第四章 PCR技术

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1 第四章 PCR 技术 1

2 Polymerase chain reaction, PCR 聚合酶链式反应 A method for amplifying specific DNA segments that exploits certain features of DNA replication. Kary Mullis 2

3 第一节常规 PCR 技术 一 PCR 技术的基本原理 3

4 4

5 See movie1 See movie2 5

6 AMOUNT OF DNA CYCLE NUMBER AMOUNT OF DNA , , , , , , , , , , ,048, ,097, ,194, ,388, ,777, ,554, ,108, ,217, ,435, ,870, ,073,741, ,400,000, ,500,000, ,550,000, ,580,000, PCR CYCLE NUMBER 一个 DNA 经 n 次扩增后, 一个 DNA 分子可变为 2 n, 理论上经过 30 次循环, 靶 DNA 得到 10 9 倍的扩增, 实际是 10 6~7 倍的扩增 DNA 扩增需要对待扩增的 DNA 序列有所了解, 至少要对其两侧的核苷酸序列为已知, 以便合成寡核苷酸引物 6

7 二 PCR 反应系统的组份及作用 7

8 一个标准的 PCR 反应体系 (50~100 μl): PCR 反应缓冲液 50 mmol/l KCl 10 mmol/l Tris-HCl(pH=8.4) 1.5 mmol/l MgCl μg/ml 明胶或牛血清白蛋白 (BSA) 2 个引物, 各 0.25 μmol/l dntp=datp+dctp+dgtp+dttp, 各 200μmol/L 模板 DNA( 人基因组 DNA) 0.1~1μg Taq DNA 聚合酶 2 U 8

9 Denaturation 94, 0.5 min Primer annealing 50-65, 0.5 min Extension 72, 1 min/kb 30 cycles 9

10 1. 模板 DNA 用于 PCR 扩增的模板 DNA 通常是从细胞中提取的染色体 DNA, 它们并不需要高度纯化 待扩增的靶 DNA 的长度在 3kb 以下是 PCR 的有效扩增范围, 采用经改造的 Taq DNA 聚合酶可扩增出 40 kb 的 DNA 片段 PCR 反应中模板用量与 DNA 来源有关 10

11 1 μg of human genomic DNA / ( ) = mol mol ,000 molecules A single gene will be represented 288,000 times in 1 μg of genomic diploid DNA 25 cycles 10 μg of 1 kb DNA fragment 11

12 2. 引物 PCR 引物是与待扩增的目的 DNA 两端序列互补的人工合成的寡核苷酸片段 12

13 13

14 5 -GCAATCGTAGCTCTGAATGC CCTATGTCAAGCGGCTGAAC-3 3 -CGTTAGCATCGAGACTTACG GGATACAGTTCGCCGACTTG-5 引物 1: 5 -GCAATCGTAGCTCTGAATGC-3 引物 2: 5 -CGTTAGCATCGAGACTTACG-3 引物 3: 5 -CCTATGTCAAGCGGCTGAAC-3 引物 4: 5 -GGATACAGTTCGCCGACTTG-3 引物 5: 5 -CGTAAGTCTCGATGCTAACG-3 引物 6: 5 -GTTCAGCCGCTTGACATAGG-3 14

15 15

16 引物的长度通常为 17~30 个核苷酸 如 8nt 的引物, 平均每 4 8 =65536 bp 就会有一个结合位点, 在全长为 bp 的人类基因组中, 大约有 个可能的结合位点, 不能得到单一的特异性扩增产物 如为 17nt 的引物, 出现几率为 4 17 =17,179,869,184 bp, 长度超过人类基因组长度的 5 倍, 故在人类基因组中只可能有一个结合位点 但引物不是越长越好, 过长的引物同模板 DNA 的结合效率反而下降, 降低 PCR 反应的效率 16

17 PCR of human DNA with 8-mer primers 5' 3' 3' 5' Several primer pairs can give amplification products PCR of human DNA with 17-mer primers 5' 3' 3' 5' Only the desired fragment is amplified 17

18 简并引物 (degenerate primers) 是一类由多种寡核苷酸组成的混合物, 彼此之间只有一个或数个核苷酸的差异 ( 根据氨基酸序列推测出的核苷酸序列 ) 18

19 A mixture of 24 different primers 19

20 简并引物的有效性? 20 The use of degenerate PCR primers to identify novel POU genes

21 引物与复性温度 复性温度常与引物的长度和碱基组成有直接关系, 引物越长或 GC 含量较高, 退火的温度可以高些, 反之则低些 Tm=4 (G+C)+2 (A+T) ~5 below 引物与模板结合的特异性与复性温度密切相关当复性温度偏低时, 引物与模板配对出现错配碱基, 导致一些不需要的 DNA 片段被扩增复性温度过高, 引物与模板不能配对 21

22 引物设计的一般原则 : 引物的长度常为 17~30 GC 含量为 40%~60% Tm 值高于 55 两条引物间配对碱基数小于 5 个 避免引物自身配对形成茎环结构 ( 特别是在引物的 3 端 ), 茎的碱基配对数不大于 3 通常采用计算机辅助设计 22

23 如果引物自身配对 23

24 如果两条引物间配对 24

25 引物与模板间的配对 The oligonucleotide primers that are used in a PCR experiments need not match the target sequence exactly. The only place within the primer sequence that must match the target sequence exactly is the extreme 3 -end of the primer. 25

26 保护碱基 Primers to amplify part of the GAL4 gene from the genome and to include restriction enzyme recognition sites. 26

27 3. dntp 浓度为 20~200μmol/L,4 种 dntp 以等摩尔浓度配制 浓度过高, 加快反应速度, 但可增加碱基的错误掺入率和成本 浓度过低, 反应速度下降, 提高实验的精确性 27

28 4. Taq DNA 聚合酶 基本特点 : Taq DNA 聚合酶是从一种极度嗜热水生栖热菌中分离纯化而得 The bacterium Thermus aquaticus was first discovered in several hot springs in the Yellowstone National Park 具有 DNA 聚合酶活性 5 3 外切酶活性 逆转录酶活性 最适反应温度为 最适 ph8.0 和最佳反缓冲液 Tris HCl 最佳二价阳离子 Mg 2+ 具良好的热稳定性 : 在 90 下连续反应 30 分钟仍有 70% 的酶活 28

29 扩增产物的可靠性 : 评估 DNA 聚合酶的一个重要指标是它复制 DNA 的可靠性, 即掺入错误碱基的频率 天然复制的 DNA 分子中错误掺入率为 10-9 Taq DNA 聚合酶的错误掺入率为 kb sequence is amplified for 25 cycles with Taq, then approximately 10% of the amplified products will contain mutations. 29

30 在克隆基因时, 应采用高保真的 Taq DNA 聚合酶 (e.g. Pfu) 30

31 5. Mg 2+ 浓度 Mg 2+ is required for the DNA polymerase to function The optimum Mg 2+ concentration needs to be determined empirically for each separate PCR primer set, but will usually be in the range of 1 5 mm. 31

32 6. PCR 反应的平台期 反应底物和产物在 DNA 扩增中不断发生变化, 最终将会导致聚合反应进入平台期, 出现平台期的原因可能有 : 1 后期循环酶浓度或聚合时间不足 ; 2 引物耗尽 ; 3 dntp 耗尽 ; 4 产物浓度过高, 以致 ds-dna 解链后又迅速退火, 不能与引物结合 32

33 三 PCR 产物的鉴定 Gel electrophoresis of PCR products Cloning of PCR products Sequencing of PCR products 33

34 Cloning PCR products Taq DNA polymerase tends to add an additional nucleotide, usually A, to the end of each strand it synthesizes. A A PCR produc t T T T-tailed vec tor Ligate T A T A 34

35 Design primers that contain restriction sites 5'CTCTGGATCCTCAGCTGACAAGCAATGC 3' 35

36 四 PCR 应用中存在的问题及解决方法 假阳性 假阴性 正 负对照 PCR 产物的鉴定 : 杂交 测序 巢式 PCR 等 36

37 实验分析与讨论 : 假设你打算用 PCR 方法扩增某雄性哺乳动物的 SRY 基因进行早期性别鉴定, 该如何设计 PCR 反应? 37

38 第二节其它的特殊 PCR 方法 1. 锚定 PCR(Anchored PCR,A-PCR) 38

39 2. 不对称 PCR (Asymmetrical PCR) 采用不同引物浓度比率, 如 50 1, 100 1, 可得大量拷贝的 ssdna 39

40 40

41 1~7: 引物 1: 引物 2 的浓度比分别为 1:1 5:1 10:1 20:1 40:1 80:1 160:1; 8. 负对照 不对称 PCR 产物鉴定 41

42 3. 反向 PCR(inverse PCR) Inverse PCR is used to amplify and clone unknown DNA that flanks one end of a known DNA sequence and for which no primers are available. 42

43 43

44 4. 反转录 PCR(RT-PCR) 44

45 45

46 5. Overlapping PCR 46

47 6. 原位 PCR 原位 PCR 是指在组织细胞里进行 PCR 反应, 然后再用原位杂交对扩增产物进行定量分析的一种方法. 与探针原位杂交相比, 灵敏度提高 100 倍 47

48 7. Jumping PCR When degraded DNA is amplified, it may be that any given sample molecule is not long enough to span the entire distance between the two priming sites. 48

49 8. Hot-start PCR One of the most frequently encountered problems is the annealing of the primers at the wrong locations to generate the wrong PCR products. DNA polymerase is added when the reaction tubes have reached the DNA melting temperature of the first cycle. Incorporate the polymerase or the magnesium salt into wax beads or have the polymerase inactivated at the start by complexing with an antibody. 49

50 9. Touch-down PCR A high annealing temperature is used initially to ensure the correctly matched primertemplate annealing. The annealing temperature is then reduced in subsequent rounds to efficiently amplify the target sequence. 50

51 10. 定量 PCR (Quantitative PCR) Monitor changes in gene expression Even large differences in target concentration (100-fold or more) may produce the same intensity of band after 25 or 30 PCR cycles. 51

52 Quantitative PCR Relative quantitation: compares transcript abundance across multiple samples, using a coamplified internal housekeeping gene for sample normalization. Semi-quantitation Real-time quantitative PCR TaqMan SYBR Green Absolute quantitation: measures the absolute amount (copies) of a specific DNA or mrna sequence within a sample. 52

53 Semi-quantitation 53

54 Real-Time quantitative PCR PCR kinetics in real time 54

55 TaqMan 5 nuclease activity of the Taq polymerase 特异性高, 结果可靠 需合成特异的中间探针 55

56 SYBR Green Binds double-stranded DNA, and, upon excitation, emits light. If the dye is included in a PCR reaction, as a PCR product accumulates the fluorescence increases. 56

57 Advantages: inexpensive, easy to use, and sensitive. Disadvantages: SYBR Green will bind to any double-stranded DNA in the reaction 57

58 Absolute quantitation Using competitive RT PCR, measures the absolute amount (e.g copies) of a specific mrna sequence within a sample. Dilutions of a synthetic RNA (containing identical primer binding sites, but slightly shorter than the target RNA) are added to the sample and are co-amplified with the target. The PCR product from the endogenous transcript is then compared with the concentration curve created by the synthetic competitor RNA. 58

59 第三节 PCR 技术的应用 一. 在基础研究中的应用 DNA 片段的克隆 DNA 测序 定点诱变 基因的重组 基因组的比较研究 mrna 表达的比较研究 59

60 依赖于 PCR 的 DNA 克隆技术 传统的克隆 : 限制酶 / 连接酶 不依赖于连接的克隆 TOPO 克隆 Gateway 技术 60

61 SLIC (Sequence and ligation-independent cloning) 依赖于 T4 DNA 聚合酶的 3-5 核酸外切酶活性, 片段经 30 min 的孵育处理, 产生约 30 bp 的序列悬挂区 SLIC 在多基因片段重组中的作用 Harnessing homologous recombination in vitro to generate recombinant DNA via SLIC. 61 Nature Methods, 4, (2007)

62 TOPO 克隆 ( 依赖于 DNA 拓扑异构酶的克隆 ) DNA 拓扑异构酶 I 同时具有限制酶和连接酶特性, 在复制期间切割并重新连接 DNA 牛痘病毒拓扑异构酶 I 可结合在双链 DNA 的特异位点上, 并在一条链上于 5 -CCCTT 序列之后打开磷酸二酯键, 释放的能量可催化 DNA 切口处的 3 磷酸基团与拓扑异构酶的第 274 位酪氨酸 (Tyr) 共价结合 ; 同样这个共价键又会受到切口处 5 羟基的攻击, 进行可逆反应, 恢复磷酸二酯键, 重新将 DNA 连接起来 62

63 Invitrogen ccdb: 致死基因 63

64 Gateway 技术 Invitrogen Gateway 克隆技术是利用 λ 噬菌体与大肠杆菌的染色体之间发生的位点特异重组的重组整合与切除反应构成的 64

65 完成构建 Gateway 表达克隆需两步 : 1 创建 Gateway 克隆, 通过 PCR 或传统的克隆方法将目的基因克隆进入门载体 2 混合包含目的基因的入门克隆和合适的目的载体及 Gateway LR Clonase 酶, 产生表达克隆 ( 表达克隆用来 65 在合适的宿主中进行蛋白的表达和分析 )

66 基因组的比较研究 : 随机扩增多态性 DNA 分析 (Random Amplified Polymorphic DNA, RAPD) 用随机排列的单链寡核苷酸引物 ( 通常长度为 10 个核苷酸 ), 通过 PCR 扩增染色体组中的 DNA, 获得的长度不同的多态性 DNA 片段 基因组 DNA 如果在特定引物结合区域发生 DNA 片段插入 缺失或碱基突变, 就有可能导致引物结合位点的分布发生相应的变化, 导致 PCR 产物增加 缺少或发生分子量变化 66

67 与常规 PCR 的不同 引物长度短 :9-10 个核苷酸的随机引物 4 10 = , 水稻基因组 (430Mb) 中有 430 个结合位点 4 18 = 一个 PCR 反应只用一条引物 退火温度低 : 一般为

68 68

69 69

70 70

71 RAPD 分析的特点 不需先知道基因组的任何分子信息 技术简便, 不涉及分子杂交和放射性自显影等 引物没有严格的种属界限, 同一套引物可用于任何物种的研究, 具有广泛性和通用性 DNA 样品需要量少, 引物价格便宜, 成本较低 实验重复性较差, 结果可靠性较低 短的引物序列, 较低的退火温度 增加引物错配机率, 检测到非遗传性变异 71

72 序列特异性扩增区域 (SCAR) Sequence Characterized Amplified Regions 将目标 RAPD 片段进行测序, 根据两端序列设计特异性引物 (20-25bp), 再对基因组进行 PCR 扩增 72

73 二. PCR 在临床医学中的应用 1. 遗传性疾病的诊断 根据特异性扩增带作出诊断 73

74 PCR to detect a pathological deletion mutation exon intron Normal β A globin gene primer Deleted β globin ( β 0 ) gene 74

75 75

76 PCR to detect a point mutation. 76

77 根据 RFLP 连锁分析作出诊断 77

78 78

79 等位基因特异性寡核苷酸探针与 PCR 产物杂交 (allele-specific oligonucleotide,aso) 适合于检测 PCR 产物的非限制酶位点上碱基突变 它是利用两条引物链间的特异性 DNA 片段作探针 ( 常为人工合成的一段低聚核苷酸, 约 20 n.t.) 当这种探针的核苷酸序列与待测的 DNA 核苷酸序列完全互补时才能杂交 79

80 2. 传染性疾病的诊断 在感染早期, 抗体尚未产生时无法通过血清学方法进行早期诊断 从病毒或病原菌基因组中寻找一段特异性的 DNA 序列, 它既是病原体特异性的 同时又在该种病原菌基因组中高度保守, 通过对这段 DNA 序列的扩增进行病原性疾病的早期诊断 80

81 3. 肿瘤的诊断 癌基因激活的检测 点突变 染色体易位 癌基因扩增 抑癌基因失活的研究 点突变 缺失 81

82 82

83 4. 法医学 DNA 指纹 (fingerprinting) 83

84 基于卫星 DNA 杂交的 DNA 指纹 See movie 84

85 DNA fingerprint analysis confirmed that Dolly was cloned from an adult udder cell. U: the donor udder cells C: from the cell culture prepared from the udder cells D: Dolly s blood cells 1-12: control sheep 85

86 基于 PCR 的 DNA 指纹 86

87 87

88 5. 考古及进化分析 DNA from museum specimens and archaeological remains Mitochondrial DNA or chloroplast DNA, are a particularly useful target Comparison of polymorphic sequences from the ancient DNA with sequences observed today allows inferences to be made about the origins of particular populations or species. 88

第四章 PCR技术

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