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1 2244 中国病理生理杂志 ChineseJournalofPathophysiology 2012,28(12): [ 文章编号 ] (2012) 转录因子 GATA-1 与人巨细胞病毒 UL111A 基因 5 上游序列结合的实验研究 田可港 1,2#, 浮苗 1, 高艳 1, 彭颖 2, 李祥 2, 郑晓群 1, 徐志伟 1, 宋建华 3 2, 吕建新 ( 1 温州医学院附属第二医院实验诊断中心, 浙江温州 ; 2 温州医学院浙江省医学遗传学重点实验室, 浙江温州 ; 3 俄克拉荷马医学研究中心, 美国俄克拉荷马 73104) [ 摘要 ] 目的 : 利用人巨细胞病毒 (humancytomegalovirus,hcmv) 潜伏及再激活感染 THP-1 细胞模型, 研究细胞核内转录因子 GATA-1 与 HCMVUL111A 基因 5 上游 DNA 序列的相互作用 方法 : 采用免疫印迹 (West ernbloting) 技术定量分析 HCMV 潜伏及再激活感染时细胞核内转录因子 GATA-1 的表达 ; 通过 MATCH 工具软件分析 UL111A 基因 5 上游 DNA 序列, 发现存在着 11 个 GATA-1 的结合位点, 针对这 11 个 GATA-1 结合位点 DNA 序列设计 9 对引物, 采用染色质免疫沉淀 (chromatinimmunoprecipitation,chip) 及实时荧光定量 PCR 技术分析转录因子 GATA-1 与 UL111A 基因 5 上游 DNA 序列的结合情况 结果 :HCMV 潜伏感染时 UL111A 基因未表达 cmvil-10, 激活感染时表达 cmvil-10, 潜伏感染时转录因子 GATA-1 的相对表达量高于激活感染 ; 以 GATA -1 抗体特异性结合的 DNA 片段为模板,9 对引物中共有 5 对扩增出目的条带 ;HCMV 潜伏感染组和激活感染组 5 个位点转录因子 GATA-1 结合率分别为 :-4 00± ± ± ± ± 0 11 和 -1 13± ± ± ±0 03 和 -0 14±0 01, 差异均有统计学意义 (P< 0 05) 结论:HCMV 感染时转录因子 GATA-1 可能通过与 UL111A 基因 5 上游序列 1119(-3760) 位点 107 (-4772) 位点 609(-4270) 位点 849(-4030) 位点和 2047(-2832) 位点结合, 调节 UL111A 基因的转录, 参与 HCMV 潜伏与再激活感染的过程 [ 关键词 ] 转录因子 GATA-1;HCMV 潜伏感染 ;UL111A [ 中图分类号 ] R373.9 [ 文献标志码 ] A doi: /j.isn BindingoftranscriptionfactorGATA-1to5 upstream sequenceofhu mancytomegalovirusul111agene TIANKe-gang 1,2,FU Miao 1,GAO Yan 1,PENG Ying 2,LIXiang 2,ZHENG Xiao- qun 1,XUZhi-wei 1,SONGJian-hua 3,L Jian-xin 2 ( 1 LaboratoryDiagnosisCenter,theSecondAfiliatedHospitalofWenzhouMedicalColege,Wenzhou325027,China; 2 ZhejiangProvincialKeyLaboratoryofMedicalGenetics,WenzhouMedicalColege,Wenzhou325035,China; 3 Oklahoma MedicalResearchFoundation,Oklahoma73104,USA. zhengxiaoqun@gmail.com) [ABSTRACT] AIM:ToinvestigatetheinteractionsbetweentranscriptionfactorGATA-1and5 upstreamdna sequenceofhumancytomegalovirus(hcmv)ul111ageneusingestablishedhcmvlatentandreactivatedinfectionmod els.methods:theexpresionoftranscriptionfactorgata-1intheprocesofhcmvlatentandreactivatedinfections wasdeterminedbywesternbloting.sequenceanalysisrevealedthepresenceof11consensusgata-1bindingsiteson the5 upstreamdnasequenceoful111ageneusingmatchtoolsoftware.moreover,9pairsofprimersweredesignedfor thecorednasequenceofthe11bindingsites.thebindingsofgata-1with5 upstreamdnasequenceoful111agene inhcmvlatentandreactivatedinfectionswereasesedbyreal-timefluorescencequantitativepcrandchromatinimmu noprecipitation(chip).results:ul111agenedidnotexprescmvil-10inlatentinfectionbutdidinreactivatedin fection.therelativeexpresionoftranscriptionfactorgata-1wasmoreinhcmvlatentinfectionthanthatinreactivated infection.fivepairsofprimerswereusedtoamplifythetargetbandwhenusingthegata-1antibody-specificbinding [ 收稿日期 ] [ 修回日期 ] [ 基金项目 ] 国家自然科学基金资助项目 (No ); 温州市对外合作交流科技计划资助项目 (No.H ) 通迅作者 Tel: ; zhengxiaoqun@gmail.com # 现工作单位 : 宁波市鄞州人民医院

2 2245 DNAfragmentsastemplates.ThebindingratesofGATA-1of5primersinHCMVlatentinfectiongroupwere-4.00± 0 26,-4.50±0.33,-4.41±0.21,-3.61±0.20and-3.47±0.11,whilethatinreactivatedinfectiongroupwere -1.13±0.07,-0.63±0.05, -1.10±0.07, -0.24±0.03and -0.14±0.01(P<0.05).CONCLUSION: TranscriptionfactorGATA-1mediatestheUL111AtranscriptionwhichisinvolvedinHCMVlatentandreactivatedinfec tionsbybindingthehcmvul111agene5 upstreamsequence107(-4772)site,609(-4270)site,849(-4030) site,1119(-3760)siteand2047(-2832)siteduringreactivatedinfection. [KEYWORDS] TranscriptionfactorGATA-1;HCMVlatentinfection;UL111A 人巨细胞病毒 (humancytomegalovirus,hcmv) 是疱疹病毒科属的 DNA 病毒, 具有严格的种属特异性 1960 年,Weler 等鉴于病毒感染细胞后所呈现细胞明显增大的特征及该病毒在巨细胞包涵体病中的作用, 将该病毒命名为巨细胞病毒 1973 年, 国际病毒命名委员会 (ICNV) 疱疹病毒组将此病毒正式命名为人类疱疹病毒 5 型 (humanherpesvirus5, HHV-5) 在免疫正常个体,HCMV 的初发感染常无症状, 当宿主免疫功能不全或免疫功能减弱时, HCMV 的原发感染或潜伏再激活感染会引起严重的乃至威胁生命的疾病 [1-2] cmvil-10 是 HCMV UL111A 基因编码的由 175 个氨基酸组成的蛋白质, 功能与人 IL-10(hIL-10) 类似 既往研究表明, HCMV 潜伏感染时,UL111A 基因不表达 cmvil-10, 激活感染时表达 cmvil-10 [3-6] 因此我们推测, cmvil-10 可能参与 HCMV 潜伏及再激活感染的过程 人转录因子 GATA-1 由 413 个氨基酸组成, 含 2 个锌指结构, 即 C- 锌指和 N- 锌指, 可通过与基因启动子中的 (A/T)GATA(A/G) 模序结合激活基因转录 本研究通过染色质免疫沉淀 (chromatinimmu noprecipitation,chip) 方法研究转录因子 GATA-1 与 UL111A 基因 5 上游 DNA 序列的相互作用, 探讨二者在 HCMV 潜伏及再激活感染中可能发挥的作用 1 主要材料 材料和方法 HCMVAD169 株购自中国典型培养物保藏中心, 人白血病单核细胞 (THP-1 细胞 ) 购于中科院上海细胞库,GATA-1 兔抗人抗体购于 Abcam,TaKa Ra 公司合成 PCR 引物,ChIP 试剂盒购自 Upstate, 细胞核蛋白提取试剂盒购自碧云天生物技术研究所 2 HCMV 潜伏感染和激活感染细胞模型建立及分组 2.1 细胞感染模型建立 THP-1 细胞于 Gibco 常规 RPMI-1640 培养液,10% 特级胎牛血清, U/L 青霉素,100mg/L 链霉素, 置于 37 5%CO 2 培养箱中培养 HCMVAD169 株以感染复数 (multi plicityofinfection,moi)=1 感染 THP-1 细胞 ( /L) 100μg/L12- 肉豆 酸 -13- 乙酸佛波酯 (phorbol12-myristate13-acetate,pma) 刺激 HC MV 潜伏感染的 THP-1 细胞, 细胞置于 37 5% CO 2 饱和湿度培养箱中培养 12h 24h 48h 72h 和 96h 后, 分别提取细胞总 RNA,RT-PCR 检测 HC MVUL123 基因和 UL82 基因的表达 UL123 基因表达调节蛋白 IE, 设计上游引物序列为 5 -CAAGAG AAAGATGGACCCTG-3, 下游引物序列为 5 - CGAGTTCTGCCAGGACATC-3, 目的扩增片段为 242bp;UL82 基因表达被膜蛋白 pp65, 设计上游引物序列为 5 -TGCCCTGGATGCGATACTG-3, 下游序列引物为 5 -AGGACCTGACGATGACCCG-3, 目的扩增片段为 378bp, 委托上海捷瑞生物工程有限公司合成 PCR 扩增条件 :94 预变性 5min,94 30s,55 30s,72 30s,35 个循环后 min, 扩增产物用 1 5% 的琼脂糖凝胶进行电泳 同时, 实时荧光定量 PCR 检测细胞内 HCMVDNA 载量, 透射电镜观察 THP-1 细胞内病毒颗粒 根据上述指标, 综合判断病毒感染状态 2.2 实验分组 HCMVAD169 株以 MOI=1 感染 THP-1 细胞 ( /L),37 5%CO 2 培养箱中培养 96h 后作为潜伏感染组 ;100μg/LPMA 刺激 HCMV 潜伏感染的 THP-1 细胞,37 5%CO 2 培养箱中培养 96h 后作为激活感染组 ; 对照组加入相同量的 DMEM 培养液,37 5%CO 2 培养箱中培养 96h 3 RT-PCR 分析 HCMV 潜伏及再激活感染时 cmvil-10 的表达 Trizol 法提取 HCMV 潜伏及再激活感染 96h 后细胞总 RNA, 并逆转录为 cdna 应用 PrimerPremi er5 0 软件设计 cmvil-10 及内参照 GAPDH 的 PCR 引物,cmvIL-10 上游引物 5 -GGGGAAT TCATGCTGTCGGTGATGGTCT-3, 下游引物 5 - ACATTGCCGCATGTCTTTG-3, 目的扩增片段为 381 bp;gapdh 上游引物 5 -GAGTCAACGGATTTG GTCGT-3, 下游引物 5 -GAGTCAACGGATTTG GTCGT-3, 目的扩增片段为 185bp PCR 扩增条件 :94 预变性 5min,94 30s,56 30s,72 30s,35 个循环后 72 10min, 扩增产物用 1.5% 的琼脂糖凝胶进行电泳

3 Westernbloting 检测转录因子 GATA-1 的表达 利用细胞核蛋白提取试剂盒提取对照组,HCMV 潜伏感染组和激活感染组核蛋白, 然后进行 Western bloting 检测, 利用 ImageJ 软件分析条带的灰度值, 目的条带与内参照条带灰度值的比值表示 GATA-1 的相对表达量 5 HCMVUL111A5 上游序列 GATA-1 结合部位的生物信息学预测分析 应用 TRANSFAC 数据库中的 MATCH 工具对 HCMVUL111A5 上游序列转录因子 GATA-1 结合位点进行预测, 采用 TRANSFACProfesional9.4 库中的单核苷酸加权模型集对每个位点进行打分, 通过每个位点所得分数 (0~1) 来确定转录因子结合情况, 从中选出转录因子 GATA-1 对应的结合位点, 见表 1, 并设计合成相应的 ChIP-PCR 引物, 见表 2 GATA-1 结合序列预测分析和引物设计时选用 HCMVAD169 株全基因序列 RefSeqFJ , HCMVUL111A5 上游序列碱基起止位为 ~ ChIP-PCR 试验 采用 Upstate 公司的 ChIP 试剂盒处理 HCMV 潜伏与激活感染组细胞, 操作步骤如下 : 加入 37% 甲醛体外交联和裂解细胞 DNA, 超声处理 ( 功率 500W, 超声 7s, 停 10s, 重复 3 次 )DNA, 使交联的 DNA/ 蛋白质共沉淀, 洗脱 DNA/ 蛋白质复合物, 解交联, 纯化 DNA 在交联的 DNA/ 蛋白质共沉淀过程中, 分为 input 和 IP 组,input 组不加入 GATA-1 抗体,IP 组加入 GATA-1 抗体 严格按照 ChIP 试剂盒说明书操作 表 1 转录因子 GATA-1 结合位点的预测结果 Table1. Thepredictedresultsofbindingsitesoftranscription factorgata-1 Startinglocation Score Sequenceofbindingsite CTATAGATAGCGGC GAGGATGCCT AAGACGATTAACAA CTATCGATAGGCGT AGGCCTATCTTCGT TATTATCTCT ATCACTATCTATGT GTTTTAATCTACCG ATTATGATACGGTC GGGTAGATTATTAT TTTTATCTAT TATTATCTGT CTGTTGATTAGGAG 表 2 GATA-1 的预测结合位点设计的引物 Table2. Theprimersbasedonthepredictedbindingsitesof transcriptionfactorgata-1 Primer Sequence(5-3 ) Product Predictablesite GATA-12F CCGAGCAGAAAGTGATGTGG 202bp 1119 GATA-12R TATCGATAGGTTTCAATTGTGTCT GATA-21F AACGTGACTTTATTGAGCAGG 208bp 107 GATA-21R AAGACGCTGACCCGATAAGTA GATA-22F CTGATCCTATCCGTGACTGCG 250bp 609 GATA-22R CCAAGCCTAGCTGCTCATTCG GATA-23F GTCATTACTTGTTTTCCAGGG 245bp 849 GATA-23R ACCACATCACTTTCTGCTCGG GATA-24F CGAGGTCTTGCTTCGTTTTCTT 246bp 1490,1572 GATA-24R TCTCGTCAGGGAAATACAAG GATA-25F ACCCTTTTAGGTATTTTGCG 184bp 1868 GATA-25R GTTGGGAGGTAGCTTCGTC GATA-26F CCCGCTAAGGACTTACCAAACT 198bp 2047 GATA-26R CTCTTCGCTGTCAACTGATTAG GATA-27F GGACGAAGGAGAAGATGATGGG 194bp 3243 GATA-27R CACAGGCTGACCTTTGAAAACC GATA-28F TCTCCCAATGGCTAGGCGTTCT 221bp 3706,3712 GATA-28R ACCTCACTTAGGATCGATTTCG 将各组得到的 DNA 产物分别加入上述引物进行 PCR 扩增, 反应体系如下 :10 ExTaqbufer2.5 μl,2.5mmol/ldntp2.5μl,25mmol/lmgcl 2 2μL,20μmol/L 上 下游引物各 0.5μL,DNA2μL, 5U/μLTaq 酶 0.125μL, 加 ddh 2 O 至 25μL 反应条件如下 :94 预变性 5min, 继而 94 30s,52 30s,72 30s,35 个循环后 72 10min, 扩增产物用 1.5% 的琼脂糖凝胶进行电泳 实时荧光定量 PCR 反应体系如下 :SYBRPremixExTaq TM (2 )10 μl,20μmol/l 上 下游引物 0.4μL,DNA2μL, ROXReferenceDye0.2μL, 加 ddh 2 O 至 20μL 反应条件 :94 预变性 5min, 继而 94 30s,52 30s,72 30s,35 个循环后 72 10min,AB7500 荧光定量 PCR 仪检测 以 -ΔCt 值来表示 HCMV 潜伏与激活感染时转录因子 GATA-1 与 UL111A5 上游各位点的结合率,ΔCt 为 IP 组与 input 组的 Ct 差值 (Ct IP -Ct input ) 7 统计学处理 数据采用 SPSS18.0 统计学软件进行分析, 计量资料以均数 ± 标准差 ( x±s) 珋表示, 两组间均数比较采用两样本 t 检验, 多组数据采用方差分析, 以 P< 0.05 为差异有统计学意义

4 2247 结 果 1 HCMV 潜伏及再激活感染细胞模型的建立 1.1 HCMV 潜伏感染细胞模型的建立 HCMV AD169 株感染 THP-1 细胞 96h 后, 透射电镜观察发现细胞内有病毒颗粒, 见图 1 HCMVUL123 基因 PCR 扩增片段为 242bp, 表达量随着时间的增加逐渐减少 ; 未检测到 HCMVUL82 基因的表达, 见图 2 Figure4. TheexpresionofHCMV UL123andUL82genesin HCMV-reactivatedly-infectedcels.M:100 bp DNAladdermarker. 图 4 HCMV 再激活感染 THP-1 细胞 及 12h 后 UL123 和 UL82 基因表达 2 HCMV 潜伏与再激活感染时 UL111A 的表达 HCMV 潜伏感染时,RT-PCR 未扩增出 UL111A 基因表达的 cmvil-10, 再激活感染时表达 cmvil- 10, 扩增片段为 381bp, 见图 5 Figure1. ElectronmicrographsofHCMV-infectedTHP-1 cels( 50000).Thearowsindicatetheviralparti cles. 图 1 HCMV 感染 THP-1 细胞电镜图 Figure2. TheexpresionofHCMV UL82andUL123genesin HCMV-infectedTHP-1cels.M:DL2000marker. 图 2 HCMV 感染 THP-1 细胞 及 12h 后 UL123 和 UL82 基因的表达 1.2 HCMV 再激活感染细胞模型的建立 PMA 刺激 HCMV 潜伏感染细胞 96h 后, 悬浮生长的 THP- 1 细胞转为贴壁生长, 电镜观察细胞内出现较多病毒颗粒, 见图 3 HCMVUL123 基因表达量先随着时间的增加而增加, 后逐渐减少,UL82 基因 PCR 扩增片段为 378bp,96h 时检测到表达, 见图 4 Figure3.ElectronmicrographofanHCMV-latently-infected celstimulatedbypma( 30000).Thearowsindi catetheviralparticles. 图 3 PMA 刺激 HCMV 潜伏感染细胞电镜图 Figure5.RT-PCR amplificationresultsofcmvil-10.1,3: HCMV reactivatedandlatentinfection,respectively; 2,4:GAPDH;M:100bpDNAladdermarker 图 5 cmvil-10mrnart-pcr 扩增结果 3 Westernbloting 分析 HCMV 潜伏及再激活感染时转录因子 GATA-1 的表达 HCMV 潜伏及再激活感染后, 分别提取感染的细胞核内蛋白进行 Westernbloting 检测,HCMV 潜伏与激活感染后均检测到转录因子 GATA-1 表达, 见图 6 同时,HCMV 潜伏感染组转录因子 GATA- 1 的相对表达量 (1.13±0.08) 高于激活感染组 (0 51±0 11), 差异有统计学意义 (P<0.05) 4 HCMV 潜伏及再激活感染时 ChIP 结果分析以 input 组和 IP 组 DNA 为模板, 用预测的结合位点所设计的 9 对引物进行 PCR 扩增, 结果显示 5 对引物 (GATA-12 引物 GATA-21 引物 GATA- 22 引物 GATA-23 引物和 GATA-26 引物 ) 均扩增出目的条带, 扩增片段分别为 202bp 208bp 250 bp 245bp 和 198bp, 见图 7 8, 其对应的转录因子 GATA-1 结合位点分别是 1119(-3760) 位点 107 (-4772) 位点 609(-4270) 位点 849(-4030) 位点和 2047(-2832) 位点, 见图 9 前面位点为分析获得, 括号内位点为根据规定算得

5 2248 用上述 5 对引物进行荧光定量 PCR, 结果显示 HCMV 再激活感染组转录因子 GATA-1 与 UL111A 基因 5 端上游序列 5 个位点的结合率 (-1.13± ± ± ±0.03 和 -0.14±0.01) 均高于潜伏感染组 (-4.00± ± ± ±0.20 和 -3.47±0.11) 经两样本 t 检验,5 个结合位点转录因子 GATA-1 的结合率差异均有统计学意义 (P<0.05), 见图 10 Figure6.TheexpresionoftranscriptionfactorGATA-1inHC MVlatentandreactivatedinfection.1:controlgroup; 2:HCMVlatentinfectiongroup;3:HCMVreactivated infectiongroup. x±s.n=3. 珋 P<0.05vsHCMVla tentinfectiongroup. 图 6 Westernbloting 分析 HCMV 潜伏及再激活感染时转录因子 GATA-1 表达 讨论目前认为, 单核细胞和髓系早期细胞是 HCMV 潜伏感染的主要细胞, 一旦分化为巨噬细胞或树突状细胞, 病毒的早期基因表达就会被激活,HCMV 可由潜伏感染向再激活转化 [7-10] 然而,HCMV 病毒由潜伏状态向再激活转化的机制还缺乏更深入的研 Figure7.PCRproductelectrophoresisofHCMVlatentinfectionafterChIP.AandBwasinputgroupandantibodytreatmentgroup,re spectively.1:negativecontrolgroup;2~6:amplifiedproductsof1119(-3760)site,107(-4772)site,609(-4270)site, 849(-4030)siteand2047(-2832)site,respectively;M:100bpDNAladdermarker. 图 7 HCMV 潜伏感染时 ChIP 处理后 PCR 产物电泳图 Figure8.PCRproductelectrophoresisofHCMVreactivatedinfectionafterChIP.AandBwasinputgroupandantibodytreatment group,respectively.1:negativecontrolgroup;2~6:amplifiedproductsof1119(-3760)site,107(-4772)site,609(- 4270)site,849(-4030)siteand2047(-2832)site,respectively;M:100bpDNAladdermarker. 图 8 HCMV 激活感染时 ChIP 处理后 PCR 产物电泳图 Figure9.ThebindingsitesoftranscriptionfactorGATA-1on5 upstreamdnasequenceoful111agene. 图 9 HCMVUL111A 基因 5 端上游核酸序列转录因子 GATA-1 的结合位点

6 2249 Figure10.ComparisonoftranscriptionfactorGATA-1binding ratesinlatentandreactivatedinfection.1~5:1119 (-3760)site,107(-4772)site,609(-4270)site, 849(-4030)siteand2047(-2832)site,respective ly. x±s.n=3. 珋 P<0.05vsHCMVlatentinfection. 图 10 HCMV 潜伏及再激活感染时转录因子 GATA-1 结合率的比较 究 HCMV 具有高度种属特异性, 不能用动物模型对其直接进行研究 ; 在健康携带者的外周血和骨髓细胞中, 被潜伏感染的细胞所占的比例很少, 仅为 % ~0.010%, 且在每个被潜伏感染的细胞中约含有 2~13 个病毒基因组 DNA, 难以满足当前研究的需求 虽然有很多针对 CMV 的模型, 由于 HCMV 具有高度的种属特异性, 针对 CMV 的模型不能用于 HCMV 的研究 因此, 我们参考国内外的研究建立了 HCMV 潜伏及再激活感染的 THP-1 细胞模型 HCMV 潜伏感染时,UL111A 基因不表达 cmvil -10, 激活感染时表达 cmvil-10 我们对 UL111A 5 端上游约 5.0kb 的序列进行了生物信息学分析, 发现其中交错分布着转录因子 GATA-1 的结合位点, 由此推测转录因子 GATA-1 可能参与了 HCMV 潜伏及再激活感染过程 本研究中, 我们证实了 HCMV 潜伏感染时,UL111A 基因不表达 cmvil-10, 激活感染时表达 同时,Westernbloting 分析结果表明 HCMV 潜伏感染时转录因子 GATA-1 的表达量高于再激活感染时, 这可能与 GATA-1 抑制单核细胞的分化有关 [11] 染色质免疫沉淀是体内研究蛋白质与 DNA 相互作用强有力的方法, 此方法不需要分别提取核酸或蛋白, 在天然的染色质环境下进行, 基本保持了二者在细胞内的真实结合状态 本实验中, 通过 GATA-1 抗体, 特异性将超声打断的 DNA-GATA -1 复合物小片段免疫沉淀, 并纯化解交联, 获得 GATA-1 结合的 DNA 片段, 对纯化获得的 DNA 片段进行 PCR 扩增鉴定 结果表明, 转录因子 GATA -1 可与 UL111A5 端上游序列 107(-4772) 位点 609(-4270) 位点 849(-4030) 位点 1119 (-3760) 位点和 2047(-2832) 位点共 5 个位点结合, 且激活感染时转录因子 GATA-1 的结合率高于 潜伏感染 我们推测 HCMV 激活感染后转录因子 GATA-1 可能通过与 UL111A 基因 5 上游序列结合位点的结合, 启动 cmvil-10 的转录, 参与 HCMV 再激活感染的过程 本文研究结果仅是初步的探索性结果, 应做进一步的验证性研究, 如用报告基因技术等 更深入地研究 GATA-1 如何与 UL111A 基因 5 上游序列潜在结合位点作用, 不同位点的缺失是否影响 GATA-1 的调控功能, 哪个位点是 GATA-1 的关键结合区域, 是否存在其它的核转录因子或共调控蛋白作用这些区域? 相信随着这些问题的逐步阐明, 将有利于更全面地理解在转录水平 HCMV 潜伏及再激活感染的调控机制 [ 参考文献 ] [1] RawlinsonW,ScotG.Cytomegalovirus:acommonvirus causingseriousdisease[j].austfam Physician,2003, 32(10): [2] 季育华. 移植领域中人巨细胞病毒感染的关注点与对策 [J]. 中华器官移植杂志,2008,29(3): [3] JenkinsC,GarciaW,AbendrothA,etal.Expresionof ahumancytomegaloviruslatency-asociatedhomologof interleukin-10duringtheproductivephaseofinfection [J].Virology,2008,370(2): [4] ChangWL,BaumgarthN,YuD,etal.Humancytomega lovirus-encodedinterleukin-10homologinhibitsmatura tionofdendriticcelsandalterstheirfunctionality[j].j Virol,2004,78(16): [5] JenkinsC,GarcialW,GodwinMJ,etal.Immunomodula torypropertiesofaviralhomologofhumaninterleukin-10 expresedbyhumancytomegalovirusduringthelatentphase ofinfection[j].jvirol,2008,82(7): [6] SpencerJV,CadaoasJ,CastiloPR,etal.Stimulationof BlymphocytesbycmvIL-10butnotLAcmvIL-10[J]. Virology,2008,374(1): [7] SinclairJ,SisonsP.Latencyandreactivationofhumancyto megalovirus[j].jgenvirol,2006,87(pt7): [8] IoudinkovaE,ArcangeletiMC,RynditchA,etal.Con trolofhumancytomegalovirusgeneexpresionbydiferen tialhistonemodificationsduringlyticandlatentinfectionof amonocyticcelline[j].gene,2006,384(1): [9] ReevesM,MurphyJ,GreavesR,etal.Autorepresionof thehumancytomegalovirusmajorimmediate-earlypro moter/enhanceratlatetimesofinfectionismediatedby therecruitmentofchromatinremodelingenzymesbyie86 [J].JVirol,2006,80(20): [10] SinclairJ.Humancytomegalovirus:latencyandreactiva tioninthemyeloidlineage[j].jclinvirol,2008,41 (3): [11] Wyrick J,YoungRA.Decipheringgeneexpresionregu latorynetworks[j].curopingenetdev,2002,12(2):

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