureꎬ 1993ꎬ 366 (6454): [13] D Antona G Ragni Mꎬ Cardile Aꎬ et al.. Branched chain amino acid supplementation promotes survival and supports car diac and skeletal muscle mitochondrial biogenesis in middle aged mice [J]. Cell Metab.ꎬ 2010ꎬ 12(4): [14] Huang Cꎬ Xiong Cꎬ Kornfeld K. Measurements of age related

6 白志慧 ꎬ 等 : 秀丽隐杆线虫免疫衰老指标的建立 235 changes of physiological processes that predict lifespan of Cae norhabditis elegans [ J]. Proc. Natl. Acad. Sci. USAꎬ 2004ꎬ 101(21): [15] Liao V Hꎬ Yu C Wꎬ Chu Y Jꎬ et al.. Curcumin mediated lifes pan extension in Caenorhabditis elegans [ J]. Mech. Ageing. Dev.ꎬ 2011ꎬ 132(10): [16] Cañuelo Aꎬ Gilbert López Bꎬ Pacheco Liñán Pꎬ et al.. Tyrosolꎬ a main phenol present in extra virgin olive oilꎬ increa ses lifespan and stress resistance in Caenorhabditis elegans [ J]. Mech. Ageing Dev.ꎬ 2012ꎬ 133(8): [17] Zhang Jꎬ Lu Lꎬ Zhou L. Oleanolic acid activates daf 16 to in crease lifespan in Caenorhabditis elegans [ J]. Biochem. Bio phys. Res. Commun.ꎬ 2015ꎬ 468(4): [18] Zhang Lꎬ Zhang Jꎬ Zhao Bꎬ et al.. Quinic acid could be a po tential rejuvenating natural compound by improving survival of Caenorhabditis elegans under deleterious conditions [ J]. Reju ven. Res.ꎬ 2012ꎬ 15(6): [19] Conery A Lꎬ Larkins Ford Jꎬ Ausubel F Mꎬ et al.. High throughput screening for novel anti infectives using a C. elegans pathogenesis model [ J]. Curr. Protoc. Chem. Biol.ꎬ 2014ꎬ 6 (1): [20] Harman D. The free radical theory of aging [ J ]. Antioxid Redox Signalꎬ 2003ꎬ 5(5): [21] Ma Hꎬ Ma Yꎬ Zhang Zꎬ et al.. L arginine enhances resistance against oxidative stress and heat stress in Caenorhabditis elegans [ J ]. Int. J. Environ. Res. Public Healthꎬ 2016ꎬ 13 (10): e969. [22] Chen Wꎬ Sudji I Rꎬ Wang Eꎬ et al.. Ameliorative effect of as palathin from rooibos ( Aspalathuslinearis) on acute oxidative stress in Caenorhabditis elegans [ J]. Phytomedicineꎬ 2013ꎬ 20 (3-4): [23] Collins J Jꎬ Evason Kꎬ Kornfeld K. Pharmacology of delayed aging and extended lifespan of Caenorhabditis elegans [ J]. Exp. Gerontol.ꎬ 2006ꎬ 41(10): [24] Sell C. Minireview: The complexities of IGF / Insulin signaling in aging: Why flies and worms are not humans [ J]. Mol. En docrinol.ꎬ 2015ꎬ 29(8): [25] Ruaud A Fꎬ Katic Iꎬ Bessereau J L. Insulin / Insulin like growth factor signaling controls non dauer developmental speed in the nematode Caenorhabditis elegans [ J]. Geneticsꎬ 2011ꎬ 187(1):

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