670 热带亚热带植物学报第 23 卷 主要包括外植体脱分化形成愈伤组织和愈伤组织 再分化形成不定芽两个步骤, 扩繁速度慢, 植物突 变率高, 不利于保持优良性状 [3] 对黑木相思的两 种组培快繁途径均有报道,Meyer 等 [4] 苏景强等 [5] [6] 王盼盼等利用细胞分裂素诱导黑木相思优树

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1 热带亚热带植物学报 2015,23(6):669 ~ 674 Journal of Tropical and Subtropical Botany 植物生长调节剂对黑木相思优树腋芽增殖及生根的影响 黄烈健 1, 王鸿 1, 胡峰 2 1, 施琼 (1. 中国林业科学研究院热带林业研究所, 广州 ;2. 广东省农业科学院作物研究所, 广州 ) 摘要 : 为建立黑木相思 (Acacia melanoxylon) 快繁技术体系, 以含 1 个腋芽的无菌茎段为材料, 研究了植物生长调节剂对其增殖和生根的影响 结果表明,6-BA 极易诱导黑木相思愈伤组织形成, 但芽较差, 不利于腋芽增殖体系的建立 而生长素既能诱导黑木相思生根, 又能诱导腋芽增殖 ; 将无菌茎段接入 MS + IAA 0.5 mg L 1 + IBA 0.5 mg L 1 培养基中培养 20 d 的生根率为 98.41%, 培养 40 d 的腋芽增殖倍数为 2.36, 为 6.57 这是首次成功建立高效 简便的生根和增殖同步发生的黑木相思直接器官发生途径的组培技术体系 关键词 : 黑木相思 ; 腋芽增殖 ; 生根 ; 直接器官发生 ; 间接器官发生 doi: /j.issn Effects of Plant Regulators on Axillary Bud Proliferation and Rooting of Acacia melanoxylon Elite Tree HUANG Lie-jian 1, WANG Hong 1, HU Feng 2, SHI Qiong 1 (1. Research Institute of Tropical Forestry, Chinese Academy of Forestry, Guangzhou , China; 2. Crop Research Institute, Guangdong Academy of Agricultural Science, Guangzhou , China) Abstract: In order to establish rapid propagation system of Acacia melanoxylon, the effects of plant growth regulators on its axillary bud multiplication and rooting were studied by using sterile stem segments with one axillary bud as explants. The results showed that the calli of A. melanoxylon were easily induced and bud growth was poor by 6-BA, indicating the disadvantage of axillary bud proliferation. The proliferation and rooting of Acacia melanoxylon axillary buds could be induced by auxin. The stem sections were cultured on MS + IAA 0.5 mg L 1 + IBA 0.5 mg L 1 medium, rooting rate was 98.41% cultured for 20 d, and cultured for 40 d, the axillary bud multiplication and propagation coefficient were 2.36 and 6.57 per plantlet, respectively. It was successfully established the direct organogenesis technology system of A. melanoxylon for the first time with the advantages of high efficient, easy rooting and proliferation occur synchronous. Key words: Acacia melanoxylon; Axillary bud proliferation; Rooting; Direct organogenesis; Indirect organogenesis 黑木相思 (Acacia melanoxylon) 为含羞草科 (Mimosaceae) 金合欢属植物, 具有材质优良 速生丰产 适应性强等特点, 且能与根瘤菌共生固氮, 在改良土壤 提升地力 保持水土等方面作用显著, 是优良的短周期工业原木供应树种和生态防护林树种 [1] 林木组织培养主要通过直接器官发生途径和间接器官发生途径来实现, 直接器官发生途径是通过腋芽增殖来实现以芽繁芽的快速繁殖过程, 具有性状遗传稳定, 繁殖速度快, 植株健壮等优点, 是优良无性系扩繁的有效途径 [2], 而间接器官发生途径 收稿日期 : 接受日期 : 基金项目 : 国家 十二五 科技支撑计划项目 (2012BAD01B0402) 资助作者简介 : 黄烈健 (1971~ ), 男, 博士, 副研究员, 主要从事相思育种研究 @163.com

2 670 热带亚热带植物学报第 23 卷 主要包括外植体脱分化形成愈伤组织和愈伤组织 再分化形成不定芽两个步骤, 扩繁速度慢, 植物突 变率高, 不利于保持优良性状 [3] 对黑木相思的两 种组培快繁途径均有报道,Meyer 等 [4] 苏景强等 [5] [6] 王盼盼等利用细胞分裂素诱导黑木相思优树腋 芽增殖, 出现愈伤组织过度生长 增殖倍数偏低 [7] 芽质量较差等现象 ; 戴智明等以种子苗茎段为材 料成功实现了腋芽增殖, 但没有注意优树的选择 ; 姬明 [8] 林来水 [9] [10] 罗万业等通过间接器官发生途 径实现黑木相思组培苗的扩繁, 但无法保持优良性 状 为实现黑木相思优树的直接器官发生途径, 防 止出现大量愈伤组织 芽弱等问题, 本研究通 过调整培养基中的植物生长调节剂种类及其浓度, 建立适宜于保持黑木相思良种优良性状的组织培 养快繁途径, 为其工厂化生产提供科学依据 1 材料和方法 1.1 材料 从中国林业科学研究院热带林业研究所的 3 a 生黑木相思 (Acacia melanoxylon) 试验林中, 选择树高和胸径生长量大 干形通直的优良单株 AMN12001, 以当年生半木质化 健康无病虫害的 带腋芽枝条为外植体, 剪成长 1~2 cm 的带腋芽茎 段, 流水冲洗 0.5 h 后, 在超净工作台上用 75% 酒 精和 1 g L 1 的升汞分别消毒 30 s 和 10 min, 无菌 水洗 4~6 遍, 滤纸吸干表面水分, 接入 MS 培养基 ( 添加蔗糖 30 g L 1 琼脂 7 g L 1 ) 中进行初代培养, 30 d 后无菌茎段的腋芽处长出 2~3 cm 的新芽, 以 含 1 个腋芽的无菌茎段为试验材料 1.2 方法 6-BA 对增殖的影响以 MS 为基本培养基, 分别添加 和 2.0 mg L 1 的 6-BA, 每处理接种 30 个无菌茎段, 重复 3 次,40 d 后调 查增殖苗的生长情况并统计和单株 繁殖系数 6-BA 和 IAA 对增殖的影响 以 MS 为基 本培养基, 分别添加 和 0.5 mg L 1 的 6-BA 和 mg L 1 的 IAA 共 6 个处理, 每处理接种 30 个无菌茎段, 重复 3 次,40 d 后调查增殖苗的生 长情况, 并统计其和 生长素对增殖和生根的影响以 MS 为基本培养基, 分别添加 和 2.0 mg L 1 的 IBA NAA IAA 共 15 个处理, 每个处理接种 30 个无菌茎段, 重复 3 次,20 d 后调查苗的生长情况, 并统计生根率 生根数 ;40 d 后调查苗的生长情况并统计 IBA 和 IAA 交互作用对增殖和生根的影响以 MS 为基本培养基, 分别添加 mg L 1 的 IBA 和 mg L 1 的 IAA 以 3 3 组合, 共 9 组, 每处理接种 30 个无菌茎段, 重复 3 次, 20 d 后调查苗的生长情况并统计生根率 生根数, 40 d 后调查苗的生长情况并统计 以上培养基均添加琼脂 7 g L 1 蔗糖 30 g L 1, ph 调节至 5.5~6.5, 培养基在 121 下高压灭菌 15 min, 培养温度为 (25±2), 光周期为 14 h d 数据统计分析是指 1 个含腋芽茎段经过 1 次增殖培养后, 得到新的无菌苗的数目 是指 1 个含腋芽茎段经 1 次增殖培养后, 得到新的含 1 个腋芽的茎段数目 使用 Excel,SPSS18.0 对数据进行处理和方差分析, 以最小显著差数法 (LSD) 评价差异的显著性 2 结果和分析 BA 对黑木相思增殖的影响含 1 个腋芽的黑木相思无菌茎段接入培养基 10 d 左右, 即可见基部有愈伤组织形成, 第 25 天可见部分茎段腋芽处有丛生新芽长出 培养 40 d 后调查 ( 表 1), 黑木相思茎段在含细胞分裂素 (6-BA) 诱导下, 基部均有大量愈伤组织形成 6-BA 为 0.1 mg L 1 时, 虽然为 3.19, 极显著高于其它处理, 但基部有大量白色愈伤组织形成, 芽丛生矮小, 颜色偏黄, 有落叶现象 ( 图 1: A);6-BA 为 1.0 mg L 1 时, 和为 1.24 和 1.50, 芽的变差, 芽的茎段 叶片扭曲, 呈半透明状, 有玻璃化现象, 基部愈伤组织呈白色 ( 图 1: B);6-BA 高于 1.5 mg L 1 时, 不仅无腋芽增殖, 部分外植体完全形成愈伤组织, 颜色浅绿, 表面有绿色凸起物出现, 愈伤组织即将再分化 ( 图 1: C)

3 第 6 期黄烈健等 : 植物生长调节剂对黑木相思优树腋芽增殖及生根的影响 671 表 1 6-BA 对黑木相思腋芽增殖的影响 Table 1 Effect of 6-BA on axillary proliferation of Acacia melanoxylon 6-BA BA 和 IAA 对黑木相思增殖的影响 aa 3.57 aa bb 2.98 bb cc 1.50 cc dcd 0.95 dd dd 0.88 dd 同列数据后不同大 小字母分别表示差异极显著 (P<0.01) 和显著 (P<0.05)(LSD 多重比较 ) 下表同 Data followed different capital and small letters within column indicate significant different at 0.01 and 0.05 levels by LSD multiple comparisons, respectively. The same is following Tables. 培养 40 d 后调查 ( 表 2),6 种培养基上的黑木 相思茎段均有大量愈伤组织形成, 增殖芽茎干细 小, 颜色偏黄, 部分外植体形成的愈伤组织出现再 分化现象 当 6-BA 为 0.1 mg L 1 IAA 为 1.0 mg L 1 或 0.5 mg L 1 时, 增殖芽细长且透明, 极差, 基 部形成大量愈伤组织, 愈伤组织底部还长出粗短且 无须的根 ( 图 1: D) 当 6-BA 为 0.25 mg L 1 和 IAA 为 0.5 mg L 1 时, 增殖现象减少, 增殖芽矮小, 基部 有大量白色愈伤组织, 愈伤组织增大 颜色趋向绿 色, 部分外植体被愈伤组织完全覆盖 ( 图 1: E) 当 6-BA 为 0.5 mg L 1 和 IAA 为 0.5 mg L 1 时, 其有效 增殖倍数极显著优于其它组合, 达 3.12, 但此时形 成的增殖芽是由愈伤组织经再分化而来, 芽矮小, 茎段细且透明, 较差 ( 图 1: F) 表 2 6-BA 和 IAA 对黑木相思腋芽增殖的影响 Table 2 Effects of 6-BA and IAA on axillary proliferation of Acacia melanoxylon 6-BA IAA cc 2.00 cb dc 1.02 db aa 3.81 aa cbc 3.03 abab cc 1.80 cdb bb 2.82 bab 图 1 6-BA 和 IAA 对黑木相思腋芽增殖的影响 A: 0.1 mg L 1 6-BA; B: 1.0 mg L 1 6-BA; C: 2.0 mg L 1 6-BA; D: 0.1 mg L 1 6-BA mg L 1 IAA; E: 0.25 mg L 1 6-BA mg L 1 IAA; F: 0.5 mg L 1 6-BA mg L 1 IAA. Fig. 1 Effects of 6-BA and IAA on axillary proliferation of Acacia melanoxylon. A: 0.1 mg L 1 6-BA; B: 1.0 mg L 1 6-BA; C: 2.0 mg L 1 6-BA; D: 0.1 mg L 1 6-BA mg L 1 IAA; E: 0.25 mg L 1 6-BA mg L 1 IAA; F: 0.5 mg L 1 6-BA mg L 1 IAA. 2.3 生长素对增殖和生根的影响将含 1 个腋芽的黑木相思茎段接入只含 1 种生长素的 MS 培养基中, 培养 20 d 后调查, 不同浓度的 3 种生长素均能诱导黑木相思茎段生根, 但生根率和生根数量有区别 ( 表 3) IBA NAA IAA 诱导的生根率达显著差异, 随着 IBA 浓度增加, 生根率呈先上升后下降的趋势, 根数增多, 苗先是较好后又转差 ; 随着 NAA 浓度的增加, 生根率和根数均递增, 苗也逐渐变好 ; 而黑木相思茎段的生根率随着 IAA 浓度的增加先上升后下降, 以 IAA 为 1.0 mg L 1 时最高, 为 94.87% 培养 40 d 后调查, 已经生根的黑木相思在腋芽处萌出多个新芽, 出现增殖现象, 新芽健壮, 叶片舒展 不同浓度的生长素对黑木相思的影响均达到了显著水平 随着 IBA 浓度升高, 逐步上升 ; 随着 NAA 和 IAA 浓度升高, 表现出先上升后下降的趋势, 当 IAA 为 1.0 mg L 1 时, 腋芽增殖效果最佳, 为 2.44, 为 IBA 和 NAA 对生根和增殖的影响由表 4 可知,IBA 和 NAA 组合诱导黑木相

4 672 热带亚热带植物学报第 23 卷 表 3 生长素对黑木相思腋芽增殖和生根的影响 Table 3 Effects of auxins on axillary proliferation and rooting of Acacia melanoxylon 生长素 Auxin 生根率 (%) Rooting rate 20 d 40 d 根数 Root number IBA ab 3.37 d a 4.73 b ab 4.98 c b 4.88 b a 6.80 ab ab 5.99 a a 6.63 b b 5.12 ab b 8.00 a ab 5.87 a ++ NAA c 1.67 c a 4.38 ab ab 1.80 c a 4.69 ab b 2.47 b a 5.35 a b 2.59 ab b 3.02 b a 2.93 a a 3.91 b +++ IAA b 1.57 b a 4.85 ab b 6.67 a a 4.87 ab a 6.49 a a 6.47 a b 7.00 a a 4.29 b ab 6.32 a a 4.24 b 越多表示越好 下表同 The more of +, the better of bud growth. The same is following Table. 思的生根率, 比单种生长素诱导的生根率高, 且增 殖苗较好 高 IBA 和 IAA 均 1.0 mg L 1 时, 生根率下降趋势明显, 生根苗基部 形成白色愈伤组织, 根系多且短 ( 图 2: H), 继续培养 至 40 d, 愈伤组织增大, 根系出现黑色节点, 增殖苗 矮且弱 ( 图 2: J) IBA 为 0.5 mg L 1 和 NAA 为 0.5 mg L 1 时, 生根率最高, 为 98.41%, 且根系粗壮, 生根苗长 势较好, 宜于移栽 ( 图 2: G); 继续培养至 40 d, 有效 增殖倍数达 2.36, 为 6.57, 增殖苗叶片舒展 茎段粗壮 ( 图 2: I), 该处理是最理想的腋芽增殖和生根的处理 3 结论和讨论 3.1 细胞分裂素对黑木相思腋芽增殖的影响细胞分裂素 (6-BA) 在植物组织培养中的主要 表 4 IBA 和 IAA 交互作用对黑木相思生根和腋芽增殖的影响 Table 4 Effects of IBA and IAA on rooting and axillary proliferation of Acacia melanoxylon IBA IAA 生根率 Rooting rate (%) 20 d 40 d 根数 Root number a 4.62 b a 6.57 a a b 4.96 ab ab 5.83 a ab 5.26 ab ab 5.97 a ab 5.77 ab ab 5.15 ab b 5.71 ab b 5.10 ab b 4.77 ab ab 5.03 ab b 5.60 ab c 2.31 c b 6.31 a b 4.10 b b 4.62 b ab 5.02 ab ++++

5 第 6 期黄烈健等 : 植物生长调节剂对黑木相思优树腋芽增殖及生根的影响 673 图 2 IBA 和 IAA 对黑木相思生根和腋芽增殖的影响 G: IBA IAA 均为 0.5 mg L 1, 培养 20 d; I: IBA IAA 均为 0.5 mg L 1, 培养 40 d; H: IBA IAA 均为 1.5 mg L 1, 培养 20 d; J: IBA IAA 均为 1.5 mg L 1, 培养 40 d Fig. 2 Effects of IBA and IAA on rooting and axillary proliferation of Acacia melanoxylon. G: IBA and IAA were all 0.5 mg L 1, cultured for 20 d; I: IBA and IAA were 0.5 mg L 1, cultured for 40 d; H: IBA and IAA were 1.5 mg L 1, cultured for 20 d; J: IBA and IAA were 1.5 mg L 1, cultured for 40 d. 作用是促进细胞分裂和增殖, 在桉树 (Eucalyptus tereticornis) [11] 松树 (Cedrus atlantica 和 C. libani) [12] 杨树 (Populus trichocarpa) [13] 杂种相思 (Acacia hybrid) [14] 等木本植物的直接器官发生途径中均发 挥了显著作用, 能够有效刺激腋芽增殖 但不同物 种受外源植物生长调节剂的影响不一, 本研究结果 表明, 黑木相思茎段在细胞分裂素作用下均能形成 大量的愈伤组织, 且浓度越高, 愈伤组织再分化现 象越明显, 直接器官发生途径实现难度增大 叶玲 [15] 娟等观察了黑木相思愈伤组织的细胞形态, 其细 胞小 形状规则 胞质浓 核大 具有分生组织细胞 的特点, 因此愈伤组织细胞分裂能力强 代谢活跃 具有较强的体细胞胚发生能力, 在进行离体培养 时, 易受外源植物生长调节剂的作用, 诱导出愈伤 组织并再分化出植株, 导致黑木相思直接器官发生 途径不易实现 3.2 生长素对黑木相思腋芽增殖和生根的影响生长素能促进植物细胞的生长和伸长, 在相思 [16 18] 类树种的组培快中, 生长素主要是促进芽的生长和生根诱导, 还未见利用生长素进行腋芽增殖的研究报道 但也有报道, 生长素也能单独引起细胞分裂, 促进腋芽增殖, 楸树 (Catalpa bungei) 等树种的不定芽诱导时, 仅用生长素就能获得较好的增殖效果 [19] 本研究结果表明, 黑木相思茎段在仅添加生长素的培养基上, 既能促进生根现象也能促进腋芽增殖, 这意味着生长素对黑木相思的作用机理较为复杂, 有待进一步深入研究 3.3 黑木相思生根和腋芽增殖同步发生的组培快繁技术目前, 虽然已有通过直接器官发生途径和间接器官发生途径建立黑木相思组培技术体系的相关报道, 但均存在着以下问题 : 以直接器官发生途径的组培技术, 要么是以种子苗茎段为材料, 没有注重优树的选择 [7] ; 而以优树腋芽进行增殖时, 却出现愈伤组织过度生长 增殖倍数偏低 芽质量较差等现象 [4 6] 以间接器官发生途径的组培技术, 却因为在长期的继代增殖过程中, 具有较高的突变率而无法保持亲本的优良性状 [8 10] 这使得黑木相思工厂化育苗的发展进程受到非常大的影响, 进而限制了黑木相思良种的推广应用 建立一种有效 简便的黑木相思通过直接器官发生途径的组培快繁技术体系, 具有重要的现实意义 本研究以黑木相思优树初代培养获得的新萌芽为材料, 在 MS + IAA 0.5 mg L 1 + IBA 0.5 mg L 1 上培养, 首次成功建立了高效 简便的黑木相思通过直接器官发生途径的生根和增殖同步发生的组培快繁技术体系 在该培养基上培养 20 d, 生根率可达 98.41%, 培养至 40 d, 为 2.36, 可达 6.57 本研究建立的黑木相思快繁技术体系, 克服了茎段基部愈伤组织生长过盛 芽弱 易转换成间接器官发生途径等问题 ; 能有效保持亲本的优良性状, 降低分化和变异 ; 生根和增殖同时发生, 极大缩短了组培时间, 有效提升了组培苗品质 同时, 以 (6.57) 代替 (2.36), 可以有效提高黑木相思的增殖效

6 674 热带亚热带植物学报第 23 卷 率 本研究建立的组培快繁技术体系, 为实现黑木相思组培工厂化育苗提供了重要的技术保障, 并对其它树种的腋芽繁殖体系研究具有重要参考价值 参文献 [1] Pinkard E A, Beadle C L. Blackwood (Acacia melanoxylon R. Br.) plantation silviculture: A review [J]. Aust For, 2002, 65(1): [2] Zhan Y G, Diao G P, Wang Q Y, et al. Rapid propagation of Populus tremula P. tremuloides by multiplication of axillary buds [J]. J NE For Univ, 2005, 33(2): 7 9. 詹亚光, 刁桂萍, 王秋玉, 等. 叶腋增殖途径快速繁殖欧美杂种山杨 [J]. 东北林业大学学报, 2005, 33(2): 7 9. [3] Li Y W, Liu X B. Plant Tissue Culture Technology [M]. Beijing: Peking University Press, 2007: 李永文, 刘新波. 植物组织培养技术 [M]. 北京 : 北京大学出版社, 2007: [4] Meyer H J, Van S J. Regeneration of Acacia melanoxylon plantlets in vitro [J]. S Afr J Bot, 1987, 53(2): [5] Su J Q, Zhang F Q. Study on propagation technology about root sprout and tissue culture of Acacia melanoxylon [J]. Guangdong For Sci Techn, 2008, 24(3): 苏锦强, 张方秋. 黑木相思根蘖促萌及组培繁育技术研究 [J]. 广东林业科技, 2008, 24(3): [6] Wang P P. A comparative study on the techniques of tissue culture and rapid propagation in different fine clones of Acacia melanoxylon [D]. Fuzhou: Fujian Agriculture and Forestry University, 2011: 王盼盼. 黑木相思不同优良无性系组培快繁技术比较研究 [D]. 福州 : 福建农林大学, 2011: [7] Dai Z M, Liang R G, Zong Y C. Preliminary study on aseptic system establishment of Acacia melanoxylon seeds [J]. Pract For Techn, 2012(12): 戴智明, 梁日高, 宗亦臣. 黑木相思种子无菌体系建立的初探 [J]. 林业实用技术, 2012(12): [8] Ji M. In vitro culture and establishment of the regeneration system in Acacia melanoxylon [D]. Fuzhou: Fujian Agriculture and Forestry University, 2006: 姬明. 黑木相思离体培养与再生系统的建立 [D]. 福州 : 福建农林大学, 2006: [9] Lin L S. Study on in vitro culture and rapid propagation techniques of Acacia melanoxylon fine clones [D]. Fuzhou: Fujian Agriculture and Forestry University, 2008: 林来水. 黑木相思优良无性系离体培养与快速繁殖技术研究 [D]. 福州 : 福建农林大学, 2008: [10] Luo W Y, Fang Y W, Lin C L. Tissue culture technology of Acacia melanoxylon [J]. Pract For Techn, 2006(11): 24. 罗万业, 房亦文, 林春兰. 黑木相思的组培育苗技术 [J]. 林业实用技术, 2006(11): 24. [11] Sharma S K, Ramamurthy V. Micropropagation of 4-year-old elite Eucalyptus tereticornis trees [J]. Plant Cell Rep, 2000, 19(5): [12] Renau-Morata B, Ollero J, Arrillaga I, et al. Factors influencing axillary shoot proliferation and adventitious budding in cedar [J]. Tree Physiol, 2005, 25(4): [13] Kang B G, Osburn L, Kopsel D, et al. Micropropagation of Populus trichocarpa Nisqually-1 : The genotype deriving the Populus reference genome [J]. Plant Cell Tiss Org, 2009, 99(3): [14] nor Asmah H, nor Hasnida H, Noraliza A, et al. In vitro propagation of Acacia hybrid through alginate-encapsulated shoots and axillary buds [J]. Afr J Biotechn, 2012, 11(65): [15] Ye L J, Lai Z X, Su Q Z, et al. The callus culture and histological observation on Acacia spp. [J]. Chin Agri Sci Bull, 2009, 25(16): 叶玲娟, 赖钟雄, 苏齐珍, 等. 相思树的愈伤组织培养及其组织细胞学观察 [J]. 中国农学通报, 2009, 25(16): [16] Beck S L, Dunlop R W. Micropropagation of the Acacia species: A review [J]. In vitro Cell Dev Biol Plant, 2001, 37(5): [17] Rout G R, Senapati S K, Aparajeta S. Micropropagation of Acacia chundra (Roxb.) DC. [J]. Hort Sci (Prague), 2008, 35(1): [18] Girijashankar V. Micropropagation of multipurpose medicinal tree Acacia auriculiformis [J]. J Med Plant Res, 2011, 5(3): [19] Wang J H, Wu L H, Lin J. Inducing and proliferating culture of adventitions buds from Catalpa bungei [J]. For Sci Techn, 2010, 36(1): 1 4. 王军辉, 吴丽华, 林娟. 生长素对楸树不定芽的诱导和增殖培养影响的研究 [J]. 林业科技, 2010, 36(1): 1 4.

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