第 29 卷第 18 期中国现代医学杂志 Vol. 29 No 年 9 月 China Journal of Modern Medicine Sept DOI: /j.issn 文章编号 : (20

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1 第 29 卷第 8 期中国现代医学杂志 Vol. 29 No 年 9 月 China Journal of Modern Medicine Sept. 209 DOI: /j.issn 文章编号 : (209) 高脂饮食诱导青春期前雌性大鼠多囊卵巢综合征的实验研究 2 古兰 托合提木拉提, 叶尔努尔 吐苏甫汗, 马玉兰, 玛依努尔 尼亚孜 (. 新疆自治区人民医院, 新疆乌鲁木齐 ;2. 新疆医科大学第二附属医院, 新疆乌鲁木齐 ) 摘要 : 目的复制高脂饮食诱导青春期前雌性大鼠的多囊卵巢综合征 (PCOS) 动物模型, 探讨其生殖和代谢特征 方法将青春期前雌性大鼠随机分成 和,接受正常饮食,接受高脂饮食, 连续喂养 05 d 另将成年雌性大鼠随机分成 A 组和 B 组,A 组接受 % 羧甲基纤维素,B 组接受 mg/kg 灌服来曲唑, 连续喂养 2 d 观察各组体重 动情周期和卵巢组织学变化, 检测各组空腹血糖 胰岛素 糖耐量 计算胰岛素抵抗指数 (HOMA-IR) 定量胰岛素敏感性检测指数 血脂水平 性激素水平 促黄体激素受体 (LHR) 及促卵泡激素受体 (FSHR)mRNA 的表达 结果 B 组 及 2 d 体重低于 A 组 (P <0.05); B 组观察结束后卵巢重量高于 A 组 (P <0.05);B 组喂养 2 d 后糖耐量曲线下面积 (AUC) 高于 A 组 (P <0.05); 及 05 d 的糖耐量 AUC 空腹胰岛素 HOMA-IR 血清总胆固醇 雌二醇及孕酮高于 (P <0.05),定量胰岛素敏感性检测指数 睾酮高于 (P <0.05) 结论高脂饮食可诱导青春期前雌性大鼠 PCOS, 并产生代谢紊乱和卵巢改变, 与 PCOS 患者临床观察相似 关键词 : 多囊卵巢综合征 ; 大鼠 ; 模型, 动物中图分类号 : R7.75 文献标识码 : A High fat diet exposure induced polycystic ovarian syndrome in prepuberty rats Gulan Tuohetimulati, Yemur Tusuvhan 2, Yulan Ma, Mnyinuer Niyaz (. Xinjiang Autonomous Region People s Hospital, Urumqi, Xinjiang 83000, China; 2. The Second Affiliated Hospital of Xinjiang Medical University, Urumqi, Xinjiang , China) Abstract: Objective To establish a polycystic ovary syndrome (PCOS) animal model of prepubertal female rats induced by high-fat diet, and to explore the reproductive and metabolic characteristics of PCOS rats. Methods Prepubertal female rats were randomly divided into two groups: the control group which received a normal diet (group C, n = 9), and the experimental group which received a high-fat diet (group D, n = 9), and both two groups had been fed for 05 days. In addition, the adult female rats were randomly divided into another two groups: the control group which received % carboxymethyl cellulose (group A, n = 9), and the other group which received mg/kg of letrozole (group B, n = 9), and both groups had been fed for 2 days. The body weight, estrus cycle and histology of ovary in the four groups were observed. Fasting glucose, fasting insulin, glucose tolerance, homeostasis model assessment for insulin resistance (HOMA-IR) and quantitative insulin sensitivity check index 收稿日期 :

2 中国现代医学杂志 第 29 卷 (QUICKI), lipid profile, hormonal profile, leutinizing hormone receptor (LHR) and follicle stimulating hormone receptor (FSHR) mrna expression were also measured. Results The body weight and ovarian weight of group B were lighter than that of group A (P < 0.05). Compared to group A, the AUC of glucose tolerance increased (P < 0.05). The AUC of glucose tolerance, fasting insulin, HOMA-IR, serum total cholesterol, estradiol and progesterone of 49, 77 and 05 days in group D were higher than those in group C (P < 0.05), and the quantitative insulin sensitivity index and testosterone in group C were higher than those in group D (P < 0.05). Conclusions Prepuberty highfat diets induce PCOS in female rats and produce metabolic disorders and ovarian changes that are similar to those observed in patients with PCOS. Keyword: polycystic ovary syndrome; rats; models, animal 多囊卵巢综合征 (polycystic ovary syndrome, PCOS) 是女性不育不孕的主要病因之一 [] 为研究 PCOS 病因及其发病机制, 目前已经复制了多种 PCOS 动物模型, 但这些模型均未能全面反映 PCOS 患者常 见的卵巢形态 功能及代谢特征变化 [2-4] 本研究拟 探讨高脂饮食 (high-fat diet, HFD) 对青春期前大鼠 卵巢形态 功能 胰岛素敏感性和激素水平的影响 现报道如下 材料与方法. 实验动物 SPF 级 SD 雌性大鼠 8 只,8 ~ 0 周龄, 体重 200 ~ 250 g ;SPF 级 SD 雌性大鼠 8 只,3 ~ 4 周 龄, 体重 45 ~ 55 g, 均购于新疆医科大学实验动物 中心 [ 许可证号 :SYXK( 新 ) ] 饲养温度 (22±2), 相对湿度 (55±5)%,2 h 昼夜交替, 清洁饲养, 自由饮水, 环境安静, 饲养环境符合 SPF 要求.2 试剂与仪器 普通颗粒饲料 (00% 基础饲料, 含 65% 碳水化 合物 2.5% 蛋白质 4% 脂肪及 9.5% 其他 ) 和高脂 肪饲料 (50% 基础饲料 7% 猪油 9% 豆油 6% 蔗糖 6% 酪蛋白及 2% 其他, 含 36% 碳水化合物 20% 蛋白质 40% 脂肪及 4% 其他 ) 购自新疆医科大 学实验动物中心 来曲唑购自江苏恒瑞医药股份有限 公司 ( 批号 :50956, 国药准字 H99900), 羧甲 基纤维素钠购自美国 Sigma 公司 ( 批号 ), Trizol 试剂购自美国英杰生命技术有限公司,ACS-.5A 电子秤购自上海友声衡器有限公司,XS205 分 析天平购自瑞士梅特勒 - 托利多仪器 ( 上海 ) 有限公 司, 血糖仪购自德国罗氏诊断有限公司, 全自动生化 分析仪购自美国 Beckman 公司,ABI-7900 实时荧光 定量 PCR 仪购自美国 ABI Biosystem 公司.3 方法.3. 动物分组及模型复制 PCOS 阳性对照 : 将 8~0 周龄 SD 大鼠随机分为 A 组和 B 组, 各 9 例 A 组作为 B 组的对照,A 组和 B 组采用普通颗粒饲料喂养 2 d,a 组每日同时灌胃 % 羧甲基纤维素 (LET 溶解剂 ),B 组每日同时灌胃 % 羧甲基纤维素 + 来曲唑 [ mg/(kg d)] [5] PCOS 实验对照 : 将 3 ~ 4 周龄 SD 大鼠随机分为 和, 各 9 例 为 的对照, 采用普通颗粒饲料连续喂养 05 d ;则采用高脂饲料连续喂养 05 d [6].3.2 大鼠体重及动情周期监测每日称 4 组大鼠体重并记录 A 组和 B 组于第 4~2 天,和 D 组于第 42~49 天 第 70~77 天及第 98~05 天每只大鼠进行阴道涂片检查, 用生理盐水 (0.9% 氯化钠 NaCl) 清洗阴道, 收集阴道壁上的细胞并涂抹在玻片上 在显微镜下检查玻片上的有核上皮细胞 角化上皮细胞和白细胞的相对丰度, 观察大鼠动情周期变化.3.3 糖耐量试验 胰岛素抵抗指数 (homeostasis model assessment for insulin resistance, HOMA-IR) 及胰岛素敏感检测指数 糖耐量试验 : 禁食过夜后, 次日空腹采尾静脉血, 测定空腹血糖 (fasting blood glucose, FBG), 随后以葡萄糖 2 g/kg 灌胃大鼠, 在 和 20 min 后通过尾静脉取血, 测定血糖值 采用 Med Calc.4..0 统计软件分析曲线下面积 (area under the curve, AUC) [7] 2 HOMA-IR : 采用放射免疫法检测空腹胰岛素 (fasting insulin, FINS),HOMA- IR=FINS FBG/ 定量胰岛素敏感性检测指数 =/[log(fbg)+log(fins)] [7].3.4 血清血脂及性激素检测禁食过夜后, 次日空腹采尾静脉血检测血清总胆固醇 (total cholesterol, TC) 和甘油三酯 (Triglycerides, TG) 采用放射免疫法测定促黄体生成激素 (Luteinizing hormone, LH) 4

3 第 8 期 古兰 托合提木拉提, 等 : 高脂饮食诱导青春期前雌性大鼠多囊卵巢综合征的实验研究 卵泡刺激素 (follicle stimulating hormone, FSH) 雌二醇 (Estradiol, E2) 孕酮 (Progesterone, P) 及睾酮 (Testosterone, T).3.5 LH 受体 ( luteinizing hormone receptor, LHR) 及 FSH 受体 (follicle stimulating hormone receptor, FSHR) mrna 表达处死大鼠并分离卵巢 采用 Trizol 试剂提取卵巢细胞总 RNA 逆转录聚合酶链反应将总 RNA 逆转录成 cdna 采用实时荧光定量 PCR 反应检测 LHR 和 FSHR mrna 表达 LHR 正向引物 :5 -TCCGTGGACTCCCAAACA-3, 反向引物 : 5 -ATCGTGGCGATCAGCGTA-3 FSHR 正向引物 :5 -ACTGTGCATTCAACGGAA-3, 反向引物 : 5 -GCCTCCATGAGGGTGACA-3 β-actin 正向引物 : 5 -CTGGAGAAGAGCTATGAGCTGCCTG-3, 反向引物 :5 -AGGAAGGAAGGCTGGAAGAGAGCCT-3 以 2 - Ct 法计算.3.6 卵巢重量及组织学检查 A 组和 B 组于第 2 天,和 于第 05 天, 处死大鼠并分离卵巢, 称取卵巢重量后, 以卵巢最大平面作为待检面, 将其包埋在石蜡中, 切成 4 ~ 5μm 厚的切片, 用苏木精 - 伊红染色后观察.4 统计学方法数据分析采用 Graph pad Prism 6 和 Med Calc.4..0 统计软件 计量资料以均数 ± 标准差 (x±s) 表示, 比较用配对 t 检验或重复测量设计的方差分析, P <0.05 为差异有统计学意义 2 结果 2. 各组体重增长情况 A 组和 B 组 及 2 d 体重比较, 采用重复测量设计的方差分析, 结果 : 不同时间点体重比较, 差异有统计学意义 (F =20.542,P =0.000); 2 两组体重比较, 差异有统计学意义 (F =23.863, P =0.000),B 组低于 A 组 ;3 两组体重变化趋势比较, 差异有统计学意义 (F =6.02,P =0.000) 见表 和图 A 和 及 05 d 体重比较, 采用重复测量设计的方差分析, 结果 : 不同时间点体重比较, 差异有统计学意义 (F =30.560,P =0.000); 2 两组体重比较, 差异无统计学意义 (F =2.432, P =0.05);3 两组体重变化趋势比较, 差异无统计学意义 (F =0.739,P =0.744) 见表 2 和图 B 表 A B 组不同时间点体重比较 (n =9,g,x±s) 组别 0 d 7 d 4 d 2 d A 组 29.43± ± ± ±8.65 B 组 2.2± ± ± ±7.62 表 2 C 不同时间点体重比较 (n =9,g,x±s) 组别 0 d 7 d 4 d 2 d 28 d 35 d 42 d 49 d 5.03± ± ± ± ± ± ± ± ± ± ± ± ± ± ± ±8.63 组别 56 d 63 d 70 d 77 d 84 d 9 d 98 d 05 d 94.54± ± ± ± ± ± ± ± ± ± ± ± ± ± ± ± 各组动情周期变化阴道涂片评估动情周期发现,A 动情周期规律, 均为 4 ~ 5 d B 组在第 4 ~ 2 天阴道涂片仅观察到白细胞, 提示 B 组失去了规律的动情周期 D 组第 42~49 70~77 及 98~05 天发情周期持续时间逐渐延长, 表明发情周期不规律 2.3 各组卵巢重量和卵巢组织形态学比较 A 组观察结束后卵巢重量为 (54.26±4.5)mg, B 组为 (70.9±5.23)mg, 经 t 检验, 差异有统计学 意义 (t =7.233,P =0.000),B 组高于 A 组 观察结束后卵巢重量为 (4.84±5.98)mg, 为 (46.62±5.32)mg, 经 t 检验, 差异无统计学意义 (t =.792,P =0.092) B 组和 均观察到多个囊状扩张卵泡 小卵泡及闭锁卵泡, 黄体数量下降, 颗粒细胞层数减少 B 组卵泡直径为 (865.32±32.25)μm,为 (475.32±26.54)μm, 经 t 检验, 差异有统计学意义 (t =28.03,P =0.000),B 组大于 见图 2 5

4 中国现代医学杂志 第 29 卷 A 组 B 组 体重 /g 体重 /g 时间 /d 时间 /d A B 图 各组体重增长曲线 (n =9,x±s) A 组 B 组 图 2 各组卵巢组织形态变化 (HE 染色 00) 2.4 各组 FBG FINS 糖耐量 HOMA-IR 及定量胰岛素敏感性检测指数比较 A 组与 B 组喂养 2 d 后糖耐量比较, 差异有统 计学意义 (t =4.723,P =0.000); 两组 FBG FINS HOMA-IR 和定量胰岛素敏感性检测指数比较, 差 异无统计学意义 (t = 和 0.54, P = 和 0.638) 见表 3 与 及 05 d 检测的 FBG FINS 糖耐量 HOMA-IR 及定量胰岛素敏感性检测指数 比较, 采用重复测量设计的方差分析, 结果 : 不 同时间点 FBG 比较, 差异无统计学意义 (F =0.422, P =0.654), 不同时间点 FINS 糖耐量 HOMA-IR 及 定量胰岛素敏感性检测指数比较, 差异有统计学意义 (F = 和 3.354,P = 和 0.038);2 两组 FBG 比较, 差异无统计学意义 (F =0.436,P =0.543), 两组 FINS 糖耐量 HOMA- IR 及定量胰岛素敏感性检测指数比较, 差异有统计 学意义 (F = 和 0.32, 均 P =0.00), FINS 糖耐量 HOMA-IR 高于, 定量胰岛素敏感性检测指数高于 ;3 两组 FBG 变化趋势比较, 差异无统计学意义 (F =0.65, P =0.342), 两组 FINS 糖耐量 HOMA-IR 及定量胰岛素敏感性检测指数变化趋势比较, 差异有统计学意义 (F = 和 3.354,P = 和 0.038) 见表 各组 TG TC 水平比较 A 组和 B 组第 2 天 TG 分别为 (96.42±4.36) 和 (36.9±7.65)mg/dl, 经 t 检验, 差异有统计学意义 (t =3.80,P =0.000) A 组和 B 组第 2 天 TC 分别为 (94.35±5.85) 和 (95.68±4.98)mg/dl, 经 t 检验, 差异无统计学意义 (t =0.80,P =0.07) 与 及 05 d 的 TG TC 比较, 采用重复测量设计的方差分析, 结果 : 不同时间点 TG TC 比较, 差异无统计学意义 (F =0.324 和 表 3 A B 组检测 2 d 后 FBG FINS 糖耐量 HOMA-IR 及定量胰岛素敏感性检测指数比较 (n =9,x±s) 组别 FBG/(mg/dl) FINS/(mU/L) 糖耐量 HOMA-IR 定量胰岛素敏感性检测指数 A 组 32.54± ± ± ±0. 0.4±0.009 B 组 29.27± ± ± ± ±

5 第 8 期 古兰 托合提木拉提, 等 : 高脂饮食诱导青春期前雌性大鼠多囊卵巢综合征的实验研究 表 4 C 不同时间点的 FBG FINS 糖耐量 HOMA-IR 及定量胰岛素敏感性检测指数比较 (n =9,x±s) 组别 FBG/(mg/dl) FINS/(mU/L) 糖耐量 HOMA-IR 定量胰岛素敏感性检测指数 49 d 28.67±3.2.86± ± ± ± d 09.75± ± ± ± ± d 32.45± ± ± ± ± d 30.44± ± ±5.57.0± ± d 5.6± ± ± ± ± d 33.24± ± ± ± ±0.0 注 : 与 比较,P < ,P =0.93 和 0.322);2 两组 TG 比较, 差异无统计学意义 (F =0.962,P =0.2); 两组 TC 比较, 差异有统计学意义 (F =3.232,P =0.039), TC 高于 ;3 两组 TG 变化趋势比较, 差异无统计学意义 (F =0.93,P =0.52), 两组 TC 变化趋势比较, 差异有统计学意义 (F =2.49,P =0.042) 见表 各组血清性激素水平比较 A 组与 B 组 2 d 的 E2 T 水平比较, 差异有统计学意义 (t =7.420 和 4.200, 均 P =0.000), 两组 LH FSH LH/FSH 及 P 水平比较, 差异无统计学意义 (t = 和 0.773,P = 和 0.299) 见表 6 表 5 C 不同时间点的 TG TC 水平比较 (n =9,mg/dl,x±s) 组别 TG TC 49 d 87.96± ± d 95.87± ± d 97.58± ± d 84.54± ± d 89.54± ± d 9.24± ±6.27 表 6 A B 组 2 d 的血清性激素水平比较 (n =9,x±s) 组别 LH/(mIU/L) FSH/(mIU/L) LH/FSH E2/(ng/L) P/(ng/ml) T/(mIU/L) A 组 8.3± ± ± ± ± ±0.54 B 组 9.8± ± ± ± ± ±0.65 注 : 与 A 组比较,P <0.05 与 及 05 d 的 LH FSH LH/ FSH E2 P 及 T 比较, 采用重复测量设计的方差分析, 结果 : 不同时间点 LH FSH 及 LH/FSH 比较, 差异无统计学意义 (F = 和 0.822,P = 和 0.65); 不同时间点 E2 P 和 T 水平比较, 差异有统计学意义 (F = 和 , 均 P =0.00);2 两组 LH FSH 和 LH/FSH 比较, 差异无统计学意义 (F = 和 0.82,P = 和 0.52); 两组 E2 P 和 T 比较, 差异有统计学意义 (F = 和 2.343, 均 P =0.00), E2 P 水平低于, T 水平高于 ;3 两组 LH FSH LH/FSH,E2 P 及 T 变化趋势比较, 差异有统计学意义 (F = 和 ,P = 和 0.00) 见表 各组 LHR 和 FSHR mrna 相对表达量比较 A B C 及 患者 LHR mrna 相对表达量分别为 (.02±0.2) (.25±0.63) (.08±0.4) 和 (2.68±0.64),FSHR mrna 相对表达量分别为 (.0±0.) (0.82±0.36) (.02±0.2) 和 7

6 中国现代医学杂志 第 29 卷 表 7 C 不同时间点的血清性激素水平比较 (n =9,x±s) 组别 LH/(mIU/L) FSH/(mIU/L) LH/FSH E2/(ng/L) P/(ng/ml) T/(mIU/L) 49 d.24± ± ± ± ± ± d 2.3± ± ± ± ± ± d.86± ± ± ± ± ± d 0.89± ± ± ± ± ± d.9± ± ± ± ± ± d 3.02± ± ± ± ± ±.26 注 : 与 比较,P <0.05 (.7±0.35) 各组患者 LHR mrna 比较, 经方差分析, 差异有统计学意义 (F =26.580,P =0.00);高于 (P <0.05); 各组 FSHR 比较, 经方差分析, 差异 无统计学意义 (F =2.648,P =0.065) 见图 3 图 3 mrna 讨论 症 LHR 与 比较,P <0.05 各组 LHR 和 FSHR mrna 相对表达量的变化 (n =9,x±s) A 组 B 组 FSHR 临床 PCOS 患者常见高雄激素血症和高胰岛素血 [8] 本研究发现 HFD 可诱导青春期前大鼠 PCOS, 其特征与临床 PCOS 患者症状相似 目前 PCOS 动物 模型复制主要是通过给予啮齿类动物雌激素 抗孕酮 雄激素及来曲唑来诱导 [9] 为观察 PCOS 的卵巢形态 特征和代谢功能变化, 本研究同时让一组成年大鼠服 用来曲唑以作为对照, 结果显示 D B 组均出现 PCOS 卵巢特征, 提示 HFD 喂养青春期前大鼠与来曲唑诱 导一样均可复制 PCOS 模型 本研究中 HFD 喂养的大鼠动情期阶段的持续时 间逐渐延长, 表明改大鼠发情周期中断 来曲唑喂养 大鼠也出现发情不规律 在这 2 种情况下, 生育力都 显著受损 性激素水平的不平衡也造成了卵巢的结构 改变 囊肿卵泡数增加, 囊壁增厚, 颗粒细胞层减少 或消失,B 大鼠颗粒细胞层减少, 卵巢也显示闭 锁卵泡增加和黄体减少 大鼠卵巢的这些组织病理学 变化与 PCOS 相似 本研究连续 HFD 喂养 49 d 后逐渐观察到大鼠糖 耐量 FINS 及 TG 异常 有学者临床观察到 PCOS 患 者伴随胰岛素抵抗会引起脂肪酶活性下降并导致 TG 异常 [0] HFD 喂养逐渐增加 TC 而非 TG 水平 在脱 氢表雄酮联合 HFD 处理的 C57BL/6 小鼠中也有报道 TC 水平升高 [] 本研究中,HFD 喂养大鼠的激素变 化可能是胰岛素抵抗和高胰岛素血症的结果 来曲唑 可减少雄激素在卵巢向雌激素的转化, 因此观察到来 曲唑喂养的大鼠中雌激素水平较低 睾酮水平较高 另有研究发现孕酮水平也降低 相似 [2], 与本研究观察结果 本研究中 HFD 喂养大鼠的 LH 和 FSH 水平及其 比例均未改变, 但 LHR 表达上调, 对 FSHR 表达影响 不大 HFD 喂养的大鼠 LH 水平未改变, 可能是因为 LH 处于动态变化过程中, 清晨采血样 LH 可能并不是 其变化区间 虽然相当比例的 PCOS 患者有 LH/FSH 改变, 但 LH/FSH 并不能作为 PCOS 诊断指标 高胰 岛素血症可增加 LHR 的表达, 继而可增强促性腺激 素的卵巢类固醇的生成反应, 使其过早的颗粒分化, 阻止卵泡生长并导致排卵 [3] 由于 LHR 表达未改 变, 所以单独来曲唑治疗的大鼠通常不存在高胰岛素 血症 8

7 第 8 期 古兰 托合提木拉提, 等 : 高脂饮食诱导青春期前雌性大鼠多囊卵巢综合征的实验研究 综上所述, 大鼠青春期前开始的 HFD 诱导代谢功能紊乱和卵巢形态改变进展缓慢, 与临床 PCOS 患者观察到的变化相似 与来曲唑诱导 PCOS 模型相比, 青春前期 HFD 可能是通过产生高胰岛素血症诱导雄激素增多, 诱导大鼠 PCOS 该模型研究对于进一步阐明 PCOS 的发病机制具有重要意义 参考文献 : [] ESCOBAR-MORREALE H F. Polycystic ovary syndrome: definition, aetiology, diagnosis and treatment[j]. Nat Rev Endocrinol, 208, 4(5): [2] GRIGORYAN O R, ZHEMAITE N S, VOLEVODZ N N, et al. Long-term consequences of polycystic ovary syndrome[j]. Ter Arkh, 207, 89(0): [3] NOROOZZADEH M, BEHBOUDI-GANDEVANI S, ZADEH- VAKILI A, et al. Hormone-induced rat model of polycystic ovary syndrome: a systematic review[j]. Life Sci, 207, 9: [4] LEGRO R S. Ovulation induction in polycystic ovary syndrome: current options[j]. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol, 206, 37: [5] KAFALI H, IRIADAM M, OZARDALI I, et al. Letrozole-induced polycystic ovaries in the rat: a new model for cystic ovarian disease[j]. Arch Med Res, 2004, 35(2): [6] WU C, LIN F, QIU S, et al. The characterization of obese polycystic ovary syndrome rat model suitable for exercise intervention[j]. PLoS One, 204, 9(6): DOI: 0.007/s [7] WEI D, ZHANG B, SHI Y, et al. Effect of preconception impaired glucose tolerance on pregnancy outcomes in women with polycystic ovary syndrome[j]. J Clin Endocrinol Metab, 207, 02(0): [8] ROTHENBERG S S, BEVERLEY R, BARNARD E, et al. Polycystic ovary syndrome in adolescents[j]. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol, 208, 48: [9] PAIXÃO L, RAMOS R B, LAVARDA A, et al. Animal models of hyperandrogenism and ovarian morphology changes as features of polycystic ovary syndrome: a systematic review[j]. Reprod Biol Endocrinol, 207, 5(): [0] MASER R E, LENHARD M J, POHLIG R T, et al. Pre-heparin lipoprotein lipase mass as a potential mediator in the association between adiponectin and HDL-cholesterol in type 2 diabetes[j]. J Clin Transl Endocrinol, 206, 7: 7-. [] ANGELIS-PEREIRA M C, BARCELOS M F P, PEREIRA J A R, et al. Effect of different commercial fat sources on brain, liver and blood lipid profiles of ratsin growth phase[j]. Acta Cir Bras, 207, 32(2): [2] JAHAN S, MUNIR F, RAZAK S, et al. Ameliorative effects of rutin against metabolic, biochemical and hormonal disturbances in polycystic ovary syndrome in rats[j]. J Ovarian Res, 206, 9(): 86. [3] CHEN L, HU L M, WANG Y F, et al. Effect of sodium aescinate treatment on PCOS rat model with insulin resistance[j]. Bratisl Lek Listy, 207, 8(4): ( 李科编辑 ) 9

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