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有 不 良 企 图 时, 就 要 立 即 躲 开 他 当 你 实 在 难 以 分 辨 对 方 是 真 心 实 意 还 是 虚 情 假 意 时, 可 向 父 母 老 师 或 周 围 较 成 熟 和 亲 近 的 朋 友 请 教, 请 他 们 帮 你 分 析 情 况, 做 出 判 断 此 时, 拒 绝 帮

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保存方式 保存缓冲液 (Reagent C) 反应液 (Reagent D) 底物液 (Reagent E) 和专性液 (Reagent G) 在 -20 冰 箱里 ; 其余的保存在 4 冰箱里 ; 反应液 (Reagent D) 和底物液 (Reagent E) 避免光照 ; 有效保证 6 月 用户自备 1.5 毫升离心管 : 用于样品保存的容器 15 毫升锥形离心管 : 用于样品制备的容器细胞刮脱棒 : 用于脱离贴壁细胞 ( 微型 ) 台式离心机 : 用于样品制备比色皿或酶标板 : 用于比色的容器分光光度仪或酶标仪 : 用于比色分析 实验步骤 实验开始前, 将 -20 冰箱里的试剂盒中的裂解液 (Reagent B) 置入冰槽里预冷 然后进行下列操作 一 样品准备 1. 准备好 25cm 2 细胞培养瓶或 60mm 细胞培养皿的待测培养细胞 (1 至 5 X 10 6 细胞 ) 2. 小心加入 xx 毫升清理液 (Reagent A), 覆盖生长表面 3. 小心抽去清理液 4. 使用细胞刮脱棒轻柔刮脱细胞 ( 注意 : 可以使用胰酶消化 ) 5. 加入 xx 毫升清理液 (Reagent A), 混匀细胞 6. 移入到预冷的 15 毫升锥形离心管 ( 注意 : 悬浮细胞从这一步骤开始 ) 7. 放进 4 台式离心机离心 5 分钟, 速度为 300g 8. 小心抽去上清液 9. 加入 xx 微升裂解液 (Reagent B), 充分混匀 10. 转移到预冷的 1.5 毫升离心管 11. 强力涡旋震荡 15 秒 12. 置于冰槽里孵育 30 分钟 13. 放进 4 微型台式离心机离心 5 分钟, 速度为 16000g( 或 13000RPM, 例如 eppendorf 5415) 14. 小心移取 500 微升上清液到新的预冷的 1.5 毫升离心管 15. 移取 10 微升进行蛋白定量检测 ( 注意 : 建议使用 Bradford 蛋白质浓度定量试剂盒 -30030.1) 1. 即刻放进 -70 保存或置于冰槽里继续后续操作 二 测定准备 1. 开启并设定好分光光度仪 ( 温度为 25 ): 波长 340nm, 间隔 60 秒, 读数 5 次 ( 共 5 分钟 ), 并置零 2. 从 -20 冰箱里取出试剂, 置于冰槽里融化 ; 底物液 (Reagent E) 避免光照 ; 缓冲液 (Reagent C) 置于室温下均衡温度 三 背景对照测定 2

2. 加入 xx 微升反应液 (Reagent D) 3. 加入 xx 微升底物液 (Reagent E) 4. 在 25 温度下孵育 3 分钟 5. 加入 xx 微升阴性液 (Reagent F) 6. 上下倾倒数次, 混匀 ( 限定在 3 秒之内 ) 7. 即刻放进分光光度仪检测, 此为背景空对照 (5 分钟读数 -0 分钟读数 ) 四 样品总活性测定 2. 加入 xx 微升反应液 (Reagent D) 3. 加入 xx 微升底物液 (Reagent E) 4. 在 25 温度下孵育 3 分钟 5. 加入 20 微升待测样品 ( 或 50 微克蛋白 )( 注意 : 样品须清澈 ) 6. 上下倾倒数次, 混匀 ( 限定在 3 秒之内 ) 7. 即刻放进分光光度仪检测, 此为样品读数 (5 分钟读数 -0 分钟读数 ) 五 样品非特异活性测定 2. 加入 xx 微升专性液 (Reagent G) 3. 加入 20 微升待测样品 ( 或 50 微克蛋白 )( 注意 : 样品须清澈 ) 4. 上下倾倒数次, 混匀 5. 在 25 温度下孵育 10 分钟 6. 加入 xx 微升缓冲液 (Reagent C) 7. 加入 xx 微升反应液 (Reagent D) 8. 加入 xx 微升底物液 (Reagent E) 9. 上下倾倒数次, 混匀 ( 限定在 3 秒之内 ) 10. 即刻放进分光光度仪检测, 此为样品读数 (5 分钟读数 -0 分钟读数 ) 六 计算样品活性 1) 样品活性 ( 总活性或非特异活性 ) ( 样品读数 - 背景读数 )X 1( 体系容量, 毫升 )X 样品稀释倍数 0.02( 样品容量, 毫升 )X 6.22( 毫 摩尔吸光系数 X 5( 反应时间, 分钟 ) = 单位 / 毫升 ( 样品蛋白浓度 ) 毫克 / 毫升 = 单位 / 毫克 单位 = 微摩尔 NAD/ 分钟 2) 样品特异活性 样品总活性测定 - 样品非特异活性测定 = 样品特异活性 3

七 酶标板测定 1. 背景对照和样品总活性 1. 在 96 孔酶标板上做好相应标记 : 背景对照 样品总活性 2. 分别移取 xx 微升缓冲液 (Reagent C) 到 96 孔板中 3. 分别加入 xx 微升反应液 (Reagent D) 4. 分别加入 xx 微升底物液 (Reagent E) 5. 在 25 温度下孵育 3 分钟 6. 分别加入 xx 微升阴性液 (Reagent F) 或待测样品 ( 或 10 微克蛋白 ) 到相应孔中 ( 注意 : 样品须清澈 ) 7. 轻轻摇动酶标板 8. 即刻放进酶标仪检测 :0 分钟读数和 5 分钟读数 2. 样品非特异活性 1. 在 96 孔酶标板上做好相应标记 : 样品非特异活性 2. 移取 xx 微升缓冲液 (Reagent C) 到 96 孔板中 3. 加入 xx 微升专性液 (Reagent G) 4. 加入 5 微升待测样品 ( 或 10 微克蛋白 )( 注意 : 样品须清澈 ) 5. 轻轻摇动 96 孔酶标板 6. 在 25 温度下孵育 10 分钟 7. 加入 xx 微升缓冲液 (Reagent C) 8. 加入 xx 微升反应液 (Reagent D) 9. 加入 xx 微升底物液 (Reagent E) 10. 轻轻摇动酶标板 11. 即刻放进酶标仪检测 :0 分钟读数和 5 分钟读数 3. 计算样品活性 1) 样品活性 ( 总活性或非特异活性 ) [( 样品读数 - 背景读数 )X 样品稀释倍数 X 0.25( 毫升, 测定容量 )] [0.005( 样品容量, 毫升 )X 6.22 ( 毫摩尔吸光系数 )X 0.6( 厘米 )X 5( 分钟 )]= 单位 / 毫升 ( 样品蛋白浓度 ) 毫克 / 毫升 = 单位 / 毫克 单位 = 微摩尔 NAD/ 分钟 2) 样品特异活性 样品总活性测定 - 样品非特异活性测定 = 样品特异活性 注意事项 1. 本产品为 20 次 ( 比色皿 ;10 个样本 ) 和 80 次 ( 酶标板 ;40 个样本 ) 操作, 包括背景对照 2. 操作时, 须戴手套 4

3. 系统操作过程中, 背景测定只需 1 次 4. 建议使用比色皿测定 5. 样品须澄清, 至关重要 6. 加样后 3 秒内比色测定 7. 测定值由低到高变化 ; 测定可持续 5 分钟 8. 比色测定后, 比色皿须清洗彻底 9. 样本测定 5 分钟读数高于 0 分钟读数表明具有酶活性 10. 建议待测样本蛋白浓度为 50 微克 /20 微升 ( 本公司提供 Bradford 蛋白质浓度定量试剂盒 -30030.1) 11. 如果待测样品浓度过高或过低, 可以调整样品浓度 12. 乙醛脱氢酶 2 单位活性定义为 : 在 25,pH 8.0 条件下, 每分钟内能够转化 1 微摩尔氧化型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸 (NAD) 为还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸 (NADH) 所需的酶量作为一个活性单位 13. 本公司提供系列乙醇代谢酶类检测试剂产品 质量标准 1. 本产品经鉴定性能稳定 2. 本产品经鉴定检测敏感 5