164 海洋学报 34 卷 belcheri), 在室内养殖池暂养一周后,12 月 28 日开始进行分组实验, 持续至 2007 年 4 月 17 日结束 在实验室进行不同水温对文昌鱼性腺发育影响的研究, 每日投喂饵料为本实验室自行培养的单细胞藻类, 小球藻 ( 犆犺犾狅狉犲犾犪狏狌犾犵犪狉犻狊 )

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1 第 34 卷第 4 期海洋学报 Vol.34,No 年 7 月 ACTA OCEANOLOGICASINICA July2012 水温对文昌鱼生殖活动的影响及其内分泌机制 翁幼竹 1, 刘志刚 1, 方永强 1, 薛文玲 1 (1. 国家海洋局第三海洋研究所, 福建厦门 ) 摘要 : 采用慢性实验方法, 研究在不同水温条件下饲养性腺发生前的文昌鱼 ( 犅狉犪狀犮犺犻狅狊狋狅犿犪犫犲犾犮犺犲狉犻 ) 对其性腺分化和发育的影响 另外, 在繁殖季节研究在低温 16 中温 22 和高温 28 下饲养性成熟的文昌鱼对其产卵和排精的影响 同时, 采用免疫组织化学方法对几种生殖相关激素在不同发育期文昌鱼的生殖调控轴 ( 脑 哈氏窝 性腺 ) 中的分布进行免疫识别, 并用磁酶免定量测定方法检测睾酮和 17β 雌二醇在文昌鱼性腺中的含量, 以分析和探讨水温影响文昌鱼生殖活动的内分泌机制 结果表明 : 低温有利于文昌鱼性腺向雌性分化, 雌雄比例为 4.2 1, 中温和高温组则不受影响, 雌雄数量大致相等 高水温则有利于文昌鱼的精巢发育和生精活动 28 海水适于文昌鱼的产卵和排精 根据免疫组织化学和磁酶免定量测定的结果分析提示, 温度影响文昌鱼性别分化和发育以及繁殖活动的内分泌机制是 : 首先水温经皮肤或哈氏窝化学感受器, 刺激神经系统 ( 脑泡 ) 释放 GnRH 然后 GnRH 促进哈氏窝分泌 LH, 从而可能刺激性腺产生和分泌性类固醇激素, 始动文昌鱼性腺的发育至成熟及其生殖活动 此外, 脑中芳香化酶可能介导文昌鱼性别分化 关键词 : 文昌鱼 ; 温度 ; 性别分化 ; 生殖调控轴 ; 芳香化酶中图分类号 :Q959.4 文献标志码 :A 文章编号 : (2012) 引言 在 20 世纪 50 年代, 童第周等采用控制水温延长文昌鱼产卵期的方法, 用以解决繁殖期文昌鱼作 [1] 为实验材料难以获得的问题, 这是最先证明水温影响文昌鱼产卵的报道 后来,Wu 等发现青岛文 [2] 昌鱼只有在水温 21 才能产卵 林加涵等研究发现水温对文昌鱼性腺发育分化和成熟影响十分显 [3] 著 新近,Holand 提出文昌鱼可作为研究脊椎动物的起源和进化以及功能基因的新型模式动 [4] 物, 得到各国同行的赞同 然而, 正如早年 Hatschek 和 Conklin 所指出, 文昌鱼的发育没有被实验胚胎学家作为研究对象, 主要是材料不易获得, 因为它很难在人工培养条件下产卵, 同时也不能用 人工方法受精 虽然目前实验技术已基本解决上述难题, 但仍有一些问题存在 例如, 迄今我们还不了解温度是如何影响文昌鱼性别分化和性腺发育以及文昌鱼繁殖活动与水温的关系, 至于这些影响的内分泌机制更是一无所知 因此, 本研究目的是 : (1) 观察不同水温影响文昌鱼性腺分化 发育和成熟的同时, 揭示其内分泌机制 ;(2) 为人工调控文昌鱼的生殖活动提供新的技术手段 2 材料和方法 2 1 研究不同水温对文昌鱼性腺分化和发育的影响 实验动物本试验于 2006 年 12 月 21 日从厦门市欧厝南线 - 十八线海区采集文昌鱼 ( 犅狉犪狀犮犺犻狅狊狋狅犿犪 收稿日期 : ; 修订日期 : 基金项目 : 国家自然科学基金资助项目 ( ) 作者简介 : 翁幼竹 (1968-), 女, 福建省厦门市人, 博士, 研究员, 主要从事动物生殖内分泌的研究 E mail:wengyz0592@yahoo.com.cn

2 164 海洋学报 34 卷 belcheri), 在室内养殖池暂养一周后,12 月 28 日开始进行分组实验, 持续至 2007 年 4 月 17 日结束 在实验室进行不同水温对文昌鱼性腺发育影响的研究, 每日投喂饵料为本实验室自行培养的单细胞藻类, 小球藻 ( 犆犺犾狅狉犲犾犪狏狌犾犵犪狉犻狊 ) 钙质角毛藻 ( 犆犺犪犲狋狅犮犲狉狅狊犮犪犾犮犻狋狉犪狀狊 ) 和叉鞭金藻 ( 犇犻犮狉犪狋犲狉犻犪 sp.) 实验设计分为 3 个实验温度组, 即低温组 16 中温组 22 和高温组 28 从养殖池中挑选出健壮有活力的文昌鱼, 将长度接近 在解剖显微镜下检查肉眼未见性腺的文昌鱼, 在测量全长 (47.3±3.2)mm 后, 随机放入有机玻璃实验缸 (25cm 25cm 35cm) 中, 低温 中温和高温组每缸各放 40 尾 当三组文昌鱼开始恢复摄食后, 中温和高温组用加热棒和控温仪调控, 每日升温 0.5~1, 直至设定的温度 ( 恒温误差为 ±0.3 ), 低温组用冰块保持水温 (16±0.3) 每日上 下午定时和定量各投喂一次由 3 种单胞藻混合的新鲜饵料, 定时测量各组水温, 隔天换 1/3 海水, 实验持续 110d 样品的处理实验结束后, 取出各组文昌鱼, 重新仔细测量每尾鱼的全长后, 在解剖显微镜下观察, 测量以肝盲囊最前端为起始点, 往体后计数 5 个性腺原基的直径或长短径, 作为不同水温影响性腺发育的依据, 然后截取一侧性腺 ( 卵巢或精巢 ) 放入 Bouin Haland 氏液中, 另一侧放入新配制不含醋酸的 Bouin 液中均固定 8~12h, 常规组织学方法脱水, 德国徕卡 Pa raplastregular 石蜡包埋, 切片厚 5μm 用 Bouin Haland 氏液固定的切片采用苏木精 伊红 (HE) 染色, 以观察性腺发育的水平 用 Bouin 液固定的切片裱贴到预先涂有多聚赖氨酸的载玻片上, 用以进行免疫组织化学染色, 分析不同水温影响文昌鱼性腺发育和性别分化的内分泌机制 酶免测定的样品制备在分组实验开始时, 随机取体长相近的文昌鱼, 在性腺未发育的腹壁处仔细分离一段组织, 称重, -40 冷冻保存 实验结束后, 在解剖显微镜下区分和挑选出小生长期和大生长期的卵巢和精巢, 并称重,-40 冷冻保存 待全部样品处理结束后, [5] 按照先前报道的方法进行类固醇激素测定样品的前处理, 然后采用磁酶免定量分析法测定小生长期和大生长期卵巢和精巢中睾酮和雌二醇的含量 测 定试剂盒购自北京倍爱康生物技术有限公司 免疫组织化学染色程序切片经脱蜡水化后, 放入 3% H 2O 2 中 10min, 以阻断内源性过氧化物酶活性, 蒸馏水洗 3 次 滴加正常山羊血清封闭液, 室温下孵育 15 ~ 20min, 以减少非特异性染色 滴加第一抗体, 分别为兔抗 GnRH( 促性腺激素释放素 ) Arom( 芳香化酶 ) LH ( 黄体生成素 ) AR( 雄激素受体 ) 和 ER( 雌激素受体 ), 稀释度分别为 1 100,1 300,1 400,1 300 和 孵育 24~36h,PBS(PH 7.2~ 7.6) 洗 5min 3 次 滴加生物素标记羊抗兔 IgG, 室温下孵育 20 min,pbs 洗 5 min 3 次 滴加 SABC 复合物, 室温下孵育 30min,PBS 洗 5min 3 次 最后用 DAB 显色液显色 3~5 min 对照实验片采用 PBS 正常兔血清替代第一抗体进行同步孵育 以上 5 种抗体 SABC 免疫组织化学试剂盒和 DAB 显色试剂盒均购自武汉博士德生物工程有限公司 2 2 在繁殖季节研究不同水温对文昌鱼产卵和排精的影响 于 2007 年 5 月中旬从海区采集文昌鱼, 挑选雌 雄性腺达 Ⅳ 期, 体长接近的文昌鱼在实验室内营养强化培养半个月后, 性腺开始成熟, 准备实验 实验前取雌 雄文昌鱼各 10 尾, 分离出卵巢和精巢,- 40 冷冻保存 另取雌 雄性腺成熟的文昌鱼, 在测量全长 (51.2±4.4)mm 后, 随机分为 3 个组 ( 低温 16 中温 22 和高温 28 ), 每组雌 雄各 20 尾, 置于空调房内的培养缸中 中温 高温组用加热棒和控温仪控制水温, 低温组用冰块维持水温 每日上 下午定时和定量各投喂一次藻, 定时测量各组水温, 隔天换 1/3 海水, 实验持续 1 个月 实验结束后, 计数产卵和排精的雌 雄文昌鱼数量, 并取它们残留的卵巢和精巢, 分别称重后, 分开冷冻保存 最后与实验前冷冻的文昌鱼性腺样品一起用磁酶免定量分析法测定睾酮和雌二醇含量 3 结果 3 1 不同水温对文昌鱼性腺发育的影响 实验结束后, 三组文昌鱼性腺切片观察结果表明, 性腺发生前的文昌鱼在不同水温条件下经长达 110d 的培养, 各组均有 6~8 尾尚为性腺原基, 看不到原始生殖细胞 ( 见图 1a), 其余性腺均已分化, 但在不同水温下, 性腺分化出现明显差异,

3 4 期翁幼竹等 : 水温对文昌鱼生殖活动的影响及其内分泌机制 165 详见表 1 从表中看出:(1) 在低温 (16 ) 条件下培育, 文昌鱼有 21 尾分化为雌性, 占性分化总数的 80.8%, 而雄性仅为 19.2%, 雌雄比例为 4.2 1, 表明低水温有利于文昌鱼性腺向雌性方向分化 切片观察可见低温组卵巢处于卵原细胞期或增值期和小生长期 ( 图 1b,1c) (2) 高水温组 (28 ) 文昌鱼虽然雌 雄性别所占比例相差不大, 但切片观察结果显示, 高水温可使精巢中生精细胞进入旺盛的生精活动, 表现在高温组早期精巢占少数, 而多数处于大生长初期和中期 (Ⅲ ~ Ⅳ 期 ), 占分化精巢总数的 68.8%, 生精小管中可见大量的精子细胞和精子 ( 图 1d,1e), 说明该水温有利于精巢发育和生精活动 (3) 中温组的文昌鱼雌 雄分化的比例也没有显著差异, 但早期性腺占优势 ( 图 1f),Ⅰ 和 Ⅱ 期性腺 ( 包括卵巢和精巢 ) 约占性分化性腺总数的 92 %, 而仅见 2 尾雄鱼精巢处在大生长期 经狋值检验表明, 低温组与中温和高温组文昌鱼的雌 雄比率均存在显著差异 ( 犜 > 2, 狆 <0.05), 但中温组与高温组之间差异不显著 ( 犜 <2, 狆 >0.05) 图 1 不同水温对文昌鱼性腺分化和发育的影响 a. 不同水温组均可见性腺开始发育的生殖原基 ;b,c. 低温照卵巢发育处于卵原细胞增殖期和小生长期 ( 细箭头示卵原细胞, 粗箭头示卵母细胞 );d. 高温组小生长期精巢, 可见生精小管中有发育的精原细胞 ( 细箭头 ) 初级和次级精母细胞 ( 粗箭头 );e. 高温组大生长期精巢, 可见生精小管中充满正在发育的精子细胞和精子 ;f. 中温组早期卵巢 ( 箭头示卵原细胞 ) 表 1 不同水温对文昌鱼性腺分化和发育的影响 组别 动物数量 / 尾 实验前性腺发育 实验后性腺发育时期 原基性别 Ⅰ 期 Ⅱ 期 Ⅲ 期 Ⅳ 期 占性分化总数 /% 低温组 (16 ) 中温组 (22 ) 高温组 (28 ) 40 无 无 无 不同水温对繁殖季节文昌鱼产卵和排精的影响 性腺成熟的雌 雄文昌鱼在 3 种不同水温下经 30d 培育后, 观察水温对其产卵和排精数量的影响, 结果见表 2 所示 从表中看出, 高温组 (28 ) 约有

4 166 海洋学报 34 卷 50% 雌 雄鱼产卵和排精, 而中温组 (22 ) 仅各 1 尾产卵或排精, 低温组 (16 ) 则无产卵排精发生 经狋 值检验表明, 高温组与中温组和低温组相比较, 差异 十分显著 ( 犜 >2.6, 狆 <0.01), 但中温组与低温组之间差异不显著 ( 犜 <2, 狆 >0.05) 提示在 28 海水适于文昌鱼繁殖活动, 而 22 和 16 则不适宜 表 2 不同水温对文昌鱼产卵和排精的影响 水温 / 性别 实验前动物数量 / 尾 产卵或排精 / 尾 实验后 未产或未排 / 尾 产卵或排精率 /% 水温影响文昌鱼性腺分化 发育和生殖活动的内分泌机制 性类固醇激素影响性腺的发育不同水温影响文昌鱼性腺分化和发育实验结束后, 用磁酶免定量分析仪测定雌 雄文昌鱼性腺中睾酮和雌二醇含量, 结果见表 3 从表中可见, 在性腺发生之前, 本实验没有检测出睾酮和雌二醇 ( 磁酶免测定结果低于试剂盒检验下限 ) 性腺分化和发育后, 雌 雄性腺的激素水平 有别 在小生长期, 雄鱼和雌鱼性腺中睾酮含量差别不大, 雌鱼的 17β 雌二醇含量则较高, 约为雄鱼的 1.5 倍, 尤其是到大生长期, 雌鱼卵巢中雌二醇含量达雄鱼 2 倍多 从小生长期到大生长期, 睾酮水平在雄鱼有所降低, 在雌鱼则增加且明显高于雄鱼 此测定结果与先前测定小生长期雌 雄文昌鱼性腺中睾酮和雌二醇水平值相 [5] 一致, 提示文昌鱼性腺发育可能与性类固醇激素有关 表 3 文昌鱼性腺发育不同时期睾酮和 17β- 雌二醇的含量变化 发育期性别睾酮 /pg (100mg) -1 ( 性腺 ) 17β- 雌二醇 /pg (100mg) -1 ( 性腺 ) 实验前无性腺 小生长期 (Ⅱ 期 ) 大生长期 (Ⅳ 期 ) 84.35± ± ± ± ± ± ± ±11.16 注 : 表示激素含量低于检测下限, 没有检测到 脑和垂体中生殖相关激素与性腺分化和发育的关系为了解和探讨水温影响文昌鱼性腺分化和发育的神经内分泌机制, 本研究对文昌鱼生殖调控轴 ( 脑泡 - 哈氏窝 - 性腺 ) 中调控文昌鱼性腺发育的几种关键激素, 如脑中促性腺激素释放激素 (GnRH) 哈氏窝促性腺激素 (GtH) 以及决定性别分化的关键酶 ( 芳香化酶 ) 在脑泡和哈氏窝中进行免疫组织化学定位, 以此揭示水温影响文昌鱼性腺分化和发育的内 分泌机制 结果分述如下 : (1)GnRH 影响性腺发育 : 对不同水温组的不同性腺发育时期的文昌鱼脑泡进行 GnRH 免疫组织化学染色结果显示, 三组文昌鱼在性腺尚未发生时期, 中脑泡 ( 相当于脊椎动物下丘脑 ) 的神经细胞均对 GnRH 抗体显免疫阴性反应 ( 见图 2a), 而在各水温组文昌鱼出现性腺原基后, 中脑泡神经细胞才开始对 GnRH 抗体显示免疫阳性反应 以低温组和高温组卵巢小生长期雌性文昌鱼为例,GnRH 免

5 4 期翁幼竹等 : 水温对文昌鱼生殖活动的影响及其内分泌机制疫活性定位在低温组文昌鱼中脑泡背面和腹面的小型神经细胞及其突起, 染为深棕色, 阳性物质沿胞膜分布, 显强的免疫阳性, 而核则显免疫阴性 ( 图 2b), 高温组免疫染色结果与之类似 ( 图 2c) 各组文昌鱼其他性腺发育时期的雌 雄文昌鱼脑内 GnRH 免疫活性细胞的定位分布和免疫强度与小生长期相比没有观察到明显差异, 这些结果提示 GnRH 可能与启动性腺发育有关 (2) 促黄体素 (LH) 的作用 : 实验前性腺尚未发生的文昌鱼哈氏窝对 LH 抗体显示免疫阴性反应 ( 图 2d) 实验结束后,3 个水温组均可见性腺发育在小生长期的雌 雄文昌鱼哈氏窝对 LH 抗体呈现免疫阳性反应,LH- 样免疫活性细胞定位在哈氏窝基部, 显示强的染色反应, 染为深棕色, 而轮器则显 167 免疫阴性 ( 图 2e,2f) (3) 芳香化酶与性别分化的关系 : 实验前性腺尚未发生的文昌鱼脑部芳香化酶免疫组织化学染色结果显示, 脑泡对芳香化酶抗体显示免疫阴性反应或极微弱阳性反应 ( 图 2g) 性腺分化发育后, 对比低温组小生长期性腺阶段的雌 雄文昌鱼脑泡中芳香化酶免疫组织化学定位结果, 可见雌 雄鱼脑泡神经细胞对芳香化酶抗体显示免疫活性的细胞数量和免疫强度有别 在雌性, 平均有 14 个芳香化酶免疫活性细胞定位在脑泡腹面两侧, 为小型神经细胞, 染为深棕色 ( 图 2h), 而同期雄性脑泡中虽可见芳香化酶免疫活性细胞, 但细胞数量少, 仅为 7 个, 且免疫强度有所减弱 ( 图 2i), 提示脑泡神经细胞中芳香化酶活性的强弱可能是性别分化的决定因素 图 2 不同水温影响文昌鱼性腺发育的神经内分泌机制 a. 实验前性腺尚未发育文昌鱼, 可见脑泡对 GnRH 抗体显示免疫阴性反应 ;b,c. 低温组和高温组卵巢小生长期雌鱼, 中脑泡有小型神经细胞对 GnRH 抗体显示强免疫阳性反应 ;d. 实验前性腺尚未发育文昌鱼, 哈氏窝上皮细胞对 LH 抗体呈免疫阴性反应 ;e,f. 低温组和中温组卵巢小生长期雌鱼, 哈氏窝上皮细胞均对 LH 抗体显示免疫阳性反应 ;g. 实验前性腺尚未发育文昌鱼, 脑泡对芳香化酶抗体显示免疫阴性反应 ;h. 低温组卵巢小生长期雌鱼, 中脑泡腹面两侧可见小型神经细胞对芳香化酶抗体显示强免疫阳性反应 ;i. 低温组精巢小生长期雄鱼, 脑泡中芳香化酶免疫活性细胞数量较少 免疫强度有所减弱

6 168 海洋学报 34 卷 性类固醇激素受体在性腺的定位为进一步了解脑和哈氏窝分泌的神经激素和促性腺激素激发文昌鱼性腺发育的机制, 我们对两种重要的类固醇激素受体 AR 和 ER 在不同水温组性腺发育不同时期文昌鱼精巢和卵巢中进行免疫识别, 从中揭示水温影响性腺发育可能的机制, 结果如下 : AR 免疫染色结果显示, 不同水温组雄性小生长期和大生长期精巢中各级生精细胞, 以及雌性小生长期和大生长期卵巢中卵原细胞和初级卵母细胞均对 AR 抗体显示免疫阳性反应 在低温组小生长期精巢, 可见精原细胞和初级与次级精母细胞对 AR 抗体显示免疫阳性反应, 阳性物质定位在细胞膜或细胞核 ( 图 3a) 又如, 中温组大生长期精巢, 可见各级生精细胞 ( 精原细胞 初级和次级精母细胞 以及精子细胞 ) 均对 AR 抗体显示免疫阳性反应, 阳性物定位在细胞核 ( 图 3b) 高温组小生长期和大生长期精巢与低温组和中温组 AR 免疫阳性反应的定位类似 在雌性, 高温组小生长期和大生长期卵巢中, 可见小生长期卵原细胞的卵被膜以及卵母细胞的卵被膜和核膜对 AR 抗体显示免疫阳性反应, 胞质显免疫阴性 ( 图 3c), 而到大生长期,AR 免疫活性存在于卵母细胞的细胞核, 胞质显免疫阴性 ER 免疫染色结果显示,ER 免疫活性定位在低温和中温组小生长期精巢个别精原细胞的核质, 呈现强的免疫阳性反应, 而其余生精细胞显免疫阴性 ( 图 3d) 在卵巢,ER 免疫活性定位在中温组小生长期卵巢中初级卵母细胞的卵被膜和核仁, 以及高温组大生长期卵巢中卵母细胞胞核, 显较强免疫阳性, 胞质显免疫阴性 ( 图 3e,3f) 图 3 类固醇激素受体 (AR 和 ER) 在文昌鱼性腺中定位 a. 低温组小生长期精巢, 可见精原细胞 ( 粗箭头 ) 和初级与次级精母细胞 ( 细箭头 ) 对 AR 抗体显示免疫阳性反应, 阳性物质定位在胞膜或核 ;b. 中温组大生长期精巢, 可见各级生精细胞 ( 精原细胞 初级和次级精母细胞以及精子细胞 ) 均对 AR 抗体显示免疫阳性反应, 阳性物定位在细胞核 ;c. 高温组小生长期卵巢,AR 免疫活性定位在少数卵原细胞 ( 细箭头 ) 卵被膜以及初级卵母细胞 ( 粗箭头 ) 的卵被膜和核膜, 胞质显免疫阴性 ;d. 中温组小生长期精巢, 可见 ER 免疫活性定位在个别精原细胞的核质, 呈现强的免疫阳性反应, 而其余生精细胞显免疫阴性 ;e. 中温组小生长期卵巢, 可见 ER 定位在初级卵母细胞的卵被膜和核仁 ;f. 高温组大生长期卵巢, 可见 ER 定位在卵母细胞胞核, 胞质显免疫阴性 文昌鱼排卵 释精前后性腺睾酮和 17β- 雌二醇的含量变化本研究用酶免定量测定方法比较产卵和排精前后文昌鱼性腺中睾酮和雌二醇含量变化, 结果见表 4 从表中看出, 产卵和排精前的雌 雄文昌鱼性腺中睾酮和雌二醇含量与大生长期 ( 见表 4) 相比, 睾酮急剧下降, 雌二醇变化不大, 而在产卵和释精后这两种激素含量都明显下降, 此情况与前人报道繁殖

7 4 期翁幼竹等 : 水温对文昌鱼生殖活动的影响及其内分泌机制 169 季节文昌鱼排卵和释精所出现性类固醇激素的变化相类似 [5] 表 4 产卵和排精前后文昌鱼性腺中睾酮和 17β- 雌二醇的含量变化 生殖活动期 性别 睾酮 /pg (100mg) -1 ( 性腺 ) 17β- 雌二醇 /pg (100mg) -1 ( 性腺 ) 产卵或排精前 29.68± ± ± ±3.59 产卵或排精后 3.35± ± ± ± 讨论 林加涵等首先对厦门文昌鱼性腺发育和成熟与水温的关系进行了研究, 他们发现在水温 20 和 25, 性腺已发育的文昌鱼, 经 40d 天培养, 出现一些雌 雄文昌鱼产卵和排精以及加速性腺发育, 表明 [3] 这两种温度有利于文昌鱼性腺发育和成熟 然而, 对性腺尚未发生和性腺已经发育成熟的文昌鱼, 水温对其性腺分化和性腺以及繁殖活动有什么影响, 迄今尚未查阅到可利用资料 因此, 本研究首次证实了不同水温对文昌鱼性腺分化和发育可产生不同影响, 低温 (16 ) 有利于雌性分化, 而高温 (28 ) 则促进雄性精巢发育成熟以及雌 雄文昌鱼产卵和排精, 中等水温 (22 ) 对性分化和性腺发育的影响介于低和高水温之间 此外, 迄今也尚未见有关水温影响文昌鱼性别分化 性腺发育及其繁殖活动的神经内分泌机制的资料 为此, 本研究通过免疫组织化学和磁酶免定量测定方法试图揭示水温产生上述影响的内在原因 这里, 首先必须说明, 厦门文昌鱼性腺发生的特点与其它无脊椎动物和脊椎动物不同, 文昌鱼在产卵和排 [6-8] 精后均出现性腺重建过程, 即在前一个繁殖季节过后性腺完全退化消失, 直至下一个繁殖季节开始再萌发出新的生殖圈 ( 性腺原基 ), 因而才能够详细地观察性腺分化和发育的过程 文昌鱼生殖内分泌研究揭示了文昌鱼存在原始的生殖内分泌调控系统 ( 脑泡 - 哈氏窝 - 性腺 ) [9], 该系统像脊椎动物生殖调控轴一样, 调节文昌鱼性腺发育成熟及其生殖活动 要问, 水温是如何影响文昌鱼生殖调控轴呢? 我们认为外界环境因子水温刺激文昌鱼性腺发育首先是通过皮肤感受器, 或文 [10] 昌鱼化学感受器哈氏窝, 因为哈氏窝与口腔水流相通, 可直接感受海水温度的刺激, 然后通过传入神经刺激文昌鱼端脑 GnRH- 样细胞, 因为有研究表 [11] 明文昌鱼类似于鱼类也存在 GnRH 系统, 该系 统始自端脑腹侧面有 GnRH- 样细胞及神经纤维到中脑泡 ( 相当于鱼类下丘脑 ) 腹面,GnRH 神经元 [12] 发出纤维投射到哈氏窝, 这些观察为文昌鱼端脑能够感受水温刺激, 将外界信号转变为生殖信号, 传递至脑内相关的 GnRH 网络, 使中脑释放 GnRH 提供重要的依据 尔后 GnRH 信号传递至哈氏窝, [13] 与哈氏窝上皮细胞上的相应受体结合, 促使哈氏窝分泌促黄体素 (LH) 从图 2b 照片可见低温组卵巢小生长期雌性文昌鱼中脑泡神经细胞对 GnRH 抗体显示免疫阳性反应以及图版 2e 照片显示哈氏窝上皮细胞对 LH 抗体显示免疫阳性反应, 说明脑泡中 GnRH 刺激哈氏窝产生和分泌 LH 尔后,LH 作用于卵巢滤泡细胞和精巢 Sertoli 细胞使之分别产生和分泌性类固醇激素 ( 雌二醇和睾酮 ), 表 3 用磁酶免定量测定方法所得小生长期和大生长期性类固醇激素的数据就是佐证, 因为滤泡细胞和 Sertoli [14-15] 细胞是文昌鱼的类固醇激素产生细胞 最后, 雌激素和雄激素分别与性腺中生殖细胞上相应受体 ER 和 AR 结合, 因为这两种受体现已证实存在于文昌鱼神经系统 哈氏窝和不同发育时期生殖细胞 [16-18] 中, 从而始动生殖细胞的发育和成熟 图 3 见证了本研究在不同发育时期生殖细胞中 ER 和 AR 的定位分布 本研究发现, 低温 (16 ) 有利于文昌鱼性腺向雌性分化, 雌 雄比例为 4.2 1, 而中温和高温组的雌 雄比例相近 要问, 水温是如何影响文昌鱼性分化及其作用机制? 脊椎动物性别分化的机制研究表明, 芳香化酶是类固醇激素合成路线中把雄激素转换为雌激素的终点酶, 在控制脊椎动物性别分化和 [19-20] 性腺发育起关键作用 文昌鱼体内芳香化酶是否有类似的作用呢? 早期 Calard 等研究证实, 离体条件下文昌鱼性腺组织中的芳香化酶能够将雄 [21] 激素转换为雌激素 采用原位杂交和免疫组织化学方法也一致证明, 芳香化酶存在于文昌鱼的神

8 170 海洋学报 34 卷 [22] 经系统 哈氏窝和性腺 本研究比较了低温组性腺发育在小生长时期的雌 雄文昌鱼脑泡中芳香化酶的定位, 结果发现雌性文昌鱼中脑泡 ( 相当于脊椎动物间脑 ) 的芳香化酶免疫活性细胞的数量和免疫活性强度均高于同期雄性文昌鱼, 提示低温组雌性文昌鱼脑泡中芳香化酶的活性高于雄性 Lephart 认为芳香化酶在脑内局部催化产生雌激素从而影响 [23] 脊椎动物性别的分化, 因而, 我们认为低温组雌鱼中脑泡较高的芳香化酶活性可能推动文昌鱼性腺向雌性分化 对于高温促进精巢发育和精子形成的内分泌机制, 尚有待进一步研究 最后, 本研究中温度对文昌鱼繁殖活动的影 响实验显示, 高温组雌 雄文昌鱼各有 50% 发生产卵和排精, 其余各组仅为 5% 或无, 提示高温 28 适于文昌鱼的繁殖活动, 其机制我们认为可能是高水温通过哈氏窝化学感受器或皮肤刺激中脑泡释放 GnRH 诱导文昌鱼产卵和排精, 这与我们先前用外源性 GnRH 类似物 (GnRH A) 成功诱导性 [24-25] 腺成熟的雌 雄文昌鱼产卵和排精相一致 当然, 本研究仅是初步揭示温度影响文昌鱼性腺分化 发育和繁殖活动的内分泌机制, 尚有一些关键环节, 如哈氏窝分泌的促性腺激素如何与性腺中相应受体结合, 以及相关其它问题等都有必要进一步深入研究 参考文献 : [1] 童第周, 吴尚鉞, 叶毓芬. 文昌鱼卵子分裂球的发育能力的研究 [J]. 实验生物学报,1958,6: [2] WU Xianhan,ZHANGShicui,WANG Yongyuan,etal. Laboratoryobservationonspawning,fecundityandlarvaldevelopmentofam phioxus( 犅狉犪狀犮犺犻狅狊狋狅犿犪犫犲犾犮犺犲狉犻 Tsingtaunese)[J]. ChinJOceanolLimnol,1994,12: [3] 林加涵, 方永强, 刘建, 等. 不同水温对文昌鱼性腺发育的影响 [J]. 台湾海峡,1996,15: [4] HOLLANDLZ,LAUDET V,SCHUBERT M. Thechordateamphioxus:anemergingmodelorganismfordevelopmentalbiology[J]. CelMolLifeSci,2004,61: [5] FANG Yongqiang,ZHAO Weixin,WEIHua.Studyoncorrelationofsexsteroidhormonelevelwithgonadaldevelopmentinamphioxus [J]. ChineseScienceBuletin,1993,38: [6] FANGYongqiang,QIXiang,LIANGPing,etal.Preliminarystudyofgonadotropin releasinganalogue(gnrh A)initiatedgonadalde velopmentofamphioxus[j]. ActaOceandogicaSinica,1990,9: [7] 方永强, 梁萍. 文昌鱼精子发生及释精过程 [J]. 台湾海峡,1989,8: [8] 方永强, 齐襄. 厦门文昌鱼卵子发生过程 [J]. 台湾海峡,1990,9: [9] 方永强. 文昌鱼在生殖内分泌进化中的地位 [J]. 科学通报,1998,43: [10] NOZAKIM,GORBMAN A. ThequestionoffunctionalhomologyofHatschek spit( 犅狉犪狀犮犺犻狅狊狋狅犿犪犫犲犾犮犺犲狉犻 )andthevertebrateadeno hypophysis[j].zoologicalscience,1992,19: [11] KAH O,BRETONB,DULKAJG,etal. AreinvestigationoftheGnRH (gonadotropin-releasinghormones)systeminthegoldfish brainusingantibodiestosalmongnrh[j]. CelTissueRes,1986,244: [12] 方永强, 黄威权, 陈蕾, 等. GnRH 在文昌鱼脑和哈氏窝的分布 [J]. 动物学报,1999,45: [13] 方永强, 黄威权, 陈蕾. GnRH 受体在文昌鱼神经系统 哈氏窝和性腺的免疫组织化学定位 [J]. 科学通报,1999,44: [14] 方永强. 文昌鱼 Sertoli 细胞超微结构进一步研究 [J]. 动物学报,1991,37: [15] 方永强,WELSCH U. 文昌鱼卵巢滤泡细胞超微结构及功能的研究 [J]. 中国科学 :B 辑,1995,25: [16] 方永强, 翁幼竹, 黄威权, 等. 雌激素受体 α 和 β 亚型在文昌鱼神经系统 哈氏窝和性腺中的定位 [J]. 实验生物学报,2003,36: [17] 方永强, 翁幼竹, 胡晓霞. 性类固醇激素及其受体在文昌鱼性腺和神经系统中的分布 [J]. 动物学报,2001,47: [18] 翁幼竹, 方永强, 胡晓霞. 雌 雄激素受体在文昌鱼神经系统和哈氏窝的免疫识别 [J]. 动物学报,2001,47: [19] HONG W S,FANG Y Q. Advancesonaromataseactivityinfish[J].JofFisheriesofChina,2000,24: [20] CALLARDG V. Androgenandestrogenactionsinthevertebratebrain[J]. AmerZool,1983,23: [21] CALLARDG V,PUDNEYJA,KENDALLSL,etal.Invitroconversionofandrogentoestrogeninamphioxusgonadaltissues[J]. GenCompEndocrinol,1984,56: [22] FANG Yongqiang,WENG Youzhu,HUANG Weiquan,etal.Localizationofaromataseinthenervoussystem,Hatschek spitandgo nadofamphioxusbyinsituhybridizationandimmunocytochemistry[j]. ActaZoologicaSinica,2003,49: [23] LEPHARTED. AreviewofbrainaromatasecytochromeP450[J]. BrainResRev,1996,22:1-26. [24] 方永强, 赵维信, 林秋明. 文昌鱼卵母细胞发育成熟激素调控的研究 [J]. 中国科学 :B 辑,1993,23:

9 4 期翁幼竹等 : 水温对文昌鱼生殖活动的影响及其内分泌机制 171 [25] 方永强, 齐襄, 洪桂英. 促性腺激素释放激素类似物诱导文昌鱼产卵的初步研究 [J]. 台湾海峡,1989,8: 犈犳犳犲犮狋狊狅犳狊犲犪狑犪狋犲狉狋犲犿狆犲狉犪狋狌狉犲狅狀狋犺犲狉犲狆狉狅犱狌犮狋犻狏犲犪犮狋犻狏犻狋狔狅犳狋犺犲犪犿狆犺犻狅狓狌狊, 犅狉犪狀犮犺犻狅狊狋狅犿犪犫犲犾犮犺犲狉犻犪狀犱犻狋狊犲狀犱狅犮狉犻狀犲犿犲犮犺犪狀犻狊犿 WENG Youzhu 1,LIUZhigang 1,FANG Yongqiang 1,XUE Wenling 1 (1. 犜犺犻狉犱犐狀狊狋犻狋狌狋犲狅犳犗犮犲犪狀狅犵狉犪狆犺狔, 犛狋犪狋犲犗犮犲犪狀犻犮犃犱犿犻狀犻狊狋狉犪狋犻狅狀, 犡犻犪犿犲狀 , 犆犺犻狀犪 ) 犃犫狊狋狉犪犮狋 :Efectsofdiferentseawatertemperature(lowtemperaturegroup16,middletemperature 22 andhightemperature28 )onsexdiferentiationandgonadaldevelopmentintheamphioxus 犅狉犪狀 犮犺犻狅狊狋狅犿犪犫犲犾犮犺犲狉犻 withoutgonadsandonthespawningandspermiationactivityin matureamphioxus 犅狉犪狀犮犺犻狅狊狋狅犿犪犫犲犾犮犺犲狉犻 atthebreedingseasonwerestudiedusingthechronicexperimentmethod.theim munologicalrecognitionofseveralreproduction relatedhormonesinthereproductiveendocrineregulation organ(namely,brain hatschek spit gonad)ofamphioxusatdiferentdevelopmentstageswasstudiedby immunohistochemistryandthetestosteroneand17β estradiolcontentsingonadsofamphioxusweredetec tedbymagneticenzymeimmunoassaytoassayandinvestigatetheendocrinemechanism oftheefectsof seawatertemperatureonreproductiveactivityofamphioxus. Theresultsindicatedthatlowseawatertem peraturepromotedgonadaldiferentiationanddevelopmenttowardsfemaleinamphioxus,andtheratioof femaletomalewas Therewerenodiferencesinsexratiointhemiddletemperaturegroupandin thehightemperaturegroup,buthighseawatertemperaturecouldpromotetestisdevelopmentandspermat ogenicactivity. Thehightemperature28 wassuitableforthereproductiveactivityofamphioxus. Atthe sametime,theendocrinemechanismoftheinfluenceoftemperatureonthesexdiferentiation,gonadalde velopmentandreproductiveactivityinamphioxuswassuggestedbytheresultsofimmunohistochemistry andmagneticenzymeimmunoassayasfolowed:firstly,theseawatertemperaturemaystimulategnrh releasefrom nervoussystem (brainvesicle)viaskinreceptororchemicalreceptorof Hatschek spit. Then,GnRH maypromotelhsecretionfrom Hatschek spit. Finaly,LH maystimulatetheformation andsecretionofsexsteroidhormonesintheovaryandtestis,andthusinitiategonaddevelopmentandmat urationaswelasreproductiveactivity.inaddition,aromataseinthebrainmaybeinvolvedinthesexdif ferentiationofamphioxus. 犓犲狔狑狅狉犱狊 : 犅狉犪狀犮犺犻狅狊狋狅犿犪犫犲犾犮犺犲狉犻 ;temperature;sexdiferentiation;reproductivecontrolaxis;aromatase

方永强 翁幼竹 戴燕玉 吕小梅 方少华 张跃平 用组织学和胚胎学方法对厦门国家级自然保护区文昌鱼的生殖季节 胚胎发育和幼虫培育 进行详细研究 结果表明 自然保护区文昌鱼生殖季节可分为两个繁殖时期 从 月初开始至 月 初为繁殖高峰期 和 月为繁殖小产期 观察人工繁殖得出 文昌鱼 产卵时间在傍晚 前后 可以观察到雌 雄文昌鱼的产卵和排精行为 雄性文昌鱼先离开沙 并跃 出水面快速游动和排精 接着雌鱼也跃出水面

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