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1 616 第三军医大学学报,2017,39(7) htp://aammt.tmmu.edu.cn DOI: /j 低氧和牙周炎对牙周组织中 HIF 1α 和 MMP2 表达的影响 徐倩 1, 杨佳佳 1, 刘志华 1, 刘锐 1, 安建平 1, 周霞 1, 陈发明 2 1, 邓蔓菁医院野战外科研究所口腔科 1 ; 西安, 第四军医大学口腔医学院牙周科 2 ) ( 重庆, 第三军医大学大坪 [ 摘要 ] 目的研究低氧条件下 HIF 1α MMP2 在大鼠牙周炎牙周组织中的表达及其与牙周炎的相关性, 初步探讨 HIF 1α 与 MMP2 之间的关系 方法建立低氧牙周炎动物模型,40 只大鼠采用简单随机化分组法分为常氧组 常氧牙周炎组 低氧组 低氧牙周炎组, 每组 10 只, 分别检测牙龈指数 菌斑指数 探诊深度及牙槽骨吸收度 4 项牙周炎临床指标 ; 牙周组织切片 HE 染色观察牙周炎症程度 ; 免疫组化及 Westernblot 检测牙周组织中 HIF 1α MMP2 的表达 结果牙周炎各临床指标及组织切片的 HE 染色均表明低氧牙周炎组大鼠牙周组织炎症程度最重 ; 与常氧两组比较, 低氧组均促进了牙周组织中 HIF 1α MMP2 的表达 (P<0.05); 与非牙周炎组比较, 牙周炎组 HIF 1α MMP2 表达明显增加 (P< 0 05); 低氧牙周炎组 HIF 1α MMP2 表达最高 (P<0.05) 结论低氧促进了牙周炎组织中 HIF 1α MMP2 的表达, 加速了牙周炎的发展进程 [ 关键词 ] HIF 1α;MMP2; 牙周炎 ; 低氧 [ 中图法分类号 ] R362;R780.2;R [ 文献标志码 ] A EfectofperiodontitisunderhypoxiaonexpresionofHIF 1αandMMP2inrat periodontium XuQian 1, YangJiajia 1, Liu Zhihua 1, Liu Rui 1, An Jianping 1, Zhou Xia 1, Chen Faming 2, Deng Manjing 1 ( 1 DepartmentofStomatology,InstituteofSurgeryResearch,DapingHospital,ThirdMilitaryMedicalUniversity, Chongqing,400042; 2 DepartmentofPeriodontology,SchoolofStomatology,FourthMilitaryMedicalUniversity,Xi an, ShaanxiProvince,710032,China) [Abstract] Objective Toinvestigatetheexpresionofhypoxia induciblefactor 1α(HIF 1α)and matrixmetaloproteinase2(mmp2)intheperiodontaltisuesofratswithperiodontitisunderhypoxia,and exploretherelationshipofhif 1αandMMP2expresionwithperiodontitis.Methods Fortyhealthyadult ratswererandomlydividedinto4groups:normoxiagroup,normoxicperiodontitisgroup,hypoxiagroup (simulating5000m abovesealevel)andhypoxicperiodontitisgroup(n=10foreachgroup).gingival index,plaqueindex,depthofprobingandalveolarboneresorptionweremeasuredrespectively.hestaining wasusedtoobserveperiodontalinflammationintheperiodontaltisuesections.immunohistochemicalasay andwesternblotingwereemployedtodetecttheexpresionlevelsofhif 1αandMMP2intheperiodontal tisues.results ClinicalindicatorsofperiodontitisandtheresultsofHEstainingshowedthattheperiodontal inflammationofthehypoxicperiodontitisgroupwasthemostsevere.comparedwiththe2normoxicgroups, hypoxiapromotedtheexpresionofhif 1αandMMP2intheperiodontaltisuesinthe2hypoxicgroups(P< 0.05).TheexpresionofHIF 1αandMMP2wassignificantlyhigherinperiodontitisgroupsthaninthenon periodontitisgroups(p<0.05),withthehighestlevelsinthehypoxicperiodontitisgroup(p<0.05). [ 基金项目 ] 军事口腔医学国家重点实验室开放课题项目 (2014KA04) [ 通信作者 ] 邓蔓菁,E mail:iradeng@163.com [ 优先出版 ] htp://

2 htp://aammt.tmmu.edu.cn 第三军医大学学报,2017,39(7) 617 Conclusion HypoxiapromotestheexpresionlevelsofHIF 1αandMMP2inperiodontitisandacceleratesits progresion. [Keywords] hypoxia induciblefactor 1α;matrixmetaloproteinase2;periodontitis;hypoxia SupportedbytheOpeningProjectofStateKeyLaboratoryofMilitaryStomatology(2014KA04).Corespondingauthor:DengManjing,E 163 com 我国高原地域辽阔, 各海拔高度均有人居住 研究报道, 高原环境人群牙周炎患病率明显高于平原地区, 而且随着移居时间的延长, 其牙周炎患病率逐渐增高, 说明高原低氧可能是引起牙周炎患病率增加的重要原因 [1] 低氧诱导因子 1α(hypoxia induciblefactor 1α,HIF 1α) 作为低氧重要的转录因子, 通过调节多个下游基因的表达, 维持组织和细胞的氧稳态, 对低氧应答过程有重要作用 [2] 牙周炎症时, 激活宿主免疫反应, 产生的基质金属蛋白酶 (matrixmetaloproteinases, MMPs), 参与牙周组织破坏 降解过程, 在牙周炎的发生 发展过程中起重要作用 [3] 文献[4] 报道, 炎症条件下, 细胞对氧的适应性调节主要通过调控 HIF 1α 进而影响 MMP2 和 MMP9 的表达, 从而影响炎症的发展和转归 另有研究表明, 低氧可以改变 MMP 及其抑制剂 (tisueinhibitorofmetaloproteinase,timp) 的表达, 引起 MMP 及 TIMP 表达失衡, 在牙周炎的发展过程中起重要作用 [5] 而目前关于低氧是如何调控 MMP 的表达尚不清楚 低氧是否可以通过调控 HIF 1α 进而影响 MMP2 的表达, 对牙周炎的发生 发展产生影响是目前研究的难点 本研究在低氧条件下, 检测牙周炎牙周组织中 HIF 1α 及 MMP2 的表达, 探究牙周炎与 HIF 1α 和 MMP2 表达之间的关系, 初步探索 HIF 1α 对 MMP2 表达的调控作用, 为将来制定高原牙周病的防治策略奠定理论基础 1 材料与方法 1.1 材料 实验动物选择健康成年 SD 大鼠 40 只 ( 由第三军医大学大坪医院野战外科研究所实验动物中心提供 ), 牙周健康 无龋齿, 体质量 (200±20)g, 雌雄各半, 分笼饲养 主要仪器及试剂低压氧舱 ( 中国贵航集团风雷军械厂 ), 光学显微镜 (Olympus 公司 ), 体视显微镜 (Olympus 公司 ), 戊巴比妥钠 ( 中国医药上海化学试剂公司 ), 醋酸泼尼松龙 ( 浙江仙琚制药股份有限公司 ),0.20 号正畸结扎丝 ( 长沙市天天齿科器材有限公司 ),SDS PAGE 配制试剂盒 ( 碧云天生物技术研究 所 ),PVDF 膜 (Roche, 美国 ), 牛血清白蛋白 ( 碧云天生物技术研究所 ),5 蛋白上样缓冲液 ( 碧云天生物技术研究所 ),HIF 1α MMP2 一抗抗体 (Abcam, 美国 ), 山羊抗兔 山羊抗小鼠二抗抗体 ( 碧云天生物技术研究所 ) 1.2 方法 牙周炎动物模型的建立将 40 只 SD 大鼠采用简单随机化分组法分为 4 组 : 常氧组 (A 组 ) 常氧牙周炎组 (B 组 ) 低氧组 (C 组 ) 低氧牙周炎组 (D [6] 组 ), 每组 10 只, 雌雄分笼饲养 采用 Fischer 等方法建立牙周炎动物模型 :3% 戊巴比妥钠 (40mg/kg) 经腹腔注射麻醉, 麻醉起效后采用 0.20 号正畸结扎丝结扎 B D 组大鼠右上颌第一磨牙牙颈部, 使结扎丝尽量下压于龈沟内, 结扎后连续 8d 使用醋酸泼尼松龙 1.25mg/(kg d) 注射大鼠股四头肌, 根据牙周炎高糖饮食喂养, 对照组不处理 A B 组于平均海拔 308m 饲养 ;C D 组于低压氧舱模拟海拔 5000m 饲养, 23h/d,1h 开舱予以补充饲料及更换垫料 在造模及饲养过程中各组大鼠状态良好, 未发现明显异常 牙周临床指标的检测建模 8 周后检测大鼠牙龈指数 (gingivalindex,gi): 采用文献 [7] 的方法分为 4 度 ; 菌斑指数 (plaqueindex,pli): 采用 Silnes 和 Loe 法 1964 [7] 分为 4 度 ; 牙周探诊深度 (probing depth,pd): 采用 Wiliama 牙周探针测量牙周袋底至龈缘的距离 ; 牙槽骨吸收度 (alveolarbonelos,abl): 采用文献 [8] 的方法测量釉牙骨质界到牙槽嵴顶的距离 Westernblot 建模 8 周后采用 Westernblot 检测大鼠右上颌第一磨牙牙周组织 HIF 1α MMP2 蛋白表达 切取大鼠右上颌第一磨牙牙周组织, 常规蛋白提取 SDS PAGE 电泳 转膜 封闭后孵育 HIF 1α MMP2 一抗抗体, 辣根过氧化物酶标记二抗,ECL 化学显色,Bio Rad 凝胶成像系统成像 HIF 1α MMP2 图像经 QuantityOne 软件计算灰度值, 与内参灰度值比较后进行统计分析 组织学表现和免疫组化建模 8 周后处死大鼠, 截取右上颌第一磨牙区段, 放入 4% 多聚甲醛中

3 618 第三军医大学学报,2017,39(7) htp://aammt.tmmu.edu.cn 固定 24h,EDTA 脱钙液脱钙后, 常规脱水 包埋 切片,HE 染色 ; 免疫组化 (S P) 法检测大鼠牙周组织中 HIF 1α MMP2 的表达 1.3 统计学分析采用 SPSS18.0 统计软件进行统计分析, 等级资料 GI PLI 采用有序 Logistic 回归分析, 计量资料 PD ABL 及 HIF 1α MMP2 蛋白表达水平进行两因素方差分析, 数据以 x±s 珋表示, 检验水准 α= 结果 2.1 牙周临床指标情况 牙龈指数 菌斑指数频数分布比较 4 组大鼠的牙龈指数及菌斑指数, 发现低氧牙周炎组其牙龈指数菌斑指数值最高, 表明低氧牙周炎组大鼠的牙龈炎症程度最重, 菌斑量最多, 差异有统计学意义 (P< 0.05, 表 1) 各组探诊深度和牙槽骨吸收度比较与其他组比较, 低氧牙周炎组探诊深度和牙槽骨吸收度数值最高, 差异有统计学意义 (P<0.05, 图 1) 2.2 牙周组织学特征 牙周组织肉眼观察造模 8 周后肉眼观常氧组 低氧组大鼠牙周组织无明显改变, 常氧牙周炎组 低氧牙周炎组大鼠牙周组织糜烂 大量食糜附着, 触之明显出血 溢脓 ( 图 2) 牙周组织 HE 染色结果 HE 染色结果显示, 常氧组牙周组织未见明显组织病理学改变 ; 常氧牙周炎组可见沟内上皮糜烂, 牙周纤维排列紊乱, 牙槽骨轻度吸收 ; 低氧组少量炎细胞浸润 ; 低氧牙周炎组大量中性粒细胞 淋巴细胞浸润, 胶原水肿 变性, 牙周纤维紊乱 断裂 ( 图 3) 表 1 4 组大鼠牙龈指数与菌斑指数的频数分布 牙龈指数 菌斑指数 指数分级 常氧组 常氧牙周炎组 低氧组 低氧牙周炎组 常氧组 常氧牙周炎组 低氧组 低氧牙周炎组 a a bc bc a:p<0.05, 与常氧组比较 ;b:p<0.05, 与低氧组比较 ;c:p<0.05, 与常氧牙周炎组比较 1: 常氧组 ;2: 常氧牙周炎组 ;3: 低氧组 ;4: 低氧牙周炎组 a:p<0.05, 与常氧组比较 ;b:p<0.05, 与低氧组比较 ;c:p<0.05, 与常氧牙周炎组比较 图 1 4 组大鼠牙周探诊深度 (A) 及牙槽骨吸收度 (B) 比较 A: 常氧组 ;B: 常氧牙周炎组 ;C: 低氧组 ;D: 低氧牙周炎组图 2 各组大鼠牙周组织肉眼观察

4 h p a a mm mmu e d u c n 619 第三军医大学学报 2 1 7 3 9 7 # $! " A 常氧组 B 常氧牙周炎组 C 低氧组 D 低氧牙周炎组 图 3 各组大鼠牙周组织 HE染色观察 2 3 牙周组织中 HI 的棕黄色颗粒 图 4 2 3 1 免 疫 组 化 检 测 各 组 大 鼠 牙 周 组 织 HI 1α 2 3 2 We s e r nbl o 检测各组大鼠牙周组织 HI 1α MMP2的表达 MMP2蛋白的表达 低氧条件下 HI 低氧条件下 HI 1α MMP2的 明显增加 牙周炎症时 HI 增 加 表达明显增加 牙周炎症时 HI 增 显微镜下观察大鼠牙周组织中 HI 加 低氧牙 周 炎 组 HI 1α MMP2表 达 量 最 高 P 阳性染色呈棕黄色 低氧牙周炎组大鼠牙周组织中 5 图 5 HI 1α MMP2表达量最高 切片组织中可观察到明显!"$%&# '"# '"(%&# $%&"!#!"# ''() 图 4 免疫组化检测各组大鼠牙周组织中 HI $ & (!"#!$"4))*& *+,-./ &2', (!"#!$"!%&!$' "! $23 #$% #$&'(% )$% )$&'(% S P $2' - - '23 ))*&!+,!$'("! #!-./01!,(!$'("! ' $!"#!$" A We s e r nb l o 检测结果 1 常氧组 2 常氧牙周炎组 3 低氧组 4 低氧牙周炎组 B 半定量分析结果 5 与常氧组比较 b P 5 与低氧组比较 c P 5 与常氧牙周炎组比较 图 5 HI 1α MMP2蛋白表达水平 % ))*& a P

5 620 第三军医大学学报,2017,39(7) htp://aammt.tmmu.edu.cn 3 讨论 牙周病是发生在牙周支持组织的一种复杂的炎症感染性疾病, 主要由革兰阴性菌堆积在牙齿表面, 激活宿主的促炎介质, 导致牙周组织的破坏, 最终导致失牙 [9] 目前牙周炎的治疗方法局限, 牙周炎失牙率高, 促使我们探索新的治疗方法, 为牙周炎的治疗提供新思路 研究表明, 厌氧菌 牙合创伤 吸烟以及不良口腔卫生习惯均可加重牙周炎的发展进程, 而牙周炎不仅对口腔健康有严重的影响, 同时影响许多系统性疾病的发生和发展 [10] [6] 本研究利用低氧 Fisher 等的方法建立牙周炎动物模型, 检测低氧及炎症条件下, 牙周组织的病理改变及 HIF 1α MMP2 的表达情况, 发现低氧牙周炎组大鼠牙周炎症程度最重, 牙周组织明显充血水肿, 大量浆细胞 淋巴细胞浸润, 牙周纤维变性 断裂 ; 此外, 低氧及炎症均促进了 HIF 1α MMP2 的表达, 且在低氧合并牙周炎条件下,HIF 1α MMP2 表达量最高, 提示低氧可能通过 HIF 1α 通路调控 MMP2 的表达, 从而加重牙周炎症程度 ; 在常氧条件下, 牙周炎组 HIF 1α MMP2 表达量也增加, 说明牙周炎症同时也可增加 HIF 1α MMP2 表达 HIF 1 是低氧重要的转录调控因子, 由 α 和 β 两个亚基组成, 其中 β 亚基为结构亚基, 在常氧及低氧条件下均稳定表达, 而 α 亚基为功能亚基, 在常氧条件下其通过泛素化, 被蛋白酶水解 ; 而在低氧条件下, 这一进程被抑制,α 亚基与 β 亚基结合, 进而发挥功能作用 [11-12] [13] Li 等研究发现, 慢性牙周炎可能使牙周成纤维细胞中 HIF 1α 转录激活, 进一步加重牙周炎的发展 此外,HIF 1α 可诱导牙周膜细胞的凋亡和自噬性细胞死亡 [14] 这提示通过调控 HIF 1α 的表达, 可能对牙周炎发生 发展有重要作用, 为牙周炎的治疗提供新的思路 炎症细胞因子如 MMP 在维持细胞炎症状态有重要作用, 对于炎症相关的增殖及组织破坏性疾病有重要意义 [15] MMP2 作为基质金属蛋白酶家族的重要成员, 是一种锌依赖的蛋白酶类, 是胚胎发育 组织重建等过程的关键作用因子, 其对于细胞外基质的合成和降解发挥重要作用 牙周炎症时, 其合成和降解紊乱可能是导致牙周炎症程度加重的重要原因 [3,16] 文献 [17] 报道,MMP2 的表达可能与牙周炎症程度呈正相关 研究发现, 低氧时细胞可能通过 HIF 1α 调控 MMP2 表达, 在血管生成 细胞迁移及伤口愈合等多种 病理生理过程中发挥重要作用 [18] 尽管目前对于 HIF 1α MMP2 的研究较多, 而对于低氧 炎症共同作用下牙周组织发生的病理改变仍不清楚, 低氧是否通过 HIF 1α 影响 MMP2 的表达, 炎症是否可以引起局部组织处于低氧状态, 进而调控 MMP2, 加重牙周炎症程度, 仍是目前研究的重点及难点 本研究利用大鼠低氧牙周炎动物模型, 研究低氧及炎症对牙周组织的影响, 发现低氧及炎症均可促进 HIF 1α MMP2 的表达, 且 HIF 1α 与 MMP2 的表达呈一致性, 说明低氧可能通过 HIF 1α 信号通路促进 MMP2 的表达, 从而加重牙周炎症程度 ; 另一方面, 炎症可能使牙周组织局部处于低氧状态, 并激活 HIF 1α 信号通路, 影响下游靶基因的表达, 进而加重牙周炎症程度 然而, 目前关于 HIF 1α 及 MMP2 的关系仍不清楚, 促使我们进一步探讨 HIF 1α 与 MMP2 之间的关系, 为将来制定高原牙周病的防治策略奠定理论基础 参考文献 : [1] 冯秀娟. 高海拔地区牙周疾病就诊原因分析 [J]. 高原医学杂志,2002,12(2):26-27.DOI: /j.isn FengXJ.Analysisofthecausesofperiodontaldiseasesin highaltitudearea[j].journalofhighaltitudemedicine, 2002,12(2):26-27.DOI: /j.isn [2] AbdolahiH,HarisLJ,ZhangP,etal.Theroleofhypoxia instemceldiferentiationandtherapeutics[j].jsurgres, 2011,165(1): DOI: /j.js [3] CamposK,GomesCC,FariasLC,etal.DNAMethylation ofmmp9isasociatedwithhighlevelsofmmp 9Mesenger RNAinPeriapicalInflammatoryLesions[J].JEndod,2016, 42(1): DOI: /j.joen [4]BaeW J,ShinM R,KangSK,etal.HIF 2InhibitionSu presesinflammatoryresponsesandosteoclasticdiferentia tioninhumanperiodontalligamentcels[j].jcelbio chem,2015,116(7): doi: /jcb [5] YuXJ,XiaoCJ,DuYM,etal.Efectofhypoxiaonthe expresionofrankl/opg inhumanperiodontalligament celsinvitro[j].intjclinexppathol,2015,8(10): [6] FischerRG,KlingeB.Clinicalandhistologicalevaluationof ligature inducedperiodontitisinthedomesticferet[j].j

6 htp://aammt.tmmu.edu.cn 第三军医大学学报,2017,39(7) 621 ClinPeriodontol,1994,21(4): DOI: / j x.1994.tb00311.x [7] LoeH,SilnesJ.PeriodontalDiseaseinPregnancy:Preva lenceandseverity[j].actaodontolscand,1963,21: doi: / [8]LlavanerasA,RamamurthyNS,HeikkilP,etal.Acombi nationofachemicalymodifieddoxycyclineandabisphospho nate synergisticaly inhibits endotoxin induced periodontal breakdowninrats[j].jperiodontol,2001,72(8): doi: /jop [9] G lzl,memmerts,rath DeschnerB,etal.Hypoxiaand P.gingivalissynergisticalyinduceHIF 1andNF κbactiva tioninpdlcelsandperiodontaldiseases[j].mediatorsin flamm,2015,2015: doi: /2015/ [10] LiK,DongSG,ZhangH X,etal.ExpresionofRUNX2 andmdm21inratswithperiodontitisunderchronicintermit tenthypoxia[j].asianpacjtropmed,2016,9(8): doi: /j.apjtm [11]SchipaniE,MaesC,CarmelietG,etal.Regulationofoste ogenesis angiogenesiscouplingbyhifsandvegf[j].j BoneMinerRes,2009,24(8): DOI: /jbmr [12] BulenJW,TchernyshyovI,HolewinskiRJ,etal.Protein kinasea dependentphosphorylationstimulatesthetranscrip tionalactivityofhypoxia induciblefactor1[j].scisignal, 2016,9(430):ra56.DOI: /scisignal.aaf0583 [13]LiJP,LiFY,XuA,etal.Lipopolysaccharideandhypox ia inducedhif 1 activationinhumangingivalfibroblasts [J].JPeriodontol,2012,83(6): DOI: /jop [14] SongZC,ZhouW,ShuR,etal.Hypoxiainducesapoptosis andautophagicceldeathinhumanperiodontalligamentcels throughhif 1αpathway[J].CelProlif,2012,45(3): DOI: /j x [15] ThorntonRD,LaneP,BorghaeiRC,etal.Interleukin1 induceshypoxia induciblefactor1inhumangingivaland synovialfibroblasts[j].biochem J,2000,350(Pt1): DOI: / : [16] TangL,PeiH,YangY,etal.Theinhibitionofcalpains amelioratesvascularrestenosisthroughmmp2/tgf β1path way[j].scirep,2016,6:29975.doi: /srep29975 [17]EbersoleJL,KirakoduSS,NovakM J,etal.Transcrip tomeanalysisofbcelimmunefunctionsinperiodontitis: MucosalTisueResponsestotheOralMicrobiomeinAging [J].FrontImmunol,2016,7:272.DOI: /fimmu [18]DeppeJ,PoppT,EgeaV,etal.Impairmentofhypoxia in ducedhif 1αsignalinginkeratinocytesandfibroblastsby sulfurmustardiscounteractedbyaselectivephd 2inhibitor [J].ArchToxicol,2016,90(5): DOI: /s y ( 收稿 : ; 修回 : ) ( 编辑张维 )

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