目 录 1. 简介... (2) 2. 实验条件与设备... (2) 2.1 实验室要求... (2) 2.2 仪器设备... (2) 2.3 常用工具与耗材... (2) 3. 实验动物... (3) 4. 实验试剂及配置... (3) 4.1 实验试剂... (3) 4.2 试剂配制... (3

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1 膜片钳技术系列手册 (6) 大鼠海马神经元原代培养方法 刘卫吴丽颖刘振伟编写 (2015 年 5 月 31 日 )

2 目 录 1. 简介... (2) 2. 实验条件与设备... (2) 2.1 实验室要求... (2) 2.2 仪器设备... (2) 2.3 常用工具与耗材... (2) 3. 实验动物... (3) 4. 实验试剂及配置... (3) 4.1 实验试剂... (3) 4.2 试剂配制... (3) 5. 实验操作... (4) 5.1 准备工作... (4) 5.2 剥离组织... (4) 5.3 消化和分散... (5) 5.4 细胞计数... (5) 5.5 存活率检测... (5) 5.6 细胞接种... (5) 5.7 更换培养液... (6) 6. 神经元形态观察... (6) 7. 免疫组化染色观察... (7) 8. 无血清培养... (7) 9. 注意事项... (8) 10. 膜片钳实验... (8) - 1 -

3 1. 简介 神经元培养是二十世纪七十年代发展起来的一种组织培养技术 最早培养的是外周交感节神经元, 后来中枢神经元的培养也获得成功 1977 年,Banker GA 和 Cowan WM(Rat hippocampal neurons in dispersed cell culture. Brain Res. 1977, 126: ) 首次报道了胚胎大鼠海马神经元的分散培养, 为研究 单个神经元的生理功能和药物作用的细胞分子机制提供了良好的标本 至今, 该技术已经成为众多生物 实验室的常规技术 神经元培养技术的基本原理是, 应用蛋白酶对需要培养的脑组织区域进行消化分散, 获得单一细胞悬液, 在培养皿 / 瓶中进行接种培养 在这种体外培养过程中, 神经元可从分散造成的损伤中完全恢复, 并生长发育为具有相对较完整形态结构和生理功能的神经元个体, 同时神经元间还会形成交织成网状的 突触联系 培养神经元作为良好的实验标本在生理学 神经生物学 分子生物学和药理学等学科中应用十分广 泛, 在共聚焦显微技术 免疫化学和电生理技术中经常被使用 不仅可直接观察活细胞自然的形态和功能发育, 而且还可比较药物作用前后的变化 药物对神经元的影响还排除了血液 代谢产物和激素等各 种因素的干扰 与急性分散的神经元标本相比, 机械损伤对其造成的影响很小, 其形态非常完整, 突起较多, 细胞 基本上处于比较自然的生长发育状态 然而, 尽管其生存于模拟体内的特殊环境与条件下, 与在体神经 元的环境相比仍存在很大差异, 所以在对实验结果的分析上, 不能简单地将其移植到在体的情况 海马属大脑边缘系统, 与情绪 学习记忆有关, 它具有明显的产生突触传递长时程增强 (LTP) 和长 时程抑制 (LTD) 的能力 LTP 和 LTD 目前被认为是学习记忆的基础 海马又是常引起癫痫发作的病变部 位, 并且海马细胞对缺氧 缺血特别敏感 因此, 海马成为研究脑功能与脑疾病的良好标本 海马主要的细胞类型是锥体神经元, 占海马全部神经元的 90% 左右 海马神经元培养获得的海马神 经元也多为锥体神经元, 虽然也含有少量中间神经元和其它类型神经元 本文介绍的是大鼠海马神经元常用的培养方法, 大家在使用时应该掌握一般的普适原则, 因实验条 件不同要学会变通 此外, 本方法也可为培养其它神经元提供参考 2. 实验条件与设备 2.1 实验室要求细胞培养是一种无菌操作技术, 要求工作环境和条件必须保证无微生物污染, 因此要求有独立无菌 的细胞培养间 细胞培养间内要配备常用设备, 如紫外灯 倒置显微镜等 细胞培养间一般包括更衣间 ( 更换工作服 拖鞋 ) 缓冲间 ( 放置冰箱 无菌器械及物品 ) 与洁净室 ( 操作间, 放置超净工作台 培 养箱 离心机 倒置显微镜等 ) 培养间内最好有空气过滤 层流装置 2.2 仪器设备必需的设备 :CO 2 培养箱 CO 2 气瓶 超净工作台 解剖显微镜 倒置显微镜 低速台式离心机 (1,000-1,500 rpm) 分析天平 (0.1 mg) ph 计 纯水机 冰箱 高压消毒锅 恒温水浴锅 恒温振荡 器 电烤箱 酸缸 选配的设备 : 渗透压仪 倒置荧光显微镜 数码相机 图像采集卡 酶标仪等 2.3 常用工具与耗材培养皿 (35 mm) 200 目筛网 滤器及微孔滤膜 (0.2 μm) 各种规格移液枪 酒精灯 血球计数器 常用手术器械 ( 眼科镊 显微手术镊 手术剪等 ) 常用玻璃器皿 ( 试管 离心管 吸管 滴管等 ) 各种培养液储存器 - 2 -

4 3. 实验动物 新生 Wistar/SD 大鼠, 当天出生 (24h 内 ), 要由有资质的实验动物中心提供 还可采用胎鼠 鼠龄偏大的大鼠, 培养的神经元不易存活 4. 实验试剂及配置 4.1 实验试剂 表 1 神经元培养用试剂 名称 英文 生产厂家 备注 DMEM 培养基 Dulbecco s Modified Eagle Medium Gibcol/Sigma 高糖型 胎牛血清 fetal bovine serum Gibcol/Hyclone/ 国产 马血清 equine serum Gibcol/ Hyclone/ 国产 N-2 添加剂 N-2 supplement Gibcol B-27 添加剂 B-27 supplements Gibcol 胰蛋白酶 Trypsin Gibcol/ 国产 L- 多聚赖氨酸 poly-l-lysine Sigma 分子量 : kda 阿糖胞苷 cytosine arabinofuranoside (Ara-C) Sigma 谷氨酰胺 L-glutamine Sigma 青霉素 Penicillin 国产 ( 如华北制药 ) 80 万单位 / 支 链霉素 Streptomycin 国产 ( 如华北制药 ) 100 万单位 / 支 注 :(1) 无机盐 葡萄糖等采用国产的即可, 但要求为分析纯 (2) 所用蒸馏水至少为双蒸水 如果采用纯水机, 可直接使用纯水 4.2 试剂配制 (1) 磷酸缓冲液 (PBS 液 ) 为配置其它试剂的平衡液 取 KH 2 PO g,na 2 HPO 4 12H 2 O 1.7 g,kcl 0.1 g,nacl 4.0 g, 用双蒸 水溶解并加至 500 ml, 调 ph 值为 7.2 用 0.2 μm 的微孔滤膜过滤,4 C 保存备用 (2) 胰蛋白酶储备液水解神经元间结构蛋白的连接, 从而分离细胞 将 0.5 g 胰蛋白酶溶于 100 ml 磷酸缓冲液中, 配成 浓度为 0.5% 的胰蛋白酶储备液, 分装后冻存备用 分散神经元时, 还经常用到木瓜蛋白酶 (Papain) 和胶原蛋白酶 (Collagenase) 木瓜蛋白酶能水解 半胱氨酸的巯基, 常用浓度为 20 单位 /ml 胶原蛋白酶常用于消化纤维组织 上皮组织和肿瘤细胞, 在 神经系统多用于分散神经节 常用浓度为 mg/ml (3) 培养基质目前常用的培养基质 ( 又称底物 ) 有胶原 ( 如鼠尾胶 小牛皮胶 ) 多聚赖氨酸 / 多聚鸟氨酸 细胞 黏附因子 单层非神经元细胞 ( 如星形胶质细胞 ) 等 培养基质有利于神经细胞贴壁生长, 同时有些基 质对神经细胞有支持 营养作用 多聚赖氨酸的制备 : 取 L- 多聚赖氨酸 25 mg, 用双蒸水溶解并稀释至 330 ml, 终浓度为 mg/ml, 用 0.2 μm 的微孔滤膜过滤,4 C 保存备用 鼠尾胶的制备 : 取两根大鼠尾, 在无水乙醇中固定 15 min 后抽取胶原纤维, 剪碎, 用 75% 乙醇 浸泡 30 min, 用双蒸水冲洗 3 次 将剪碎的胶原纤维放入 250 ml 经高压消毒的 0.1% 乙酸溶液中, 4 C 保存, 不时摇晃 7 d 后取上清液, 分装,4 C 保存备用 - 3 -

5 小牛皮胶 : 购自国外 (4) 谷氨酰胺储备液取谷氨酰胺 g, 用磷酸缓冲液溶解并稀释至 100 ml, 浓度为 40 mmol/l, 冻存备用 (5) 青链霉素储备液用于防止细菌污染 取青霉素 80 万单位, 用 20 ml 双蒸水溶解 ; 取链霉素 100 万单位, 用 25 ml 双 蒸水溶解 2 种溶液按照 1:1 比例混匀, 分装, 冻存 (6) 解剖液分离并剪碎海马组织用液 要求是不含钙镁的平衡盐溶液, 高压蒸汽消毒 取葡萄糖 3.0 g, 蔗糖 7.5 g,nacl 8.0 g,kcl 0.4 g,na 2 HPO 4 7H 2 O 0.18 g,kh 2 PO g, 酚红 1 mg,5 ml 青链霉素储备液, 用 9.0 mmol/l HEPES 缓冲液溶解, 并加到 1,000 ml,ph 7.3, 渗透压调至 mosm 用 0.2 μm 的微孔滤膜 过滤,4 C 保存备用 (7)DMEM 培养基取高糖 DMEM 一个包装 (13.4 g), 用双蒸水溶解, 加 NaHCO g, 并加适量葡萄糖 ( 终浓度 6%), 用双蒸水稀释并加到 1,000ml, 调 ph 值为 7.3 用 0.2 μm 的微孔滤膜过滤 (8) 阿糖胞苷储备液用于抑止神经胶质细胞的生长 取 5 mg 阿糖胞苷, 用 25 ml 磷酸缓冲液溶解成浓度 0.2 mg/ml, 用 0.2 μm 的微孔滤膜过滤,4 C 保存备用 (9) 种植液 DMEM 培养基 75%, 马血清 10%, 胎牛血清 10%, 谷氨酰胺储备液 4.5%, 青链霉素储备液 0.5% 使 用前数小时配置, 并置于培养箱中备用 (10) 饲养液 DMEM 培养基 82%, 马血清 10%,N-2 1%,B-27 2%, 谷氨酰胺储备液 4.5%, 青链霉素储备液 0.5% 使用前数小时配置, 并置于培养箱中备用 N2 B27 等添加剂是神经细胞培养中常用的, 它们含有多种促进细胞生长增殖的因子 主要活性因 子有 : 胰岛素 三碘甲腺原氨酸 转铁蛋白 超氧化物歧化酶 腐胺 孕酮 亚硒酸钠 谷氨酰胺 谷 胱甘肽 维生素 E 脂肪酸等等 5. 实验操作 5.1 准备工作 细胞培养间和超净工作台消毒 准备已消毒好的器械和物品 包被培养皿 / 玻片 : 使用前 2 d, 在无菌条件下取 35 mm 塑料培养皿 ( 来自 Corning/Nunclon/ NORMAX 等 ), 每皿加多聚赖氨酸 1 ml, 放置过夜后, 吸去多余多聚赖氨酸, 自然干燥备用 如果采用玻 片, 可将玻片浸在多聚赖氨酸溶液中 5 min 取出, 室温过夜备用 包被前玻片要用 75% 乙醇溶液清洗 配置种植液和饲养液 : 使用前数小时配制, 并置于 37 C 5% CO 2 培养箱中备用 5.2 剥离组织整个操作过程均在超净工作台内进行 取出生 24 h 以内的 Wistar/SD 大鼠, 用碎冰块包埋大鼠 10 min 左右, 进行冰冻麻醉, 然后用 75% 乙醇浸泡一下进行消毒 在无菌条件下断头, 沿颅骨正中剪开皮肤和 颅骨, 向两边分开, 小心取出全脑, 浸入冰浴的解剖液中 在冰浴的解剖液中, 首先切除小脑和脑干部分, 然后沿脑正中线将脑切为左右两个半球, 海马位于 半球的腹内侧, 需要在解剖显微镜下用镊子剥离双侧海马 完整的海马呈月牙形, 与其它脑区边界比较清晰 - 4 -

6 5.3 消化和分散用手术刀片或剪刀将海马剪切成 1-2 mm 3 的小块, 取出海马小块放入盛有 0.125% 胰蛋白酶液的试管 中, 在 37 C CO 2 培养箱中消化 期间轻晃试管 1-2 次, 以利细胞消化 消化 min 后, 用吸管将组织块移入适量种植液中终止消化,1,000 rpm 离心 1 min, 弃上清, 再 加入适量种植液, 用抛光过的适当口径 ( 尖端直径 1-2 mm) 的滴管吹打细胞, 使之均匀分散 最后用 200 目滤器过滤, 制成细胞悬液 5.4 细胞计数取 50 μl 上述细胞悬液, 稀释到 1 ml( 稀释 20 倍 ), 计数过程操作如下 : (1) 准备 1 个血球计数器 ( 图 1), 将盖玻片放在 计数器槽上 ; (2) 各取 100 μl 细胞悬液沿盖玻片边缘加入到血球计数器的四大格内, 静置 3-5 min (3) 镜下观察并计算四大格内细胞总数, 压格线的 细胞只计数左侧与上方的, 未被过滤掉的小的 细胞团块 ( 含 2 个细胞及以上 ) 按照 1 个细胞 计数或者不计数 (4) 计算细胞密度 : 因四大格中每一大格体积 = 0.1 mm 3,1 ml = 10,000 个大格 则 : 细胞密度 ( 细胞数 /ml)=( 四大格内细胞数 / 4) 稀释倍数 10,000 图 1. 血球计数器例如, 当四大格细胞数为 100 个时, 按照上述稀释倍数 ( 为 20 倍 ), 则 : 细胞密度 =(100/4) 20 10,000 /ml = /ml 注 :(1) 一般要求细胞密度为 /ml (2) 计数过程 : 计数前一定要将细胞测悬液吹均匀 ; 加入细胞悬液时, 盖片下不能有气泡, 也 不能让细胞悬液流入旁边槽中 如果出现这些情况, 要重新操作 (3) 如果固定每次新生大鼠的数量和整个操作流程, 可不用每次都计数 5.5 存活率测定 (1) 台盼蓝染色法 : 用 0.4% 台盼蓝 (trypan blue)1 滴染色 9 滴细胞悬液,3 min 后, 在倒置显微 镜下检查, 存活神经元不被染色, 胞体有明显的光泽, 死细胞胞体呈淡蓝色 在 100 倍镜下, 计数 10 个视野 / 皿 细胞存活率 (%)= 存活细胞总数 / 细胞总数 (2)MTT 比色法 :MTT( 四甲基偶氮唑蓝 ) 是一种能接受氢原子的染料, 被活细胞的线粒体琥珀酸 脱氢酶还原为水不溶性的深紫色结晶 (formazan, 甲月赞 ), 用特定溶剂可溶解这种结晶, 最后用酶标仪 在 570 nm 波长附近 ( nm) 处测定 formazan 光吸收值, 可反映活细胞的数量和代谢活力, 并由此反 映细胞的存活 生长 增殖等情况 称取 MTT 0.5 克, 溶于 100 ml 的磷酸缓冲液或无酚红的培养基中 (MTT 浓度为 5 mg/ml), 用 0.22 μm 滤膜过滤以除去溶液里的细菌, 放 4 避光保存即可 在配制和保存的过程中要注意避光 同 MTT 法类似的还有 XTT 法 MTS 法, 此处不再赘述 5.6 细胞接种根据上述细胞密度, 在细胞悬液中加入适量种植液, 按照需要将细胞按 /ml 的密度接种在多 聚赖氨酸 / 鼠尾胶 / 小牛皮胶包被的 35 mm 培养皿或培养皿中的盖玻片中, 置于 37 C 5%CO 2 培养箱中进行培养 - 5 -

7 5.7 更换培养液培养 24 h 后更换培养基, 将种植液换为饲养液 以后每周更换两次, 每次半量更换 为抑制非神经 元过度增殖, 在培养的第 4 或 5 d 向培养基中加入适量阿糖胞苷 : 每皿中加阿糖胞苷储备液 l, 终浓度为 3-5 µg/ml 6. 神经元形态观察 倒置相差显微镜下观察, 分散培养的大鼠海马神经元, 在接种 1 小时后即可有贴壁, 多数在 6-12 h 贴壁, 细胞呈单个圆形或椭圆形 2-3 d 后, 细胞明显增大, 长出数个突起并向四周延伸 6-7 d 时, 相 差显微镜下, 可见神经元具有明显的光晕, 呈三角形或多边形, 边界清晰, 胞体明亮, 胞核和核仁清晰 可见 在培养过程中神经元之间的纤维联系逐渐丰富, 并形成网络 从培养开始胶质细胞也逐渐增多,5-7 d 时胶质细胞明显增多, 胞体呈扁平多角, 核在中央或偏于一 侧 待 7-10 d, 胶质细胞会连接成片, 厚厚地一层铺在神经元下 随着培养时间的延长, 从 1 个月左右开始, 海马神经元逐渐退化 变性, 表现为神经元胞体光晕消 失, 胞体皱缩, 突起萎缩 翘起, 有的胞体内出现空泡, 直至脱落死亡, 导致神经元的数量逐渐减少 一般认为, 培养 d 时, 对神经细胞进行形态结构分析 电生理实验和生化 组化测定比较适 宜, 除非要观察不同培养时间 ( 培龄 ) 对观察指标的影响, 这时, 可以从培养 6 d 开始观察, 直到 30 d 左右为止 但多数情况下, 膜片钳实验多采用培养 d 以内的神经元, 胞体直径约 μm, 这一培养期 内的神经元离子通道 受体功能均已成熟, 突起也呈交织的网状, 有完整的突触联系形成, 在胞体上除 了能记录出各种电压门控性离子通道电流外, 还能够记录到突触自发活动和配体门控性离子通道电流, 电流钳模式下, 也能诱发出动作电位 图 2. 大鼠海马神经元培养 d 神经元胞体具有明显的光晕, 呈三角形或多边形, 突起明显, 胞核和核仁清晰可见 左右两图为采用显 微镜不同滤色片获得的细胞影像.(x 400) - 6 -

8 图 3. 大鼠海马神经元培养 3 d( 左 ) 和 30 d( 右 ) 均为用特异性烯醇化酶 (NSE) 染色.(x 400) 图 4. 大鼠海马神经元培养 12 d 神经元胞体呈三角形或多边形, 长突起, 交织成网状 ; 胞体光晕很强, 核清晰, 适合进行膜片钳实验. (x 400) 7. 免疫组化染色观察 免疫组化染色是鉴定培养细胞特征的有效方法 通过使用抗体可确定特定细胞的数目 形态特征 抗原表达水平 细胞间相互关系等 如 : 微管相关蛋白 2(MAP2) 胶原原纤维酸性蛋白(GFAP) 神经元特异性烯醇化酶 (NSE) 等染色 ( 见图 3) 8. 无血清培养 血清中含有大量的营养成分 生长因子 激素, 还具有很好的离子缓冲系统, 因此被广泛地用于各 种组织的培养, 被添加到种植液 饲养液中 常用的有马血清 小牛或胎牛血清 使用前一般需要在 56 水浴中热灭活补体 30 min 虽然血清含有各种营养而利于神经元生长, 但血清有如下缺点 : - 7 -

9 在进行神经细胞营养研究时, 由于血清成份复杂且不稳定, 妨碍对神经细胞营养要求的确切了解 ; 在进行激素和药物研究时, 激素或药物与血清成份的结合, 干扰了其对神经细胞的作用 ; 血清干扰对培养神经细胞释放产物的分析 ; 血清只能采用过滤消毒, 而过滤消毒只能除去细菌, 不能除去病毒和支原体 基于以上原因, 在对培养基成分要求严格控制时, 可采用无血清培养基 (Neurobasal Medium) 来培 养 在接种细胞时, 采用无血清培养液 (Neurobasal Medium 98%,N3 1%, 谷氨酰胺 1 %); 接种第 10 d, 在培养皿中加入阿糖胞苷抑止胶质细胞生长, 作用 48h 后更换新鲜无血清培养液 以后每周换无血清培 养液 此外, 无血清培养液也有不同配方, 如 DMEM/F12 98%+N3 1%+ 谷氨酰胺 1 % 9. 注意事项 1. 无菌操作 : 无论是配置液体还是取材 使用工具, 细胞培养的整个操作过程都要在无菌条件下进行 2. 剥离海马 :(1) 为保证神经元接种的质量和数量, 剥离海马要快速 完整, 并在低温的解剖液 中操作 ;( 2) 剥离海马时, 要尽量分离掉血管, 防止成纤维细胞的混入而影响神经元的生长 3. 选择血清 : 不同批号 / 批次的各类血清之间可能存在较大差异, 这对神经元影响很大, 要预先筛 选适合神经元生长的血清 4. 胰蛋白酶 :(1) 不同批号的胰蛋白酶的消化能力可能差距, 这对实验结果影响较大 应确定浓 度后进行预实验, 确定具体的消化时间, 一般在 min 不等 ;(2) 胰蛋白酶使用量与海马组织的多 少 / 大鼠的数量有关, 消化时间长短与胰蛋白酶浓度有关, 这要在实验中摸索 5. 消化后的吹打 : 用吸管吹打细胞时不要过重, 尽量不要起泡沫, 以免损伤神经元 6. 胶质细胞问题 : 在接种的神经细胞中混有胶质细胞, 胶质细胞可分泌神经营养物质促进神经元生长, 但由于其可增殖, 和神经元争夺培养基中的营养, 所以须在其增殖的高峰使用有丝分裂抑制剂 ( 如 阿糖胞苷 ), 作用 48 h, 抑制胶质细胞的过度生长 7. 接种细胞后 :( 1)24 h 内不要触动培养皿, 以免影响细胞贴壁 ;(2)24 内不要开启培养箱门, 以免影响培养箱内温度与 CO 2 含量 8. 神经生长因子 (NGF): 海马神经元培养液中可添加 NGF, 而在神经节细胞的培养中,NGF 是必不可少的 神经生长因子粗制剂的提取方法 : 取一只体重 25 g 左右的成年雄性昆明小鼠, 无菌条件下取 其双侧颌下腺, 用灭菌双蒸水冲洗两遍, 放入 5 ml 灭菌双蒸水中, 剪碎, 摇晃, 浸泡 20 min 后, 以 1500 rmp 的转速离心 5 min, 取上清液, 用 Hank s 平衡盐溶液稀释至 25 ml, 最后用 0.2 μm 的微孔滤膜过滤后 分装, 冻存备用 使用时, 按照 1 ml 培养液中加入 50 μl NGF 的比例添加 10. 膜片钳实验 培养的海马神经元一般从培养的第 12 d 左右使用较为合适, 此时, 神经元发育成熟 突触联系形成 膜片钳实验开始前, 要将培养液更换为通道记录液 (Recording solution) 更换时, 先将培养液倒掉, 然后倒入 1 ml 左右记录液, 轻晃清洗, 可清洗 1-2 次, 最后倒入 ml 记录液 注意 : 事先最好对记录液进行过滤 实验时, 无论是记录液还是电极内液, 都要根据膜片钳记录模式 实验目的 所欲记录的离子通道 等要求来配制 例如, 记录海马神经元全细胞 Ca 2+ 电流的记录液 ( 细胞外液 ) 配方可以是 (mmol/l): NaCl 140,KCl 5,CaCl 2 2,MgCl 2 1,HEPES 10, 葡萄糖 10,TTX 0.001,4-AP 1,TEA 10, 调 ph 值为 7.3 电极内液 ( 细胞内液 ) 配方可以是 (mmol/l): CsCl 140,HEPES 10,EGTA 10,Na 2 ATP 2, 用 CsOH 调 ph 为

10 图 5. 培养海马神经元全细胞记录左图显示培养的神经元与记录电极已经形成全细胞记录模式 ; 右图为记录的神经元全细胞 Ca 2+ 电流 ( 细 胞钳制电位 =-90 mv, 去极化到 +10 mv, 步阶 20 mv). 图 7. 烟碱对培养海马神经元突触活动的影响 压力给予烟碱 (2 mmol/l) 后, 海马神经元自发兴奋性突触后电流 (sepsc) 发放频率增强, 但未见诱发 的烟碱电流. 注 : (1) 本文作者刘卫,2001 年获军事医学科学院毒物药物研究所博士学位, 现在山东泰安解放军第 88 医院药剂科工作 吴丽颖,2001 年获军事医学科学院基础医学研究所博士学位, 现在军事医学科学院基础医学研究所工作 (2) 本文部分资料由原军事医学科学院毒物药物研究所杨胜博士 基础医学研究所马子敏博士提供, 在此一并致谢! ( 完 ) - 9 -

目 录 1. 简介... (2) 2. 实验条件与设备... (2) 2.1 实验室要求... (2) 2.2 仪器设备... (2) 2.3 常用工具与耗材... (3) 3. 实验动物... (3) 4. 实验试剂及配置... (3) 4.1 实验试剂... (3) 4.2 试剂配制... (3

目 录 1. 简介... (2) 2. 实验条件与设备... (2) 2.1 实验室要求... (2) 2.2 仪器设备... (2) 2.3 常用工具与耗材... (3) 3. 实验动物... (3) 4. 实验试剂及配置... (3) 4.1 实验试剂... (3) 4.2 试剂配制... (3 膜片钳技术系列手册 (7) 大鼠背根神经节细胞急性分散方法 刘振伟 编写 (2015 年 6 月 27 日 ) 目 录 1. 简介... (2) 2. 实验条件与设备... (2) 2.1 实验室要求... (2) 2.2 仪器设备... (2) 2.3 常用工具与耗材... (3) 3. 实验动物... (3) 4. 实验试剂及配置... (3) 4.1 实验试剂... (3) 4.2 试剂配制...

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