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904 生物工程学报 Chinese Journal of Biotechnology http://journals.im.ac.cn/cjbcn 动物及兽医生物技术 李福伟等 / 三个地方鸡种 MHC B-L BII 基因遗传变异与免疫性状的关联分析 July 25, 2013, 29(7): 904 913 2013 Chin J Biotech, All rights reserved 三个地方鸡种 MHC B-L BII 基因遗传变异与免疫性状的关联分析 李福伟 1,2*, 李淑青 3*, 逯岩 1,2, 雷秋霞 1,2, 韩海霞 1,2, 周艳 1,2, 武彬 1,2, 曹顶国 1,2 1 山东省农业科学院家禽研究所, 山东济南 250023 2 山东省家禽育种工程技术研究中心, 山东济南 250023 3 山东省农业管理干部学院, 山东济南 250100 李福伟, 李淑青, 逯岩, 等. 三个地方鸡种 MHC B-L BII 基因遗传变异与免疫性状的关联分析. 生物工程学报, 2013, 29(7): 904 913. Li FW, Li SQ, Lu Y, et al. Relations among immune traits and MHC B-LBII gene in three local chicken breeds. Chin J Biotech, 2013, 29(7): 904 913. 摘 要 : 旨在研究 3 个地方鸡品种 ( 汶上芦花鸡 莱芜黑鸡 济宁百日鸡 ) 主要组织相容性复合体 (Major Histocompatibility Complex,MHC) B-LB II 基因遗传变异与绵羊红细胞 (Sheep red blood cell,srbc) 禽流感 (Avian influenza,ai) 和新城疫 (Newcastle disease,nd) 抗体滴度等免疫性状的关系, 揭示不同品种间基因变异与免疫性状的相关性 以 300 只地方品种鸡为材料, 运用直接测序和聚合酶链式反应 - 单链构象多态性 (PCR-SSCP) 等技术检测 MHC B-L BII 基因的序列变异 在 3 个地方鸡品种中分别发现了 19~22 个核苷酸变异位点, 可导致其中 16~18 个氨基酸的变异 3 个地方鸡种 MHC B-L BII 基因中分别有 7~8 个 (Single nucleotide polymorphism,snp) 位点与部分免疫性状存在不同程度的显著相关性 变异位点 G97A 和 T138A 在 3 个品种中均存在, 与 SRBC ND AI 抗体滴度均显著相关 (P<0.05) 其中,G97A 突变在济宁百日鸡中与 ND 抗体滴度显著相关 (P<0.05), 在莱芜黑鸡中与 SRBC 抗体滴度显著相关 (P<0.05), 在汶上芦花鸡中与 H9 抗体滴度显著相关 (P<0.05); 变异位点 T138A 在汶上芦花鸡和济宁百日鸡中与 H9 抗体滴度显著相关 (P<0.05) 研究表明 3 个地方鸡种的 MHC B-LB II 基因遗传变异与免疫性状存在显著关联 关键词 : 主要组织相容性复合体,MHC B-L BII, 聚合酶链式反应 - 单链构象多态性, 免疫性状 Received: December 17, 2012; Accepted: March 28, 2013 Supported by: Natural Science Fundation of Shandong Province (No. ZR2009DM004), Major Agricultural Stock Breeding Project of Shandong Province (No. 2009LZ015), Science Technology and Development Program Project of Shandong Province (No. 2012GZX21027). Corresponding author: Dingguo Cao. Tel: +86-531-85965926; Fax: +86-531-85990924; E-mail: jqsyzs@163.com * These authors contributed equally to this study. 山东省自然科学基金 (No. ZR2009DM004), 山东省良种工程 (No. 2009LZ015), 山东省科技发展计划项目 (No. 2012GZX21027) 资助 网络出版时间 :2013-05-23 网络出版地址 :http://www.cnki.net/kcms/detail/11.1998.q.20130523.2019.001.html

李福伟等 / 三个地方鸡种 MHC B-L BII 基因遗传变异与免疫性状的关联分析 905 Relationships among immune traits and MHC B-LBII genetic variation in three chicken breeds Fuwei Li 1,2*, Shuqing Li 3*, Yan Lu 1,2, Qiuxia Lei 1,2, Haixia Han 1,2, Yan Zhou 1,2, Bin Wu 1,2, and Dingguo Cao 1,2 1 Institute of Poultry Science, Academy of Agricultural Sciences of Shandong Province, Jinan 250023, Shandong, China 2 Poultry Breeding Engineering Technology Center of Shandong Province, Jinan 250023, Shandong, China 3 Shandong Agricultural Administrators College, Jinan 250100, Shandong, China Abstract: We have assessed the relationships between immune trait (antibody titers of Sheep red blood cell, SRBC; Avian influenza, AI; Newcastle disease, ND) and varieties of MHC B-LBII Gene in local chicken breeds (Wenshang Barred chicken, LH; Laiwu Black chicken, LWH; and Jining Bairi chicken, BR). We selected 300 chickens randomly from the three indigenous chicken populations. The variations of MHC B-L BII gene were detected by directly DNA sequencing and polymerase chain reaction-single strand conformation polymorphism (PCR-SSCP). The results indicated that there were about 19 22 nucleotide mutations in the three local breeds, which could affect 16 18 amino acid variations. Another results indicated that there was significantly relationship between seven to eight SNPs of the MHC B-LBII region and some immune traits (P<0.05 or P<0.01). Both locus G97A and locus T138A were found in the three species, which were significantly related to the antibodies of SRBC, ND and AI antibody titers (P<0.05). Among them, the locus G97A was significantly associated with ND antibody titers (P<0.05) in BR chicken, with SRBC antibody titers (P<0.05) in LWH chicken, and with H9 antibody titers (P<0.05) in LH chicken. Furthermore, locus T138A was significantly associated with H9 antibody titers in BR and LH chickens (P<0.05). All those results suggest relationships among the different varieties of MHC B-LBII and immune traits in the three local breeds. Keywords: major histocompatibility complex, MHC B-LBII, polymerase chain reaction-single strand conformation polymorphism (PCR-SSCP), immune traits 鸡主要组织相容性复合体 (Major histocompatibility complex,mhc) 是指 16 号染色体上的一组紧密连锁高度多态的基因座, 与免疫应答和抗病性密切相关 MHC B-L 抗原主要存在抗原递呈细胞的表面, 为免疫相关抗原, 参与免疫过程中 T 细胞 B 细胞和巨噬细胞之间的相互反应 地方品种具有优良的遗传特性, 其适应性 抗病性强等优良特点是进行资源保存以及培育新品种 ( 系 ) 良好素材 MHC 各基因成员的遗传多态性直接反映了其 DNA 遗传变异的程度, 也为研究其遗传进化规律和遗传多样性提供分 子依据 研究地方品种 MHC B-L BII 多态性与免疫性状的关系, 筛选与免疫性状显著相关的遗传变异位点, 为下一步抗病育种分子机制提供理论和技术支持, 也为开展标记辅助抗病育种工作奠定基础 鸡 MHC 又被命名为 B 复合体, 主要包括 3 个高度多态的基因座 :B-F B-L 和 B-G 基因, 分别编码细胞表面的 MHCⅠ 类 Ⅱ 类和 Ⅳ 类糖蛋白分子, 即高度多态的细胞表面抗原 [1] 鸡 MHCⅡ 类分子编码基因包括 A 和 B 两种基因, 分别编码 MHCⅡ 类抗原的 α 和 β 肽链, 其中 B cjb@im.ac.cn

906 ISSN 1000-3061 CN 11-1998/Q Chin J Biotech July 25, 2013 Vol.29 No.7 基因位于 MHC 区域 α 和 β 链均可分为 3 个部 分 :C 端的胞质区和跨膜区以及 N 端的胞外区 胞外区包括两个结构域, 即 α 链上为 α1 α2 结 构域,β 链上为 β1 β2 结构域 (α l α2 和 β l β2 均约为 90 个氨基酸残基 ), 与免疫球蛋白的结构 域相似 β1 变异性较高, 呈现出较丰富的多态性, 有利于机体结合不同的抗原肽 [2] 有报道鸡 MHC 基因的多态性与免疫性状特 别是鸡马立克氏病 (MD) 布氏杆菌 新城疫 (ND) 以及绵羊红细胞 (SRBC) 抗体 [3] 传染性 [4] 法氏囊病毒抗体之间存在相关性 Dalgeerd [5] 等研究发现, 鸡只感染 MDV 后, 在抗性与易 感基因型鸡淋巴细胞表面 MHCⅠ 类和 Ⅱ 类分子 表达有明显差异, 说明 MHC 基因型决定了免疫 反应性质及其强弱 越来越多研究结果揭示动物 MHC 基因型在抗病免疫中的作用 [6] [7] Liu 等研 究表明 MHC 介导的细胞免疫应答与鸡传染性支 气管病毒有关 鸡 MHC 基因结构研究方面,Chen [8] 等克隆了中国 3 个地方品种 MHC B-II (B-L) 基 因 cdna 序列, 发现 35 个等位基因, 多态性位 点主要集中在 B-Lβ 链的肽链结合区域,B-Lα 链 多态性较少 对病原抗原递呈影响也有诸多研究 Mona 等 [9] Goto 等 [10] [11] Ling 等研究指出 免疫功能较高的主要抗原肽的等位基因频率也 [12] 较高 Alcaide 等研究指出病原体多样性在 MHC 基因形成过程中起到主要作用 目前, 关于鸡 MHC 基因研究大都证明鸡 MHC 基因结构组成以及 MHC 基因组内具有丰富 的多态性 但是不同地方品种间 品种内的 SNP 位点变异与不同疾病 不同免疫性状的关系还鲜 有报道 本研究以山东地方家禽品种 ( 汶上芦花 鸡 济宁百日鸡 莱芜黑鸡 ) 为研究对象, 以 SRBC 抗体滴度 禽流感 AI 和 ND 抗体滴度等免疫功能性状为主要目标性状, 测定比较这些品种主要免疫性状在品种间和品种内的差异 ; 对不同品种的 MHC 基因 B-L BII 区域进行遗传学变异的分析, 寻找这些基因与免疫功能显著相关的突变位点, 探讨 B-LBII 基因突变位点与免疫性状的关系, 为不同品种的免疫差异性提供分析依据 1 材料与方法 1.1 试验动物及免疫程序山东地方鸡种汶上芦花鸡 (LH) 莱芜黑鸡 (LWH) 和济宁百日鸡 (BR), 均由山东省农业科学院家禽所原种鸡场提供, 在相同条件下饲养, 营养水平和免疫程序相同 整个试验期鸡群健康状况良好 按照当地疾病流行情况制定免疫程序, 免疫剂量按说明书进行 整个试验期免疫程序如下表 1 1.2 检测指标和方法 1.2.1 样品数量每品种随机选择 100 只 ( 公母各半 ) 采血, 所有样品均使用同一批试剂, 在相同条件下抗体测定和提取基因组 DNA 1.2.2 绵羊红细胞抗体滴度取新鲜绵羊血 ( 小尾寒羊, 由济南市畜牧局畜牧技术推广站提供 ), 玻璃珠抗凝, 阿氏液 1 1 保存, 磷酸盐缓冲液 (PBS,pH 7.4) 洗涤后, 用 0.9% 生理盐水配成 25% 的血细胞溶液 ( 注射使用 ) 和 2% 的红细胞悬浊液 ( 测抗体使用 ) 试验鸡 128 d 腿部肌肉注射 1 ml, 左右腿各 0.5 ml, 免疫后第 6 天采血取血清 http://journals.im.ac.cn/cjbcn

李福伟等 / 三个地方鸡种 MHC B-L BII 基因遗传变异与免疫性状的关联分析 907 表 1 试验鸡群免疫程序 Table 1 Experimental immunization program in chickens Age Type of immunization Remarks Immune route 1 st day Marek s disease vaccine Marek s disease cryophilic Subcutaneous injection vaccine 7 th day Newcastle disease and infectious bronchitis Emulsified inactivated vaccine Live freeze-dried vaccine Subcutaneous injection Eye-drop and nose-drop 14 th day Infectious bursal disease Live freeze-dried vaccine Drinking water 28 th day Newcastle disease (ND) virus oil adjuvant vaccine bronchitis virus vaccine Avian influenza H5 and H9(AI) Live freeze-dried vaccine Recombinant Emulsified inactivated vaccine Eye-drop and nose-drop Subcutaneous injection 64 th day Infectious bursal disease Live freeze-dried vaccine Drinking water 82 nd day Newcastle disease (ND) Emulsified inactivated vaccine 93 rd day Avian Influenza H5 and H9(AI) Emulsified recombinant in activated vaccine 132 nd day Newcastle disease (ND) and Infectious bronchitis (H120 strain) virus vaccine and egg drop syndrome Emulsified inactivated vaccine Intramuscular injection Intramuscular injection Intramuscular injection 用红细胞凝集法测定 SRBC 抗体滴度 待测血清 56 水浴灭活 30 min 后, 在微量血凝板的第一孔中加入 50 µl PBS 和 50 µl 血清, 血凝板 ( 加盖 ) 在培养箱中 37 温育 30 min, 结束后在血凝板剩余的每孔中加入 50 µl PBS, 用微量移液器逐孔倍比稀释样品 ( 最后一孔弃掉 ) 在所有的孔中加入 50 µl 2% SRBC 悬浊液,37 温育 30 min 后, 取出血凝板, 视红细胞凝集情况判断效价 [13] 1.2.3 AI 和 ND 抗体滴度的测定试验鸡于 134 d 进行翅静脉采血, 每只鸡采血 2 ml, 取血清分别按 高致病性禽流感诊断技术 (GB/T 18936-2003) [14] 和 新城疫诊断技术 (GB/T 16550-2008) [15] 的规定, 测定 AI 和 ND 的血凝抑制抗体效价 1.2.4 DNA 提取采用盐析法抽提 DNA [16] 1.3 引物设计和 PCR-SSCP 反应 1.3.1 引物设计利用 Primer 5.0 软件, 根据鸡 MHC B-L BII 基因序列 (GenBank Accession No. M29763, 为鸡 MHC B-L BII ß 基因全部 CDS 区域, 该基因片段长度为 2 405 bp) 设计引物, 引物序列如表 2 所示 表 2 文中所用的引物 Table 2 Primers used in this study Primer name Primer sequence (5 3 ) 5 -primer TTCTGCGGTGCGATATCCGAGTG 3 -primer CGGCGTTGCTGTTCCAG TATTCA cjb@im.ac.cn

908 ISSN 1000-3061 CN 11-1998/Q Chin J Biotech July 25, 2013 Vol.29 No.7 目的片段长度为 175 bp, 为 MHC B-L BII 基 因 exon2 的一部分 1.3.2 PCR-SSCP 应用 PCR-SSCP 技术对 3 个地方鸡品种的 300 个个体进行基因分型 PCR 反应总体积为 10 µl: 模板 (3 个地方品种鸡 DNA) 0.8 µl, 上 游引物 0.2 µl, 下游引物 0.2 µl,ddh 2 O 3.8 µl, 2 Taq PCR Master Mix 5 µl 反应程序 :94 预 变性 5 min;94 变性 30 s,60 退火 30 s,72 延伸 30 s,30 个循环 ; 最后 72 延伸 6 min PCR 结束后进行聚丙烯酰胺凝胶电泳 配制 10% 的聚丙烯酰胺凝胶 :10 TBE 9 ml,30% 聚 丙烯酰胺 31 ml,50% 甘油 9 ml,ddh 2 O 44 ml, 过硫酸铵 630 µl,temed 70 µl 电泳程序为 : 300 V 30 min;pcr 产物 98 变性 8 min, 加样 2.5 µl/ 孔 ;250 V 高压 30 min;4 条件下 120 V 恒压下电泳 16 h 后银染显色 每个品种每个基因 型送 3 个纯化样品在济南力戈科技有限公司进行 测序 1.4 数据处理和统计分析 数据处理和统计分析采用 SAS 6.0ANOVA 程序进行免疫性状与基因型的最小二乘分析 2 结果与分析 2.1 免疫指标测定结果三个地方鸡品种的 SRBC ND H5 H9 抗体滴度详见表 3 SRBC 免疫抗体滴度 ND 免疫抗体滴度 H5 免疫抗体滴度和 H9 抗体滴度均以莱芜黑鸡最高, 并且与其他 2 个品种间差异极显著 (P<0.01); 汶上芦花鸡 济宁百日鸡 ND 抗体滴度差异极显著 (P<0.01), 其他 3 种抗体滴度间差异不显著 (P>0.05) 2.2 核酸 氨基酸变异分析结果根据对 175 bp 的 PCR-SSCP 结果分型,3 个地方鸡品种共存在 16 种基因型, 其中汶上芦花鸡 济宁百日鸡和莱芜黑鸡分别存在 10 10 和 7 种基因型 将测序结果用 DNAStar 软件中的 SeqMan 程序与 GenBank 中 MHC B-L BII 基因 (Accession No. M29763) exon 2 的 DNA 序列进行比对, 结果表明被检鸡的 MHC B-L BII 基因 exon2 存在 28 个 SNP 位点, 可引起 23 个氨基酸的变化 其中 3 个品种共享 12 个位点 ( 表 4) 表 3 抗体滴度测定结果 Table 3 Antibody titers Antibody titer (log 2 ) Breed (n=100) SRBC ( x ±s) ND ( x ±s) H5 ( x ±s) H9 ( x ±s) LH chicken 6.94±0.15 B 10.27±0.18 A 5.58±0.24 B 5.32±0.23 B BR chicken 7.27±0.15 B 9.08±0.18 B 6.19±0.24 B 5.48±0.23 B LWH chicken 8.00±0.16 A 10.38±0.18 A 7.60±0.25 A 6.89±0.24 A Note: within a column, values followed by different letters (A or B) are significantly different (P<0.01). http://journals.im.ac.cn/cjbcn

李福伟等 / 三个地方鸡种 MHC B-L BII 基因遗传变异与免疫性状的关联分析 909 表 4 三个地方鸡种 MHC B-L BII 区基因 SNPs 以及所引起的氨基酸变异 Table 4 SNPs in MHC B-L BII and amino acid mutations in three indigenous chicken populations SNP location NT mutations Amino acid mutations Breed 57 G/A Val/Lys LH 58 T/A Val/Lys LH/BR 62 G/A Arg/- BR 64 A/T Tyr/Phe LH/BR/LWH 65 T/C Tyr/Phe LH/BR 66 C/T Leu/- LH/BR/LWH 67 T/C Leu/Pro LH 68 G/C Leu/Pro LH 69 C/G Gln/Glu/Asp LH/BR/LWH 71 A/C/G Gln/Glu/Asp LH/BR/LWH 75 T/C/A Tyr/Asn/Lys LH/BR/LWH 77 C/A/T Tyr/Leu/Lys LH/BR/LWH 78 A/T Ile/Phe LH/BR/LWH 97 T/A Phe/Tyr LH/BR 99 A/G Thr/Ala LH/BR 100 C/T Thr/Leu BR 112 G/A Ser/Asn BR/LWH 113 C/T Ser/Asn BR/LWH 127 T/A Phe/Thr BR/LWH 128 T/C Phe/Thr BR/LWH 134 C/T Ala/- LH/BR/LWH 138 T/A Ser/Thr LH/BR/LWH 141 C/G Pro/Ala LWH 154 C/G Pro/Arg LH/BR/LWH 155 G/T Pro/Arg LH/BR/LWH 157 A/C Gln/- BR/LWH 158 A/G Gln/- LH/BR/LWH 159 G/T Gly/Ser LWH Note: "-" indicates the same amino acid change; LH: Wenshang Barred chicken; BR: Jining Bairi chicken, LWH: Laiwu Black chicken. cjb@im.ac.cn

910 ISSN 1000-3061 CN 11-1998/Q Chin J Biotech July 25, 2013 Vol.29 No.7 2.3 三个地方鸡种 MHC B-L BII 基因不同 SNP 位点与免疫指标的相关性对 3 个地方鸡品种 MHC B-L BII 区基因 exon2 的 SNP 位点与免疫性状进行关联分析, 结果如表 5 所示 在 28 个 SNP 位点中, 与 SRBC 特异性抗体滴度显著相关的位点有 5 个位点 (P<0.05), 与 H5 抗体滴度有显著相关的位点有 5 个位点 (P<0.05), 与 H9 抗体滴度有显著相关的位点有 4 个 (P<0.05), 与 ND 抗体滴度显著相关的位点有 9 个 (P<0.05) 除 A99G T128C 外, 其余 7 个位点在 3 个品种中同时存在变异 位点 G97A T138A 位点在 3 个品种中均有变异, 并且位点 T97A 在济宁百日鸡中的变异与 ND 抗体滴度显著相关 (P<0.05), 在莱芜黑鸡中与 SRBC 抗体滴度显著相关 (P<0.05), 在汶上芦花鸡中与 H9 抗体滴度显著相关 (P<0.05); 位点 T138A 在汶上芦花鸡和济宁百日鸡中与 H9 抗体滴度显著相关 (P<0.05), 由丝氨酸突变为色氨酸 ; 这两个位点与绵羊红细胞抗体 新城疫 禽流感抗体滴度均显著相关 (P<0.05) 表 5 三个地方鸡种 MHC B-L BII 不同位点与免疫指标的相关性 Table 5 Relationships between different sites of MHC B-L BII and the immune traits in three breeds Immune traits breed ND antibody titers variation sites (P<0.05) H5 antibody titer variation sites (P<0.05) H9 antibody titer variation sites (P<0.05) SRBC antibody titer variation sites (P<0.05) LH A64T, C77A/T, T138A, G155T T97A, A99G, T138A G112A, T128C LWH A99G, T128C C77A/T, C134T, A158G T97A, T127A, C154G BR C69G, T97A, C154G, G155T C66T, T138A C134T, T138A 3 讨论 3.1 三个地方鸡品种间抗体滴度的比较分析 本研究结果表明 :3 个地方鸡品种免疫 6 d 后 SRBC 抗体滴度均值在 (6.94±0.15)~ [17] (8.00±0.16), 与吴春梅报道的北京油鸡和来航 蛋鸡 SRBC 免疫后 6 d 的抗体滴度的均值在 6.9~9.1 结果相近 3 个品种中莱芜黑鸡的 SRBC 抗体滴度最高, 其相应的 ND H5 和 H9 抗体滴度 也高, 并与另外两个品种差异极显著 (P<0.01) SRBC 是一种多价的非致病性抗原, 可以刺 [18] 激机体产生体液免疫应答 Siegel 等研究报道, SRBC 的抗体滴度的水平代表了机体产生抗体总 量的能力 由研究结果推断, 莱芜黑鸡在这 3 个 品种中机体产生总体抗体能力最强 Parmentier [19] 等证实,SRBC 抗体滴度高的家系对感染性疾 病的抗性优于抗体滴度低的家系, 本实验也证实 了这一点 本实验的 3 个地方品种在 SRBC H5 和 H9 3 个指标中抗体滴度高低为 LWH>BR>LH, 在 一定程度上说明 LWH 比 BR 和 LH 产生总体抗 体滴度的能力强 但是在 ND 抗体滴度指标中, 抗体滴度高低依次为 LWH>LH>BR, 仍然是 LWH 最高,BR 最低 导致 ND 抗体滴度与另外 3 个抗体滴度不一致的原因还需要进一步研究 但本研究从总体上能够说明 SRBC 抗体滴度的 高低代表了机体产生抗体能力的高低,SRBC 抗 http://journals.im.ac.cn/cjbcn

李福伟等 / 三个地方鸡种 MHC B-L BII 基因遗传变异与免疫性状的关联分析 911 体滴度高, 其他相应的指标也相对较高 同时该 研究结果也为 3 个地方品种的临床疫苗的使用提 供理论参考 3.2 三个地方鸡品种 MHC B-L BII 基因多态位点及其与免疫指标相关性的比较分析 三个地方品种鸡 MHC B-L BII 基因具有丰富 的多态性, 并且多态性更多的体现在氨基酸变异 上 本研究通过对 3 个山东地方鸡种 MHC B-L BII 基因的研究, 在 MHC B-L BII exon 2 上发现 了 28 个变异位点, 其中有 12 个变异位点为 3 个 品种所共有 在汶上芦花鸡 莱芜黑鸡和济宁百 日鸡中分别检测到 19 19 和 22 个变异位点,3 个地方品种核苷酸同源性 (89.14% 89.14% 和 87.42%) 高于氨基酸同源性 (62.7% 62.7% 和 58.1%) 本研究选取山东地方家禽品种资源为研 究对象, 一定程度上证明了 MHC B-L BII 基因在 不同地方品种资源间存在高度多态性 本研究结果与刘立波等 [20] 张泽樘等 [21] 顾 [22] 玉兰等研究地方品种 MHC B-L 基因的结果基 本一致, 都从不同品种中证实了 MHC B-L 高度 的遗传变异, 并且核苷酸同源性高于氨基酸的同 [20] 源性 刘立波等结果表明 : 在 9 个地方品种 (246 个样本 ) MHC B-L 基因 exon 2 的整个 exon 2 267 bp 核苷酸序列内, 共发现了 84 个突变, 突 变率为 0.3146, 充分显示出了 MHC B-L 基因丰 富的遗传多样性和较高的选择潜力 而张泽樘 [21] 等对 400 个麻羽鸡 DNA 样品 MHC B-L 基因外 显子 2 进行测序, 共筛查到 42 个 SNP 位点, 该 序列所编码的 90 个氨基酸残基中, 共发现有 27 个氨基酸残基发生改变, 核苷酸序列的同源性 (84.4%) 高于氨基酸序列的同源性 (70%) 顾玉 [22] 兰在 6 个地方品种发现 MHC B-LBⅡ 基因外 显子 2 核苷酸序列的同源性 (93.75%) 高于氨基 酸序列的同源性 (91.37%) 徐日福 [23] 李尚民 [24] 等的研究也有类似的结论 这些研究共同点大 都针对地方品种 MHC B-L BII 基因多态性, 并没 有进行多态性与免疫性状之间的关联分析 本研究进行了 3 个地方品种 MHC B-L BII 基 因多态性位点与 SRBC ND H5 和 H9 抗体滴 度的关联分析 结果表明地方品种 MHC B-L BII 基因多态性与测定的免疫性状存在不同程度的 相关性, 发现 14 个 SNPs 位点与 SRBC ND H5 和 H9 抗体滴度显著相关 (P<0.05) 通过研 究 4 个抗体指标抗体水平的高低, 结果发现一些 SNP 位点是相重合的, 并且和 ND 抗体应答相关 联的位点有 9 个 这就暗示了在以后的选择中, 4 个指标中只选择 ND 作为免疫指标就基本代表 了这 4 个指标相对较高 刘立波对 500 只白来航 蛋鸡为研究对象, 发现 37 个突变位点中, 与 IgG 含量 LPS 含量 AI ND 和 SRBC 抗体滴度显 著相关的 SNP 位点分别有 5 1 11 18 和 6 个, [25] 也获得同样的结论 翟飞等用微卫星方法对雪 山鸡 MHC B 区多态性以及血型与 IgM IgG 等 免疫指标进行关联分析, 得出 B2 血型综合抗性 指数好于其他血型 (P<0.05) 本研究通过 3 个地方品种的不同类型免疫滴 度等免疫性状的测定及与基因变异的关联分析, 表明不同免疫能力存在个体甚至品种水平上的 遗传差异, 不同免疫性状存在显著的优势基因 型, 这在一定程度上也更能说明选择免疫性状进 行遗传标记选择的可能性, 通过标记辅助选择提 高个体或者群体的抗病力是可行的 cjb@im.ac.cn

912 ISSN 1000-3061 CN 11-1998/Q Chin J Biotech July 25, 2013 Vol.29 No.7 REFERENCES [1] Kroemer G, Zoorob R, Auffray C. Structure and expression of a chicken MHC class I gene. Immunogneties, 1990, 31 (5/6): 405 409. [2] Brown JH, Jardetzky T, Saper MA, et al. A hypotheticial model of the foreign antigen-binding site of class Ⅱ histocompatibility molecules. Nature, 1988, 332(6167): 845 850. [3] Dunnington EA, Larsen CT, Gross WB, et al. Antibody responses to combinations of antigens in white Leghorn chickens of different background genomes and major histocompatibility complex genotypes. Poult Sci, 1992, 71(11): 1801 1806. [4] Ewald SJ, Ye X, Avendano S, et al. Associations of BF2 alleles with antibody titers and production traits in commercial pure line broiler chickens. Anim Genet, 2007, 38(2): 174 176. [5] Chen FF, Pan L, Geng ZX, et al. Origin evolvement and resistance mechanism of polymorphism of MHC molecules. Acta Vet Zootech Sin, 2010, 41(9): 1061 1067 (in Chinese). 陈芳芳, 潘玲, 耿照玉, 等. MHC 分子多态性的起源 演变与抗病机理. 畜牧兽医学报, 2010, 41(9): 1061 1067. [6] Dalgaard T, Boving MK, Handberg K, et al. MHC expression on spleen lymphocyte subsets in genetically resistant and susceptible chickens infected with Marek s disease virus. Viral Immunol, 2009, 22(5): 321 327. [7] Liu G, Wang Q, Tong T, et al. Construction and functional test of a chicken MHC-I (BF2*15)/peptide tetramer. Vet Immunol Immunopathol, 2008, 122(1/2): 1 7. [8] Chen F, Pan L, Chao W, et al. Character of chicken polymorphic major histocompatibility complex class II alleles of 3 Chinese local breeds. Poult Sci, 2012, 91: 1097 1104. [9] Goto RM, Wang Y, Taylor RL Jr, et al. BG1 has a major role in MHC-linked resistance to malignant lymphomain the chicken. Proc Natl Acad Sci USA, 2009, 106(39): 16740 16745. [10] Mona S, Crestanello B, Bankhead-Dronnet S, et al. Disentangling the effects of recombination, selection, and demography on the genetic variation at a major histocompatibility complex class II gene in the alpine chamois. Mol Ecol, 2008, 17(18): 4053 4067. [11] Ling F, Wei LQ, Wang T, et al. Characterization of the major histocompatibility complex class II DOB, DPB1, and DQB1 alleles in cynomolgus macaques of Vietnamese origin. Immunogenetics, 2011, 63(3):155 166. [12] Alcaide M, Lemus JA, Blanco G, et al. MHC diversity and differential exposure to pathogens in kestrels (Aves: Falconidae). Mol Ecol, 2010, 19(4): 691 705. [13] Hudson L, Hay FC. Haemagglutination in Practical Immunology. London: Blackwell Scientific, 1976: 125 130. [14] Tang XY, Li HY, Tian GB. GB/T 18936-2003. Diagnostic techniques for highly pathogenic avian influenza, 2003 (in Chinese). 唐秀英, 李海燕, 田国斌. GB/T 18936-2003. 高致病性禽流感诊断技术, 2003. [15] Lu HL,Wu YT, Wang ZL, et al. GB/T 16550-2008 Diagnostic techniques for newcastle disease, 2008 (in Chinese). 刘华雷, 吴艳涛, 王志亮, 等. GB/T 16550-2008 新城疫诊断技术, 2008. [16] Sambrook J, Fritsch EF, Maniatis T. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. 2nd ed. New York: Cold Spring Harbor Laboratory, 1989. [17] Wu CM. Study of molecular markers with immune traits of chickens of MHC B-F gene SNPs [D]. Yangzhou: Yangzhou University, 2007 (in Chinese). 吴春梅. 鸡 MHC B-F 区基因 SNPs 分子标记与免疫性状关系的研究 [D]. 扬州 : 扬州大学, 2007. [18] Siegel PB, Gross WB, Cherry JA. Correlated responses of chickens to selection for production of antibodies to sheep erythrocytes. Anim Blood Groups Biochem Genet, 1982, 13(4): 291 297. [19] Parmentier HK, Abuzeid SY, Reilingh GD, et al. http://journals.im.ac.cn/cjbcn

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