第 4 期黄帅等 : 拟南芥 GEF14 不独立参与 ROP10 介导的 ABA 信号转导途径 317 ylene,et) 等所调控的生物胁迫信号转导途径互作, 调控植物对生物胁迫的抗性 [2] 植物小 G 蛋白 Rops (Rho relatedgtpasefrom plants) 是 G 蛋白信

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1 第 21 卷第 4 期 2012 年 8 月 激光生物学报 ACTA LASER BIOLOGY SINICA Vol.21No.4 Aug.2012 doi: /j.isn 拟南芥 GEF14 不独立参与 ROP10 介导的 ABA 信号转导途径? 黄帅, 刘选明, 葛光君, 秦盈, 向芬, 廖红东, 朱咏华 ( 湖南大学生物学院, 湖南长沙 ) 摘要 : 通过 PCR 扩增技术, 从 DNA 和 mrna 水平上鉴定出拟南芥 GEF14 基因的 T DNA 插入纯合突变体 gef14 1 不同浓度 ABA 处理拟南芥野生型 (Col 0) 及 gef14 1 的 7d 龄幼苗, 采用实时荧光定量 PCR(Real time quantitativepcr,q PCR) 方法, 分析小 G 蛋白 ROP10 的表达模式, 结果表明 gef14 1 在不同浓度 ABA 处理下的 ROP10 的表达模式与 Col 0 中的一致 ; 表型分析结果显示 gef14 1 与野生型并无明显区别 推测 GEF14 不参与 ROP10 介导的 ABA 信号转导途径或其调控与其他 GEFs 存在功能冗余 关键词 :GEF14;ROP10; 突变体 ; 基因表达 ; 表型中图分类号 :Q943.2 文献标识码 :A 文章编号 : (2012) ArabidopsisGEF14isnotInvolvedIndependentlyinthe ROP10 mediatedabasignaltransductionpathway HUANGShuai,LIUXuanming,GEGuangjun,QINYing,XIANGFen,LIAOHongdong,ZHUYonghua (ColegeofBiology,HunanUniversity,Changsha410082,Hunan,China) Abstract:ThehomozygousT DNAmutantofGEF14(gef14 1)wasidentifiedatDNAandmRNAlevelsbyPCR.The quantitativereal timepolymerasechainreaction(q PCR)wascariedouttoanalyzetheexpresionpaternsofROP10 (Rho relatedgtpasefromplants)geneinarabidopsisthalianacol 0andgef14 1mutant7dseedlingsunderdiferent ABAstres.TheresultsshowedthattheRop10expresionlevelsingef14wassimilartoCol 0.Itsphenotypeasayindi catesthatthereisnovisiblediferencebetweengef14 1andCol 0.TheseresultssuggestedthatGEF14wasnotinvolved inrop10 medicatedabasingaltransductionpathwayorgef14mightshareredundantactivitiestowardrop10with othergefs. Keywords:GEF14;ROP10;mutant;geneexpresion;phenotype 脱落酸 (abscisicacid,aba), 作为一种重要的植物激素, 在种子休眠 萌发 气孔关闭等非生物胁迫 应答中起重要调控作用 [1], 还通过与水杨酸 (aslicyl icacid,sa) 茉莉酸 (jasmonicacid,ja) 和乙烯 (eth 收稿日期 : ; 修回日期 : ? 基金项目 : 中央高校基本科研业务费资助 作者简介 : 黄帅 (1986-), 女, 湖南长沙人, 硕士研究生, 主要从事植物分子生物学研究 ( 电子邮箱 )huang134zhou@ 126.com 通讯作者 : 朱咏华 (1968-), 女, 湖南长沙人, 教授, 硕士生导师, 从事生物化学与分子生物学教学与科研 ( 电话 ) ;( 电子邮箱 )zyh20@hotmail.com

2 第 4 期黄帅等 : 拟南芥 GEF14 不独立参与 ROP10 介导的 ABA 信号转导途径 317 ylene,et) 等所调控的生物胁迫信号转导途径互作, 调控植物对生物胁迫的抗性 [2] 植物小 G 蛋白 Rops (Rho relatedgtpasefrom plants) 是 G 蛋白信号转导途径中关键的信号元件 [3], 在极性生长 激素的信号转导 细胞分化以及非生物胁迫中起 分子开关 的作用 [4,5] 拟南芥中,Rops 家族中的 ROP10 蛋白定位于质膜上, 作用于共有的 ABA 信号转导途径并特异性地抑制各种 ABA 应答 推测依赖 ROP10 的信号转导途径可能由一个质膜定位的 ABA 受体直接调节而与信号网络中其他的 ABA 信号转导途径或模块协同作用 [6 8] 为了剖析 ROP10 介导的 ABA 信号途径, 本实验选择 ROP 鸟苷酸交换因子家族 GEFs(guaninenucleo tideexchangefactor,gef) 基因作为研究对象 在拟南芥中, 由 14 个成员组成的 GEFs 催化 ROPGT Pase [9], 使之由 GDP 结合的失活状态 (GDP GTPase) 转变成 GTP 结合的活化状态 (GTP GTPase), 从而介导胞外信号传递到胞内而产生胞内信息 [10] 目前有关 GEFs 家族的报道不多, 它们在 ABA 信号转导途径中的作用尚有待确定 前期研究已经表明, GEF14 与 ROP10 在 ABA 处理下表现出不同的应答趋势, 但基因表达谱的研究只从基因表达水平进行分析, 即使其表达谱与 ROP10 不相同, 仍不能否定其作为 ROP10 激活子的可能性 为此, 本文通过 PCR 扩增方法验证筛选出 gef14 基因的 T DNA 插入突变体 gef14 1 的纯合子, 并通过半定量及定量方法对纯合子中 GEF14 基因的表达进行确证分析 在此基础上针对 gef14 1 在外源 ABA 作用下 ROP10 的转录表达情况进行分析, 同时开展了突变体有关种子萌发 根伸长等生理表型实验, 以探明 GEF14 蛋白在拟南芥生长发育中是否参与 ROP10 介导的 ABA 信号转导途径 1 材料与方法 1.1 材料培养及处理拟南芥 [Arabidopsisthaliana(L.)Heynh.] 哥伦比亚生态型野生型 Col 0 为湖南大学生物学院植物分子生物学实验室保存 Col 0 背景的拟南芥 GEF14 的 T DNA 插入株系 gef14 1(SALK_075562) 和 gef14 2(SALK_078417) 的种子购自美国拟南芥生物资源中心 (ArabidopsisBio ResourceCenter:ABRC) 种子先用 70% 乙醇消毒 30s, 再用 10% NaClO 消毒 7min, 无菌水清洗 5 6 次, 于黑暗下 4 春化 4d 用 0.1% 琼脂悬液悬浮种子后均匀点播在含 0.8% 琼脂的 MS 固体培养基表面, 置于 22 全日照培养箱中生长 10d, 把苗子移栽到盆钵中, 置于恒温培养室中长日照条件下生长 1.2 方法 植株总 DNA 的提取从待检拟南芥植株上单株剪取 2 4 片幼叶, 液氮处理并研磨成粉末, 加人 400μLDNA 提取液漩涡, 静置 15min 后取上清加 500μL 氯仿 异丙醇 (6 15), 混匀,4 离心 ;30μL TE 室温处理 30min,70% 酒精洗涤两次, 干燥, -20 保存备用 DNA 的 PCR 扩增 PCR 反应体系 (25μL): Taq 酶,0.25μL;Taqbufer,2.5μL;dNTPs,2μL; DNA 模板,1μL; 正向引物,0.5μL; 反向引物, 0.5μL;H 2 O,18.25μL PCR 反应条件 :95, 预变性 4min;94, 变性 30s;55, 退火 30s;72, 延伸 45s; 反应 35 个循环 PCR 产物的检测检测 PCR 产物一般利用 1% 的琼脂糖凝胶进行电泳, 所用的电泳缓冲液为 0.5 TAE, 电压为 5V/cm,PCR 产物点样量为 6μL, 电泳结果用 UVP 凝胶成像系统拍照记录 PCR 引物的设计采用 三引物法 (ht tp://signal.salk.edu/tdnaprimers.2.html), 以所提取的总 DNA 为模板, 进行 PCR 扩增 [11] 每个 T DNA 插入株系基因型的鉴定需要三条引物, 它们分别是 : LP, 位于基因组上距离 T DNA 插入位点左臂端约 600bp 处 ;RP, 位于距离 T DNA 插入位点右臂端约 300bp 处 ; 同时, 根据 ABRC 所提供的 SALKT DNA 边界序列设计一条 T DNA 专一的引物 BP(R 0 ), 其序列为 5 TGGTTCACGTAGTGGGCCATC 3 基因引物由上海生工生物公司合成, 引物分别为 LP(F): 5 TCAACAAAGATCCTACGGCTG 3 ;RP(R):5 CCATATCATGCCCATAAATGC 拟南芥花总 RNA 提取及 gef14 纯合子株系的半定量和定量分析 GEFs 家族基因表达有组织特异性,GEF14 主要在花中表达 [12] 取 Col 0 和 gef14 的花样品, 总 RNA 提取采用 Invitrogen 公司的 Trizol 试剂盒 用 DEPC H 2 O 将 RNA 稀释到 100ng/L, 除去基因组 DNA, 按照 InvitrogenM MLV ReverseTranscriptaseInstruction 说明书进行反转录, 合成 cdna 的第一链, 该合成链作为半定量和定量的模板, 用于检测 gef14 基因的表达水平

3 318 激光生物学报第 21 卷 Q PCR 反应体系 (10μL):DEPC 水 5.4μL,buf er1μl,10mmol L 1 dntps0.2μl,mgcl 2 0.8μL, 引物各 0.05μL,SYBR Green I0.25μL,ROX 0.05μL,2.5U L 1 JumpStartTaq 聚合酶 0.2μL, cdna 模板 2μL 其中,ROX 为被动参考染料 反应程序为 :95,10min;95,30s;55, 30s;72,30s;40 个循环 实验数据采用 MxPro 软件 (Stratagene) 进行分析,ACT7 的表达水平被用作均 一化的内参, 所有检测样品均设置 3 个重复 引物序列见表 不同 ABA 浓度处理下 ROP10 的表达水平取拟南芥生长 7d 的 Col 0 和 gef14 纯合体幼苗, 根部分别置于含不同浓度 ( nmol/l)aba 的 MS 液体培养基中, 处理 4h 提取 RNA 逆转录 Q PCR 方法与之前一致 引物序列见表 1 表 1 实时定量 PCR 引物序列 Tab.1 Primersequencesusedinreal timequantitativepcranalysis 基因 Genes ACT7 GEF14 ROP10 正向引物序列 Forwardprimersequences(5 3 ) ATCCCTCAGVACCTTCCAAC GATGGGACAGAGACTGGTTGATTT GGCCAGTTTGTGATTCTGATAAGTC 反向引物序列 Reverseprimersequences(5 3 ) ACAAACTCACCACCACGAAC TTACTCAAACACCACAGTCTACTGCTT AAACATCAGGGTCACATATACAAACAG 拟南芥野生型和 gef14 1 突变体表型实验取消毒后的种子, 播种于添加不同浓度 ( μmol/L)ABA 的含 0.8% 琼脂的 MS 固体培养基表面, 以不含 ABA 的 MS 固体培养基处理的材料为对照, 用封口膜封口, 置于 22 全日照培养箱中培养, 以胚根突破种皮为准, 连续 7d 观察并统计种子的萌发率 每个处理播种约 40 粒种子, 重复 3 次 在根长实验中, 首先将拟南芥野生型和 gef14 1 种子播种在 MS 培养基上生长, 将生长 7d 的幼苗转移到不同浓度 ( μmol/L)ABA 的培养基上垂直培养 7d, 拍照并统计根长 所有实验均重复 3 次 2 结果与分析 2.1 GEF14 基因 T DNA 插入突变体的鉴定及插入位点分析纯合子鉴定采用普通的 三引物法 根据 T DNA 插入位点和 GEF14 基因序列分别设计了左端引物 LP(F) 和右端引物 RP(R), 提取 gef14 1 gef14 2 各 5~10 个单独株系的基因组 DNA 进行 PCR 扩增 野生型没有 T DNA 的插入, 只能用 LP+RP 引物扩增出大小约 1000bp 的条带 ; 杂合子的双链之一插入了 T DNA, 所以既能扩增出 400 bp 或 600bp 左右的 LP+BP 或 RP+BP 的带, 也能扩增出 1000bp 的 LP+RP 条带 ; 纯合子因为 T DNA 的插入, 前后引物之间的片段大大超过 PCR 的扩增能力, 无法扩增出 LP+RP 的带 图 1 的 PCR 结果表明, (1) 植株没有扩增出 LP+RP 的约 1000bp 条带, 为 gef14 1 纯合子突变体 图 1 gef14 突变体 PCR 鉴定电泳检测图示 Fig.1 Electrophoresispictureofgef14mutantsviaPCR detection 根据 ATIDB(TheArabidopsisthalianaIntergrated Database) 提供的信息, 针对获得的纯合突变体 SALK _075562(gef14 1) 进行突变体 T DNA 插入位点的分析 ( 图 2), 其插入位点位于 GEF14 基因起始密码子下游的第 855bp 处, 在第二个外显子上 2.2 gef14 1 突变体中基因 GEF14 的表达分析由于 三引物法 易产生非特异性扩增, 为确认筛选到的 gef14 1 是纯合子, 我们采用半定量和定量 PCR 技术对突变体进行检测 由图 3(a)PCR 扩增

4 第 4 期黄帅等 : 拟南芥 GEF14 不独立参与 ROP10 介导的 ABA 信号转导途径 319 图 2 拟南芥 GEF14 基因结构及其 T DNA 插入位点 Fig.2 SchemeofGEF14genestructureandposition ofthet DNAinsertion 的电泳图可以看出, 缺失突变体 gef4 1 无扩增条带 ; 图 3(b) 的 Q PCR 结果表明,gef14 1 突变体中只能检测到微量的 GEF14 的表达, 再次确定突变体中 GEF14 基因表达被破坏, 证实了所用实验材料是可信的 图 3 gef14 1 和野生型植株花中 GEF14 表达的半定量 (a) 和 Q PCR(b) 分析 Fig.3 GEF14 gene expresion ofthe flowersin gef14 1andCol 0byRT PCRanalysis(a)andtheQ PCRanalysis(b) 2.3 不同 ABA 浓度处理下 ROP10 的表达水平分析作为小 G 蛋白上游调控因子的 GEFs, 如果其作用于 ROP10 上游参与调控 ABA 应答, 那么当 GEF 基因缺失后, 由于 ABA 信号通路的中断, 下游 ROP10 无法做出相应的 ABA 应答反应, 则缺失突变体中 ROP10 的表达水平应该不受外源 ABA 的影响 本实验借鉴以往关于 ROP10 介导的 ABA 信号转导途径的研究中的 ABA 处理浓度 (0.3 50μmol/L) [13], 采用从低到高的 ABA 浓度 ( nmol/l) 分别处理生长 7d 的幼苗 4h, 提取 RNA, 再用 Q PCR 方法检测 gef14 1 突变体在不同浓度 ABA 浓度处理下的 ROP10 转录表达水平 结果显示,gef14 1 中 ROP10 的表达量和 Col 0 基本一致 ( 图 4) 由此推测 GEF14 不调控 ROP10 介导 ABA 的信号转导途径或者 GEF14 的调控与其他 GEFs 存在功能冗余 图 4 野生型和 gef14 1 突变体幼苗在不同浓度 ABA 处理下 ROP10 的表达量 Fig.4 Q RCRanalysisofROP10mRNAexpresionin seedlingsofcol 0 and gef14 1 mutantatdiferent ABAtreatment 2.4 gef14 1 突变体表型分析 ABA 是植物生长发育过程中的重要激素, 它主要有两个方面的作用 [14] : 一方面是参与植物发育的诸多过程, 促进休眠 气孔关闭 抑制种子萌发和植物生长 ; 另一方面参与植物逆境胁迫的应答, 外源 ABA 干旱及高盐等胁迫条件可以诱导 ABA 的大量合成, 大量合成的 ABA 可以通过正调控增强其信号转导途径, 从而影响与 ABA 有关的生理表型 为了进一步确定 GEF14 是否调控 ROP10 介导 ABA 的信号转导途径, 我们进行了纯合突变体 gef14 1 种子的萌发实验 连续 7d 观察并统计野生型 gef14 1 的种子萌发情况, 图 5 显示两者在不含 ABA 的培养基上正常萌发 ( 图 5,a~b), 在含有不同浓度 ABA 的培养基上,gef14 1 与野生型的萌发率差异不明显 ( 图 5,c~f) 同时, 我们对外源 ABA 胁迫处理的野生型和纯合突变体 gef14 1 的根长表型进行了观察 统计结果表明, 不同浓度 ABA 胁迫处理中, 未发现野生型和突变体间有明显表型差异 ( 图 6), 上述结果进一步表明 GEF14 不调控 ROP10 介导 ABA 的信号转导途径或者 GEF14 与其他 GEFs 存在功能冗余 3 讨论植物小 G 蛋白 ROP10 是定位于质膜上的 ABA 应答的特异性调控因子 [15], 拟南芥基因组编码了 14 个 GEFs, 它们都定位在质膜上, 是 Rops 的上游调控子 研究发现, 一个类 ROP 蛋白与质膜定位的 CLV1 受体丝氨酸 / 苏氨酸激酶 (RLKs) 活性复合物相关联, 且直接激活 ROP 的 GEFs 与 RLKs 有直接相互作用 [16 17] ; 同时, 负调控 ABA 信号转导途径的 ROP10 只定位于质膜, 推测 GEFs 通过 RLKs 参与调控

5 320 激光生物学报第 21 卷 图 5 野生型和 gef14 1 突变体种子在不同浓度 ABA 处理下的萌发率 Fig.5 GerminationeficiencyofCol 0 andgef14 1 mutantseedoftreatmentwithdiferent ABAconcentration 上述推论 以上研究结果为更进一步探寻拟南芥 GEFs 的调控作用提供了一定依据, 后续研究将从蛋白水平以及通过构建多突变体对参与 ROP10 介导的信号转导途径调控的 GEFs 家族作进一步考察 图 6 gef14 1 和野生型的幼苗根长受 ABA 的影响一致 Fig.6 gef14 1showedsimilarABAinhibitionofroot elongationascol 0 ROP10 介导的 ABA 应答反应 有关拟南芥 GEFs 家族在 ABA 信号转导途径中相关功能的研究非常有限, 该家族中的 gef14 基因的研究也未见报道 基于此, 本实验选择 gef14 基因进行初步研究 通过 PCR 扩增技术对 gef14 基因的两个 T DNA 插入突变体 gef14 1 和 gef14 2 进行 DNA 和 mrna 水平的鉴定, 筛选到拟南芥 gef14 1 纯合突变体, 为揭示该基因的功能奠定了材料基础 不同浓度 ABA 处理下的 gef14 1 突变体中 ROP10 的表达量和野生型 (Col 0) 基本一致的研究结果初步推断 GEF14 基因不调控 ABA 信号转导或者其功能的发挥必须借助于与其他 GEFs 的相互作用 ; 有关拟南芥种子的萌发 根长的表型结果验证了 参考文献 [1] LEUNG J,GIRAUDATJ.Abscisicacidsignaltransduction [J].AnnuRevPlantPhysiolPlantMolBiol,1998,19: [2] THOMASC,ABERKEN.StructureandfunctionofROPsand theirgefs[j]. Signalingand Communication in Plants, 2010,10: [3] LIH,SHENJJ,ZHENGZL,etal.TheRopGTPaseswitch controlsmultipledevelopmentalprocesesinarabidopsis[j]. PlantPhysiology,2001,126: [4] ZHENGZL,NAFISIM,TAMA,etal.Plasmamembrane as sociatedrop10smalgtpaseisaspecificnegativeregulatorof abscisicacidresponsesinarabidopsis[j].theplantcel, 2002,14: [5] YANGZ.SmalGTPases:versatilesignalingswitchesinplants [J].PlantCel,2002,14(Suppl): [6] XIQING WANG,HEMAYETULLAH,ALAN M JONES,et al.gproteinregulationofionchannelsandabscisicacidsigna lingin Arabidopsisguard cels[j]. Science,2001, 292 (5524):

6 第 4 期黄帅等 : 拟南芥 GEF14 不独立参与 ROP10 介导的 ABA 信号转导途径 321 [7] LEMICHEZE,WUY,SANCHEZJP,etal.Inactivationof AtRaclbyabicisicacidisesentialforstomatalclosure[J]. GenesDev,2001,15(14): [8] ZHENGZL,YANGZ.TheRopGTPaseswitchturnsonpolar growthinpolen[j].trendsplantsci,2000,5: [9] BERKENA,CTHOMAS.AwitinghoferanewfamilyofRho GEFsactivatestheRopmolecularswitchinplants[J].Na ture,2005,436: [10] SCHMIDTA,HALLA.Guaninenucleotideexchangefactors forrho GTPases:turningontheswitch[J].GenesDev, 2002,16(13): [11] 杨双, 阮燕晔, 樊金娟, 等. 一种简易的拟南芥幼苗单株微量 DNA 提取方法 [J]. 沈阳农业大学学报,2005,36 (1): YANGShuang,RUANYanye,FANJinjuan,etal.Asimple andrapidmethodforthearabidopsisindividualtracednaex traction[j]. JournalofShenyangAgriculturalUniversity, 2005,36(1): [12] SHINDH,KIM TL,KWONYK,etal.Characterizationof ArabidopsisGEF familygenesinresponsetoabioticstreses [J].PlantBiotechnolRep,2009,3: [13] 王会, 金宇?, 卢曼曼, 等. 拟南芥 GEFs 家族基因在外源 脱落酸处理下的表达分析 [J]. 植物生理学通讯,2010, 46(8): WANGHui,JINYufei,LUManman,etal.AnalysisofEx presionofgefsgenesinarabidopsisthaliana[arabidopsis thaliana(l.)heynh.]treatedwithaba[j].plantphysi ologycommunictions,2010,46(8): [14] GANDIKOTAM,KOCHKOA,CHENL,etal.Development oftransgenicriceplantsexpresingmaizeanthocyaningenes andincreasedblastresistance[j].molbreed,2001,7(5): [15] ZHENGZL,NAFISIM,TAMA,etal.Plasmamembrane as sociatedrop10smalgtpaseisaspecificnegativeregulatorof abscisicacidresponsesinarabidopsis[j].plantcel,2002, 14: [16] KAOTHIENP,OKSH,SHUAIB,etal.Kinasepartnerpro teininteractswiththeleprk1andleprk2receptorkinases andplaysaroleinpolarizedpolentubegrowth[j].plantj, 2005,42: [17] WENGIERD,VALSECCHII,CABANASML,etal.There ceptorkinasesleprk1andleprk2asociateinpolenand whenexpresedinyeast,butdisociateinthepresenceofstyle extract[j].procnatlacadsci,2003,100: 激光生物学报 征订启事 激光生物学报 创刊于 1992 年, 是由中国科学技术协会主管 中国遗传学会主办 湖南师范大学承办 华南师范大学激光生命科学研究所 安徽农业大学生命科学学院 中国海洋大学物理系 福建师范大学物理与光电信息科技学院等协办, 由国内外有关专家 学者组成的 激光生物学报 编委会编辑部编辑 激光生物学报杂志社出版的学术性刊物, 是目前国际上唯一的一份激光生物学科的专业性学术刊物, 已逐渐发行到中国 美国 英国 日本 俄罗斯 法国 德国 意大利 奥地利 瑞典诸国 双月刊, 大 16 开,112 页, 每逢双月底出版发行, 国外发行代号 : DK43001, 国内发行代号 :42-194, 欢迎订阅 报道内容 : 以激光 ( 光 ) 生物学 生物光子学 激光 ( 光 ) 生物医学 ( 含光子中医学 光动力疗法 激光整形美容 ) 辐射生物学 ( 含激光育种 辐射育种 空间育种等 ) 离子束生物工程及其相关的激光生物技术 ( 含微束照射技术 光镊技术 成像技术 光谱技术 共聚焦扫描显限微技术 细胞分流技术等 ) 仪器研制诸领域的学术论文, 适量兼登生物物理学 生物化学 遗传学 医学 农学等基础学科方面的 学术论文 本刊栏目 : 激光生物学报 包含以下栏目 : 专题论述 基础研究 应用研究 技术研究 科技信息等 读者对象 : 凡从事上述领域的研究人员 高等院校教师 研究生 医务工作者 育种工作者 激光仪器研制者等, 均有裨益 订阅办法 : 1 国内主要是到全国各地邮局直接订阅, 亦可通过邮局直接汇款至编辑部或由银行汇款 地址 : 长沙岳麓山 : 湖南师范大学生命科学学院内 ; 邮编 : 开户行 : 中国银行股份有限公司长沙市湖南师范大学支行账号 : 户名 : 长沙市岳麓区激光生物学报杂志社国内定价 :25 元 / 期,150 元 / 年 2 国外直接向中国出版对外贸易总公司 ( 北京 782 信箱 ) 订阅 欢迎有国内外读者订阅本刊! 激光生物学报 编辑部

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