简介 A B 基于 Sanger 方法的传统测序方法在过去的 2 多年间一直在 DNA 序列测定方法中占据主导地位 1 但是, 随着测序方法及技术的进步, 测序通量在 Sanger 测序基础上有了极大的进步, 如今全基因组测序可在几周甚至是几天内完成 2 这些技术统称为新一代测序, 或 NGS 随着

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棚能
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1 利用 Agilent 2 系统为新一代测序文库制备及 SureSelect 靶向序列捕获进行全程样品质量控制应用简报核酸分析作者 Arunkumar Padmanaban 安捷伦科技有限公司印度班加罗尔摘要 Agilent 2 系统可对新一代测序 (NGS) 工作流程中的样品进行全程分析, 从最初的起始材料一直到测序前的最终 DNA 文库质量控制 (QC) 本应用简报遵循 SureSelect 文库制备实验方案, 展示了基因组 DNA ScreenTape D ScreenTape 及高灵敏度 D ScreenTape 分析方法对该工作流程中样品的分析性能及适用性数据证明了 2 系统是可靠的文库分子量测定及定量分析 QC 平台数据还证明了这些 DNA ScreenTape 分析方法与 Agilent 2 生物分析仪的相应分析方法具有可比性, 并在其性能指标内

简介 A B 基于 Sanger 方法的传统测序方法在过去的 2 多年间一直在 DNA 序列测定方法中占据主导地位 1 但是, 随着测序方法及技术的进步, 测序通量在 Sanger 测序基础上有了极大的进步, 如今全基因组测序可在几周甚至是几天内完成 2 这些技术统称为新一代测序, 或 NGS 随着 NGS 技术和方法的进步, 测序的费用也得到了大幅降低但是, 测序样品的制备依然十分复杂且耗时

2 简介 A B 基于 Sanger 方法的传统测序方法在过去的 2 多年间一直在 DNA 序列测定方法中占据主导地位 1 但是, 随着测序方法及技术的进步, 测序通量在 Sanger 测序基础上有了极大的进步, 如今全基因组测序可在几周甚至是几天内完成 2 这些技术统称为新一代测序, 或 NGS 随着 NGS 技术和方法的进步, 测序的费用也得到了大幅降低但是, 测序样品的制备依然十分复杂且耗时因此, 需要对 NGS 的样品制备进行仔细监控以确保能成功进行测序实验 Agilent SureSelect 靶向序列捕获试剂盒通过各种捕获组 ( 包括全外显子基因组合蛋白激酶组定制及其他种类 ), 能为靶标特异性测序提供完整经验证的样品制备工作流程文库制备包括分离遗传物质剪切 DNA 以获取更短的片段加入测序平台特异性的接头杂交以富集靶标, 以及多重测序标记整个制备工作流程需要在多个步骤进行质量控制, 以确保在测序前成功获得文库工作流程概览如图 1 所示 Agilent 2 系统是用于 NGS 文库制备工作流程解决方案质量和数量评估的理想 QC 平台 2 系统提供一个自动化电泳系统, 可对样品进行快速分析, 只需 1 到 2 分钟时间即可完成一个样品分析本应用简报介绍了按照 2 系统中的 SureSelect 实验方案, 采用基因组 DNA ScreenTape D ScreenTape 及高灵敏度 D ScreenTape 分析方法对 NGS 文库制备进行质量控制 DNA DNA QC DNA QC PCR DNA QC PCR DNA QC NGS gdna 3 da PCR HEK293 DNA DNA 3 da QC gdna ScreenTape QC (1- bp) D ScreenTape DNA QC (2 275 bp) D ScreenTape DNA QC ( bp) HS D ScreenTape DNA 图 1 A) Agilent SureSelect XT 靶向序列捕获系统工作流程概览, 适用于 Illumina 末端配对测序文库制备, 突出显示了其中的 QC 步骤 B) SureSelect 文库制备工作流程示意图, 详述了推荐的 QC 步骤 ( 黄色 ), 分别采用相应的 Agilent 2 分析方法 ( 深蓝色 ) 及 Agilent 2 生物分析仪方法 ( 浅蓝色 ) 2

3 材料与方法 QC 分析购自 ATCC 的 HEK293 细胞系用含有 1% FBS 及 1% 青霉素 / 链霉素 (Pen/Strep) 的 MEM 培养基在 37 C 含 5% CO 2 培养箱内培养收细胞后, 采用安捷伦 DNA 提取试剂盒 (6) 提取基因组 DNA Agilent 2 系统 (G2964AA) 基因组 DNA ScreenTape 及试剂 ( 部件号及 ) D ScreenTape 及试剂 ( 部件号及 ) 高灵敏度 D ScreenTape 及试剂 ( 部件号及 ) 2 生物分析仪 (G2939AA) DNA ( 部件号及 67-15) 及高灵敏度 DNA 试剂盒 ( 部件号及 ) 均来自安捷伦科技有限公司应用 Qubit 1. 荧光计及 NanoDrop ( 赛默飞世尔 ) 进行比较 QC 分析并采用 S22 自动聚焦声波样本处理仪 (Covaris 公司 ) 进行基因组 DNA 剪切, 该仪器由 Genotypic 科技友情提供 NGS 文库制备对于标准的 3 µg 起始 DNA, 我们采用适用于 Illumina 配对末端测序文库 ( 版本 1.6) 的 Agilent SureSelect XT 靶向序列捕 3 获系统实验方案中的指南, 制备适用于 Illumina HiSeq 及 MiSeq 多重测序平台的 NGS 文库 SureSelect 试剂盒 (G9611A) 及 SureSelect XT 人全外显子 V4+UTR ( ) 捕获文库来自安捷伦科技公司, 并遵照生产商的实验方案使用 Agencourt AMPure XP 试剂盒 ( 贝克曼库尔特基因组学公司 ) 及 Dynabeads MyOne 链霉亲和素 T1(Life Technologies) 分别购自对应的生产商, 并根据各自的指南进行使用通常, 用于 NGS 文库制备的 SureSelect 实验方案第一步为提取基因组 DNA 根据推荐的剪切设置, 应用 Covaris 超声仪对来自 HEK293 细胞团块的 3 μg 基因组 DNA 进行剪切, 然后进行纯化对纯化后的片段在 3 端进行末端修复及腺苷酸化, 并采用磁珠进一步纯化然后在片段的 3 端连接上 Illumina 平台特异性接头, 并通过纯化去除过量的未连接接头将连接上接头的片段与生物素化的 RNA 文库 ( 捕获诱饵 ) 在 65 C 下杂交 16 小时以富集靶标接着扩增所捕获的文库, 并插入标签进行多重测序所有样品在 2 及 2 生物分析仪中均重复分析三次结果与讨论现行的 NGS 技术通常需要获取待测序的短片段 DNA 文库本文中详述的 Illumina 测序实验方案实例显示,DNA 的起始片段大小推荐在 1- 碱基对之间如图 1A 和图 1B 中所示, 需要若干步骤以完全制备 DNA 用于测序 QC 测试是该工作流程中的关键步骤, 可确保成功获取文库在 NGS 平台测序前,2 系统可检查起始基因组 DNA 的完整性, 并评价多个纯化步骤, 直至最终 QC 步骤的样品质量 3

4 A (bp) DNA DNA A1 (L) B1 C1 D1 (bp) A1 (L) B1 C1 D1 (bp) A1 (L) B1 C1 D1 (bp) A1 (L) B1 C1 D B (bp) DNA (bp) (bp) L L L 图 2. A: 由 Agilent 2 系统所得的基因组 DNA 剪切 DNA 捕获前及捕获后文库的 QC 步骤胶图, 分别采用基因组 DNA D 及高灵敏度 D ScreenTape 分析 B: 由 Agilent 2 生物分析仪所得的剪切 DNA 捕获前及最终文库的 QC 步骤胶样图, 分别采用 DNA 及高灵敏度 DNA 分析方法 Agilent 2 生物分析仪系统不适合用于基因组 DNA 分析 4

起始基因组 DNA 材料的数量及完整性检查 A (bp) A1 (L) B1 C1 D1 成功的 NGS 文库制备取决于起始样品的质量, 在本文中为基因组 DNA 采用基因组 DNA ScreenTape 分析方法对基因组 DNA 的质量和数量进行分析通常, 采用 NanoDrop 测定 OD26/28 比值以评价样品的纯度质量, 该比值需在 1.8 到 2.

5 起始基因组 DNA 材料的数量及完整性检查 A (bp) A1 (L) B1 C1 D1 成功的 NGS 文库制备取决于起始样品的质量, 在本文中为基因组 DNA 采用基因组 DNA ScreenTape 分析方法对基因组 DNA 的质量和数量进行分析通常, 采用 NanoDrop 测定 OD26/28 比值以评价样品的纯度质量, 该比值需在 1.8 到 2. 之间, 而 Qubit 系统则用于定量基因组 DNA 相比之下, 2 分析方法可在样品 QC 步骤中同时提供样品的质量和数量信息采用分析软件所得的完整胶条 ( 无任何降解产物 ) 的图片可测定样品的纯度 ( 图 3A) 图 3B 中展示了 2 系统 NanoDrop 及 Qubit 所得的数据, 结果显示 2 系统和 Qubit 在定量方面具有可比性采用 UV 光谱法测定基因组 DNA 所得的量常会过高, 这是由于其他的缓冲液成分在 UV 光谱中也可能有吸收 4 因此, 与其他系统不同的是, 基因组 DNA ScreenTape 分析方法及 2 系统只需 1 µl 样品即可在一步分析中同时对质量和数量进行评价 (ng/µl) A26/ B NanoDrop DNA QC 图 3. A) Agilent 2 系统 ScreenTape 分析所得基因组 DNA 胶图基因组 DNA ScreenTape 分析方法显示出样品是完整的,NanoDrop 测定的 A26/28 比值对其进行了验证 ( 如每条泳道下所示 ) Qubit B) 基因组 DNA ScreenTape 分析方法所得定量数据与 Qubit 及 NanoDrop 所得结果比较 5

6 SureSelect QC 检查点除了对起始材料的初始基因组 DNA 进行 QC 之外,SureSelect 实验方案还推荐在文库制备及靶向序列捕获过程中增加两到三个检查点以确保样品的正确质量 ( 图 1): 对经非强制纯化及大小选择的剪切基因组 DNA 进行 QC, 以检查片段具有单个弥散条带分布, 中值分子量在 1 到 bp 之间对接头连接的经扩增及纯化后的接头连接 DNA 文库进行均匀弥散条带分布检查, 中值分子量在 2 到 275 bp 之间该步骤常称为捕获前 QC 推荐在测序前对杂交后文库进行最终 QC( 捕获后 QC) 杂交后文库的中值分子量范围需为 2 至 3 bp 在上述每个步骤中取样, 并应用 2 重复分析三次以评价其在这些文库的质量控制中的性能并同 2 生物分析仪的性能进行比较分子量分析如上所述, 剪切 DNA 捕获前及捕获后 DNA 样品均同时采用 2 及 2 生物分析仪进行分析三个 QC 步骤的样品重复分析三次, 整理后的数据如图 4 所示图中的数据展现了两个系统所得的文库分子量有很好的相关性初始剪切 DNA 及捕获前扩增文库采用 2 系统中的 D ScreenTape 分析方法及 2 生物分析仪的 DNA 分析方法进行分析实验方案建议初始剪切 DNA 样品弥散条带的大部分应在 1- bp 之间采用 2 分析软件进行分子量评价, 电泳图谱 ( 图 5A) 说明了弥散条带的大部分落在了推荐的范围内, 证明了基因组 DNA 得到了成功的剪切该电泳图谱也与 2 生物分析仪所得曲线相似 ( 图 5B) 3.. 第二个 QC 步骤评价了与捕获诱饵杂交前的捕获前扩增文库的质量 SureSelect 实验方案指出弥散条带平均分子量应在 bp 之间对捕获前扩增文库的 QC 分析有助于在杂交之前发现接头连接中的所有可能问题, 从而节省时间及试剂的消耗电泳图谱表现为一个单峰, 平均分子量约为 2 bp, 说明接头连接是成功的 ( 图 5C 及 5D 分别代表 2 及 2 生物分析仪系统的结果 ) 捕获后扩增文库同时由 2 系统中的高灵敏度 D ScreenTape 分析方法及 2 生物分析仪系统中的高灵敏度 DNA 分析方法进行分析 SureSelect 实验方案建议杂交后文库的中值分子量范围应为 2 至 3 bp 经两个系统分析后的样品所得的电泳图谱如图 6 所示电泳图谱表现为一个单峰, 平均分子量约为 28 bp, 说明成功扩增了文库 Agilent 2 Agilent 2 DNA Agilent 2 Agilent 2 Agilent 2 Agilent 2 Agilent 2 gdna Agilent 2 图 4. Agilent 2 与 Agilent 2 生物分析仪系统所得的片段分子量比较对剪切 DNA 捕获前文库及捕获后文库三次重复分析所得分子量平均值进行了比较误差线表示标准偏差 6

7 Agilent 2 Agilent 2 A DNA 26 B DNA (FU) (FU) (FU) C (FU) D 图 5. 由 Agilent 2 ( 左列 ) 及 Agilent 2 生物分析仪 ( 右列 ) 所得纯化后剪切 DNA(A 和 B), 及捕获前文库 (C 和 D) 的电泳图谱 A B (FU) (FU) 图 6. Agilent 2 系统所得的捕获后扩增文库电泳图谱 (A) 显示了 283 bp 上的峰相同样品在 Agilent 2 生物分析仪 (B) 中表现为 287 bp 上的峰 7

8 定量分析 2 与 2 生物分析仪系统可在提供分子量信息的同时提供定量数据采用标准分析法对剪切 DNA 及捕获前文库进行 QC 分析所得的定量数据如图 7 所示数据说明 2 与 2 生物分析仪系统各自的 D ScreenTape 及 DNA 分析方法在定量方面具有可比性由于扩增产物为皮克级别, 因此捕获后文库的定量需要使用高灵敏度分析方法高灵敏度分析方法的定量性能如图 8 所示数据说明 2 与 2 生物分析仪系统的高灵敏度分析方法在定量方面具有可比性另一种可选方法是采用 qpcr 进行最终文库定量但是, 一些 NGS 用户发现 2 生物分析仪所得的摩尔浓度数据在现阶段足以满足他们的需求因此, 我们对捕获后文库更高循环次数的 PCR 扩增产物进行了序列稀释, 并采用高灵敏度 D ScreenTape 分析方法进行定量分析, 从而对其定量性能进行评估图 9 中比较了这些稀释后样品的摩尔浓度与高灵敏度 DNA 分析方法所得结果的关系数据说明 2 系统中的高灵敏度 D ScreenTape 分析方法可获得关于捕获后样品的可信定量结果, 并与 2 生物分析仪的高灵敏度 DNA 分析方法具有可比性 (ng/µl) Agilent 2 Agilent 2 DNA Agilent 2 Agilent 2 gdna Agilent 2 Agilent 2 图 7. 采用 2 与 2 生物分析仪对 SureSelect 实验方案得到的剪切 DNA 及捕获前 DNA 文库进行定量比较 (ng/µl) Agilent 2 Agilent 2 Agilent 2 Agilent 2 图 8. Agilent 2 与 Agilent 2 生物分析仪中的高灵敏度分析方法对捕获后 DNA 文库所得的定量结果比较 2 (pmol/l) Agilent 2 Agilent 2 16 y =.99x, R 2 =.98 1 y = 1.3x, R 2 = Agilent 2 (pmol/l) 图 9. Agilent 2 与 Agilent 2 生物分析仪对一系列稀释的 NGS 捕获后扩增文库分析所得的摩尔浓度数据间的关联图 8

附加 QC 步骤除了 SureSelect 实验方案中所推荐的 QC 步骤之外, 用户在进行 NGS 文库制备及靶向序列捕获时还经常会执行补充的 QC 步骤这些中间 QC 步骤有助于文库合成过程中的故障排除例如, 如果文库在接头连接后并未表现出分子量偏移, 这说明接头连接反应出现了问题在 NGS 靶向序列捕获过程中选取一些样品, 并采用 2

9 附加 QC 步骤除了 SureSelect 实验方案中所推荐的 QC 步骤之外, 用户在进行 NGS 文库制备及靶向序列捕获时还经常会执行补充的 QC 步骤这些中间 QC 步骤有助于文库合成过程中的故障排除例如, 如果文库在接头连接后并未表现出分子量偏移, 这说明接头连接反应出现了问题在 NGS 靶向序列捕获过程中选取一些样品, 并采用 2 系统中的 D ScreenTape 分析方法及 2 生物分析仪中的 DNA 分析法进行分析 ( 图 1) A 1 B 1 gdna gdna 图 1. Agilent 2 系统的 D ScreenTape 分析法 (A) 及 Agilent 2 生物分析仪中的 DNA 分析法 (B) 所得的胶图, 样品来自 NGS 文库工作流程中的多个阶段 9

10 接头连接检查 NGS 文库制备工作流程包括添加测序平台特异性接头与接头的连接会增加 DNA 片段 A 的大小, 且还会留下未反应的接头由于残留的自由接头会影响待测序起始材料的定量, 因此随后的磁珠纯化步骤需确保去除自由接头因此, 对过量接头去除的检查至关重要 (FU) 两个系统所得的纯化后腺苷酸化及纯化后接头连接样品的电泳叠加谱图 ( 图 11) 表现出文库的分子量偏移, 说明接头连接是成功的叠加图未显示存在额外峰, 确保了文库中不 1 含过量的未反应接头 14 B 12 (FU) (s) 图 11. 纯化后腺苷酸化 ( 蓝线 ) 及纯化后接头连接 ( 红线 ) 的文库电泳叠加谱图, 显示出 Agilent 2 系统 (A) 及 Agilent 2 生物分析仪 (B) 获得了更高的分子量, 且无额外峰 1

11 杂交后 PCR 扩增优化 6 对捕获后文库的 PCR 扩增, 通常需要优化其扩增循环的次数扩增不足会导致进行测序的 DNA 数量不足过分扩增则会导致重复的增加, 将会引起测序覆盖率的偏移捕获后文库分别采用 5 8 和 1 次 PCR 循环进行扩增, 并采用高灵敏度 D ScreenTape (FU) 分析方法进行分析样品的电泳叠加谱图 ( 图 12) 显示了 PCR 循环次数对所产生的 DNA 数量的影响从本研究可以看出, 由于分析时间短, 样品需求量小,2 系统可有效用于优化 PCR 循环次数 1 图 12. 采用 Agilent 2 系统分析经过 5 8 和 1 次 PCR 循环扩增 ( 分别为蓝线绿线及红线 ) 得到的浓度逐渐增加的经扩增的捕获后文库 DNA 11

12 结论通过结合 SureSelect 实验方案, 本应用简报说明了 Agilent 2 系统结合基因组 DNA D 及高灵敏度 D ScreenTape 分析方法是分析 NGS 文库制备工作流程所得样品的理想选择基因组 DNA ScreenTape 分析方法不仅能评估基因组 DNA 起始材料的质量, 还能对数量进行评估, 使用单个测试就能替代原先两个独立的测试 SureSelect 靶向序列捕获工作流程所得的 NGS 样品的分子量可通过联合 D ScreenTape 分析方法及 2 系统进行可靠测定所测得的分子量与 Agilent 2 生物分析仪中类似分析法所得结果相匹配最终文库的定量可由 2 系统中的高灵敏度 D ScreenTape 分析法完成, 结果与 2 生物分析仪的高灵敏度 DNA 分析方法所得结果一致参考文献 1. O. Morozova, M.A. Marra Applications of next-generation sequencing technologies in functional genomics Genomics, Volume 92, Issue 5, November 8, p , ISSN ygeno An Introduction to Next-Generation Sequencing Technology products/illumina_sequencing_ introduction.pdf 3. SureSelectXT Target Enrichment System for Illumina Paired-End Sequencing Library - Illumina HiSeq and MiSeq Multiplexed Sequencing Platforms, Protocol 1.6( 用于 Illumina 配对末端测序文库的 SureSelectXT 靶向序列捕获系统 Illumina HiSeq 及 MiSeq 多重测序平台, 实验方案 1.6), agilent.com/library/usermanuals/ Public/G753-9_SureSelect_ IlluminaXTMultiplexed_1.6.pdf 4. M. O Neill, J. McPartlin, K. Arthure, S. Riedel, and Nd McMillan, Comparison of the TLDA with the Nanodrop and the reference Qubit system J. Physics: Conference Series Volume 37, Issue 1, 211, tapestation 本文中的信息说明和指标如有变更, 恕不另行通知安捷伦科技 ( 中国 ) 有限公司, 年 1 月 1 日, 中国印刷 CHCN

前言实验部分结果和讨论最常用的临床样品保存和存档方法之一材料是制备福尔马林固定石蜡包埋 (FFPE) 组 FFPE 及新鲜冷冻组织的 DNA 由西奈织全世界的组织库医院及实验室内存山医学院捐赠 ( 美国纽约州纽约市 ), 档的 FFPE 组织样本数超过 4 亿个组织 NA

前言实验部分结果和讨论最常用的临床样品保存和存档方法之一材料是制备福尔马林固定石蜡包埋 (FFPE) 组 FFPE 及新鲜冷冻组织的 DNA 由西奈织全世界的组织库医院及实验室内存山医学院捐赠 ( 美国纽约州纽约市 ), 档的 FFPE 组织样本数超过 4 亿个组织 NA 靶向序列捕获和新一代测序前对福尔马林固定石蜡包埋组织及新鲜冷冻组织进行 DNA 质量控制应用简报核酸分析作者 Melissa Huang Liu 安捷伦科技有限公司美国加利福尼亚州拉霍亚 Maria Celeste Ramirez 安捷伦科技有限公司美国加利福尼亚州圣克拉拉摘要本文将介绍利用 Agilent 2100 生物分析仪系统的微流控芯片电泳, 在新一代测序工作流程的 SureSelect